Wpływ substancji przeciwutleniających w pożywkach na namnażanie w kulturach in vitro przylaszczki pospolitej (Hepatica nobilis SCHREB.)

• Autorzy: Szewczyk-Taranek B. , Pindel Z.

Warianty tytułu

EN

Influence of antioxidants in media on the multiplication in vitro of noble liverleaf (Hepatica nobilis SCHREB.)

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

W przeprowadzonych doświadczeniach badano wpływ substancji przeciwutleniajacych w pożywce (kwas askorbinowy 50 i 100 mg∙dm-3, AgNO3 50 i 200 mg∙dm-3, PVP 250 i 1000 mg∙dm-3) na organogenezę przylaszczki pospolitej (Hepatica nobilis Schreb.). Podstawowa pożywka do namnażania pąków kątowych zawierała makro- i mikroelementy według Murashige i Skooga (1962) oraz regulatory wzrostu BA (2,0 μM) i NAA (0,2 μM). Stwierdzono, że dodatek do pożywki azotanu srebra lub kwasu askorbinowego, niezależnie od stężenia, hamował namnażanie pąków kątowych przylaszczki. Ponadto na pożywkach zawierających AgNO3 obserwowano liczne witryfikacje i deformacje roślin oraz formowanie korzeni przybyszowych. Na pożywce zawierającej PVP obserwowano zahamowanie czernienia pożywki, a powstałe rośliny były lepsze jakościowo, ciemnozielone i prawidłowo wykształcone. Gdy pożywka zawierała PVP w koncentracji 250 mg∙dm-3, współczynnik namnażania pąków kątowych pozostał na podobnym, jak w przypadku pożywki kontrolnej, poziomie, podczas gdy wyższa koncentracja tego związku w pożywce hamowała namnażanie pędów.

EN

The present experiments aimed at examining the effect of antioxidant substances in the medium (ascorbic acid 50-100 mg∙dm3, AgNO3 50-200 mg∙dm-3, PVP 250-1000 mg∙dm-3) on the organogenesis of liverwort (Hepatica nobilis Schreb.). Basic medium for the multiplication of auxiliary buds contained macro- and microelements according to Murashige and Skoog (1962) and growth regulators: BA (2.0 μM) and NAA (0.2 μM). It was found that medium supplemented with silver nitrate or ascorbic acid, independently of the concentrations, inhibited the multiplication of shoot buds of liverwort. Moreover, plants cultured on AgNO3-supplemented media showed numerous vitrifications and deformations, and the formation of adventitious roots. When plants were cultured on the PVP-supplemented medium blackening was inhibited and plants were of better quality, dark green and well developed. When the medium contained PVP at a concentration of 250 mg∙dm-3, shoot bud multiplication coefficient remained at a similar level as in the control medium, while its higher concentration in the medium suppressed bud multiplication.

• Wydawca: -
• Czasopismo: Zeszyty Problemowe Postępów Nauk Rolniczych
• Rocznik: 2009
• Tom: 534
• Opis fizyczny: s.281-287,tab.,wykr.,bibliogr.

Twórcy

autor

Szewczyk-Taranek B.

• Katedra Roślin Ozdobnych, Uniwersytet Rolniczy im.H.Kołłątaja w Krakowie, al.29 Listopada 54, 31-425 Kraków

autor

Pindel Z.

Bibliografia

• Cervelli R. 1987. In vitro propagation of Aconitum noveboracense and Aconitum napellus. Hort Sci 22(2): 304-305.
• Giri A., Ajuha P.S., Ajaj Kumar P.V. 1993. Somatic embryogenesis and plant regeneration from callus cultures of Aconitum heterophyllum Wall. Plant Cell Tissue Org. Cult. 32: 213-218.
• Inghe O., Tamm C.O. 1985. Survival and flowering of perennial herbs. IV. The behaviour of Hepatica nobilis and Sanicula europaea on permanent plots during 1943-1981. Oikos 45: 400-420.
• Kochba M., Gaba V., Nissim A., Watad A.A., Lilien-Kipnis H., Borochov A., Haley A.H. 1997. An efficient in vitro clonal propagation method for Aconitum napellus. Proceedings of the Seventh International Symposium on Flower Bulbs, Herzliya, Israel, 10-16 III 1996. Acta Horticulture 430: 281-287.
• Kucharska D., Orlikowska T. 1997. Regeneracja i rozmnażanie Paeonia mlokosewitschii w kulturach in vitro. Zesz. Probl. Post. Nauk Rol. 318: 171-175.
• Lim C.C., Kitto S.L. 1995. Micropropagation of Helleborus orientalis Lam. and Aconitum uncinatum Linn. (Ranunculaceae). Hort Sci. 30(4): 966-968.
• Marasek A., Orlikowska T. 1996. Organogeneza w kulturach Paeonia mlokosewitschii i P. tenuifolia. Materiały konferencji „Aktualne kierunki badań w biochemii i biotechnologii”. Łódź, XII 1996: 153-155.
• Murashige T., Skoog F. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol. Plant. 15: 473-497.
• Piękoś-Mirkowa H., Mirek Z. 2006. Flora Polski. Rośliny chronione. Oficyna Wydawnicza Multico. Warszawa: 304.
• Pindel Z. 1998. Warunki glebowe i świetlne stanowisk naturalnego występowania przylaszczki pospolitej (Hepatica nobilis Schreb.). Zesz. Probl. Post. Nauk Rol. 461: 349-356.
• Strzałka 2005. Związki fenolowe, w: Fizjologia roślin. Praca zbiorowa - Kopcewicz J., Lewak S. (red.). Wyd. Nauk. PWN, Warszawa: 373-379.
• Szewczyk B., Pindel Z. 2004. Wpływ chłodzenia eksplantatów przylaszczki pospolitej (Hepatica nobilis Schreb.) na wzrost w warunkach in vitro. Folia Universitatis Agriculturae Stetinensis, Agricultura 236(94): 217-222.
• Szewczyk-Taranek B., Pindel Z. 2008. Rozmnażanie przylaszczki pospolitej (Hepatica nobilis Schreb.) za pomocą sadzonek kłączowych. Zesz. Probl. Post. Nauk Rol. 525: 411-418.
• Watad A.A., Kochba M., Nissim A., Gaba V. 1995. Improvement of Aconitum napellus micropropagation by liquid culture on floating membrane rafts. Plant Cell Rep. 14: 345-348.

Uwagi

PL

Rekord w opracowaniu