Wykorzystanie kultur in vitro rodzimych gatunków róż do ochrony zasobów genowych

• Autorzy: Pawlowska B. , Bach A. , Popek R.

Warianty tytułu

EN

The use of in vitro cultures of domestic roses for protection of gene resources

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Stworzono kolekcję in vitro gatunków róż rosnących na stanowiskach naturalnych w Polsce. W prezentowanym etapie badań do założenia kultur wybrano 5 gatunków występujących w południowej części Krakowa w rejonie Pychowic i Tyńca: Rosa dumalis BECHST. EMEND. BOULEBGER (róża sina), R. tomentosa SM. (r. kutnerowa), R. rubiginosa L. (r. rdzawa), R. agrestis SAVI (r. polna) i R. canina L. (r. dzika). Do zapoczątkowania kultur in vitro posłużyły merystemy wierzchołkowe (wielkości 0,1-0,2 mm) izolowane ze śpiących pąków bocznych pędów jednorocznych w terminie wczesnowiosennym 2008 roku. Po przeprowadzeniu dezynfekcji powierzchniowej pobrano merystemy i umieszczono je na pożywce o składzie podstawowym wg Quoirin’a i Lepoivre’a (QL 1977) wzbogaconej w cytokininę BA i niewielki dodatek auksyny NAA oraz giberelinę, o pH 5,6. Zastosowana metoda odkażania pąków bocznych była skuteczna w 91-100%. Regenerujące eksplantaty formowały pąki boczne i kalus, przy czym u Rosa rubiginosa, R. tomantosa oraz R. dumalis obserwowano czernienie eksplantatów wyjściowych u podstawy. Intensywność formowania pąków bocznych podczas inicjacji zależała od gatunku, najsłabiej regenerowała R. rubiginosa (9,5%), pozostałe na poziomie 23,5-37,5%. Najlepsza do namnażania pędów bocznych R. canina i R. rubiginosa była pożywka QL zawierająca 10 pμM BA i 0,3 GA3, a współczynnik namnażania w cyklu pięciotygodniowym wynosił 1,6-2,5, pozostałe gatunki namnażały pąki boczne słabiej. Stwierdzono, że najkorzystniejsza dla kultur in vitro badanych gatunków róż jest temperatura 25/23°C.

EN

The aim of the present study was to create an in vitro collection of rose species growing on natural stands in Poland. At this stage of research, 5 species of roses occurring in the southern part of the city of Kraków in the area of Pychowice and Tyniec were used for culture initiation: Rosa dumalis BECHST., R. tomentosa Sm., R. rubiginosa L., R. agrestis SAVI and R. canina L. In vitro cultures were initiated from apical meristems (0.1-0.2 mm) isolated from one-year-old aestive shoot buds in the early spring in 2008. After surface disinfection, meristems were collected and transferred to the medium of the basic composition according to Quoirin and Lepoivre (QL 1977) supplemented with the cytokinin BA and a trace of the auxin NAA and gibberellin, pH 5.6. Efficiency of the method of shoot bud disinfection was 91-100%. Regenerating explants formed shoot buds and callus, however, blackening of initial explants at the base was noted in Rosa rubiginosa, R. tomantosa and R. dumalis. Intensity of shoot bud formation during culture initiation depended on the species: R. rubiginosa regenerated the weakest (9.5 %) and the remaining species at the level of 23.5-37.5%. QL medium containing 10 M BA and 0.3 GA3 was the best for shoot multiplication in R. canina and R. rubiginosa; multiplication coefficient in a five-week cycle was 1.6-2.5. The remaining species showed weaker shoot bud multiplication. Temperature of 25/23°C was the most beneficial for in vitro cultures of rose species under study.

• Wydawca: -
• Czasopismo: Zeszyty Problemowe Postępów Nauk Rolniczych
• Rocznik: 2009
• Tom: 534
• Opis fizyczny: s.199-206,tab.,wykr.,bibliogr.

Twórcy

autor

Pawlowska B.

• Katedra Roślin Ozdobnych, Uniwersytet Rolniczy im.H.Kołłątaja w Krakowie, al.29 Listopada 54, 31-425 Kraków

autor

Bach A.

autor

Popek R.

Bibliografia

• De Vries D.P., Dubois L.A.M. 1996. Rose breeding: past, present, prospect. Acta Hort. 424: 241-248.
• Engelmann F., Engels J.M.M. 2002. Managing plant genetic diversity. Engels J.M.M., Ramanatha Rao V., Brown A.H.D., Jackson M.T. (red.). Wallingford and Rome, CAB International and IPGRI: 89-104.
• Kim S.W., Oh S.C., Liu J.R. 2003. Control of direct somatic embryogenesis by exogenous growth regulators in immature zygotic embryo cultures of rose. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 74(1): 61-66.
• Kintzios S.C., Manos C., Marki O. 1999. Somatic embryogenesis from mature leaves of rose (Rosa sp.). Plant Cell Report 18: 467-472.
• Kucharska D., Wiśniewska-Grzeszkiewicz H., Orlikowska T. 2001. Mikrorozmnażanie podkładki Rosa india ʻMajorʼ. Biotechnologia 3(54): 231-236.
• Leyhe U., Horn W. 1994. A contribution to micropropagation of Rosa hybrid. Gartenbauwissenschaft 59(2): 47-55.
• Pati P.K., Rath S.P., Sharma M., Sood A., Ahuja P.S. 2006. In vitro propagation of rose - a review. Biotechnology Advances 24: 94-114.
• Pawłowska B. 2005. Wpływ cytokinin na rozwój pąków kątowych róży pnącej New Dawn w kulturach in vitro. Zesz. Probl. Post. Nauk Rol. 504/2: 499-505.
• Podyma W. 2004. Ochrona zasobów genowych, w: Biotechnologia roślin. Malepszy S. (red.). Wydawnictwo Naukowe PWN, Warszawa: 608 ss.
• Popek R. 2002. Róże dziko rosnące Polski. Klucz - atlas. Plantpress, Kraków: 112 ss.
• Quoirin M., Lepoivre P., Boxus P. 1977. Un premier bilan de 10 annees de recherches sur les cultures de meristemes st la multiplication in vitro de fruitiers ligneus, w: 1976-1977 et repports de synthese. C.R. Rech., Stat. des Cult. Fruit. Et Maraich. Glemblous: 93-117.
• Rout G.R., Samantaray S., Mottley J., Das P. 1999. Biotechnology of the rose: a review of recent progress. Sci. Hortic. 81: 201-228.
• Salehi H., Khosh-Khui M. 1997. Effect of explants length and diameter on in vitro shoot growth and proliferation rate of miniature rose - ʻThe Faiyʼ. Orissa J. Hortic. 25: 87-90.
• Tantikanja T., Young J., Letham S., Griffith M., Hussain M., Ljung K., Sandberg G., Sundarasen V. 2001. Control of axillary bud initiation and shoot architecture in Arabidopsis through the SUPERSHOOT gene. Genes and Development 15: 1577.
• Van der Salm T.P.M., Van der Toorn C.J.G., Hanisch ten Cate C.H., Dubois L.A.M., De Vires D.P., Dons H.J.M. 1994. Importance of the iron chelate formula for icropropagation of Rosa hybryda L. ‘Moneywayʼ. Plant Cell Tissue and Organ Culture 37: 73-77.
• Yan Z., Denneboom C., Hattendorf A., Dolstra O., Debener T., Stam P., Visser P.B. 2005. Construction of an integrated map of rose with AFLP, SSR, PK, RGA, RFLP, SCAR and morphological markers. Theor. Appl. Genet. 110: 766-777.

Uwagi

PL

Rekord w opracowaniu