Effects of mycorrhization and phosphorus nutrition on nutrient uptake, growth and flowering of China aster (Callistephus chinensis (L.) Nees) cultivated on ebb-and-flow benches

• Autorzy: Nowak J.

Warianty tytułu

PL

Wpływ mikoryzacji i nawożenia fosforem na zawartość składników mineralnych, wzrost i kwitnienie astra chińskiego (Callistephus chinensis (L.) Nees) uprawianego na stołach zalewowych

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

The effects were investigated of phosphorus nutrition and AMF inoculation on nutritional status, growth, and flowering of China aster (Callistephus chinensis (L.) Nees) ‘Milady’ during cultivation on ebb-and-flow benches. Two P treatments of 8.68 and 43.40 mgxdm-3 were applied. One month after inoculation the roots of inoculated plants were infected by mycorrhizal fungi. The control plants had no root infection. The mycorrhizal fungal colonization in plants that were fertilized at 8.68 and 43.40 mg x dm-3 P was 67% and 60% respectively. Slightly increased P content was detected in leaves of mycorrhizal plants grown under low P level. Mycorrhization did not affect leaf P content of plants grown in high P level. Increased Mg content was measured in leaves of mycorrhizal plants grown under both P levels. Mycorrhizal and nonmycorrhizal plants did not differ with regard to leaf N, K, and Ca contents. P nutrition did not also affect the contents of these elements in leaf tissue. Mycorrhization decreased the pH and lowered salt accumulation in growing media. Significantly lower shoot biomass, plant height, shoot number were recorded in all plants inoculated with AMF. Mycorrhization also delayed flowering of China aster; the high P level slightly accelerated it. Mycorrhizal plants had fewer flower buds and flowers than nonmycorrhizal ones. The high P level increased the number of flowers of nonmycorrhizal plants only.

PL

Badano wpływ nawożenia fosforem i inokulacji grzybami mikoryzowymi na zawartość składników mineralnych w liściach, wzrost i kwitnienie astra chińskiego (Callistephus chinensis (L.) Nees) ‘Milady’ uprawianego na stołach zalewowych. Zastosowano dwa stężenia P w pożywce: 8,68 i 43,40 mg 􀂉 􀀃dm-3. Korzenie roślin zostały zasiedlone przez grzyby mikoryzowe po miesiącu od inokulacji. Korzenie roślin nawożonych pożywką zawierającą 8,68 mg x dm-3 zostały zasiedlone w 67%, a nawożonych 43,40 mg x dm-3 w 60%. Korzenie roślin kontrolnych nie zostały zasiedlone. Stwierdzono nieco wyższą zawartość P w liściach roślin zmikoryzowanych nawożonych pożywką zawierającą mniej P. Mikoryzacja nie wpływała na zawartość P w liściach roślin uprawianych przy wyższym poziomie P w pożywce. Rośliny zmikoryzowane miały więcej Mg w liściach, niezależnie od stężenia P w pożywce. Mikoryzacja nie wpływała na zawartość N, K i Ca w liściach, niezależnie od poziomu P. Poziom P nie wpływał także na zawartość tych składników w liściach. Mikoryzacja obniżała pH podłoża i zawartość rozpuszczalnych soli w podłożu, przy obu poziomach P. Rośliny inokulowane miały mniejszą świeżą masę, mniej pędów i były niższe niż nieinokulowane. Mikoryzacja opóźniała kwitnienie, niezależnie od poziomu P. Wyższy poziom P trochę je przyspieszał. Wyższy poziom P zwiększał liczbę kwiatów u roślin niezmikoryzowanych.

Słowa kluczowe

EN

mycorrhization; phosphorus fertilization; nutrient uptake; plant growth; plant flowering; flowering; China aster; aster; Callistephus chinensis; plant cultivation; cultivation system

• Wydawca: -
• Czasopismo: Acta Agrobotanica
• Rocznik: 2009
• Tom: 62
• Numer: 1
• Opis fizyczny: p.77-81,ref.

Twórcy

autor

Nowak J.

• Department of Ornamental Plants, West Pomeranian University of Technology, Janosika 8, 71-424 Szczecin, Poland

Bibliografia

• Au g z R. M. 2000. Stomatal behavior of arbuscular mycorrhizal plants. [In:] Arbuscular mycorrhizas: physiology and function. Kapulnik Y., Douds D. D. Jr. (eds.), Kluwer Academic Publishers, Dortrecht, The Netherlands: 201-237.
• C l a r k R. B., Z e t o S. K. 2000. Mineral acquisition by arbuscular mycorrhizal plants. J. Plant Nutr.: 23
• Do u d s jr. D. D., J o h n s o n C. R., K o c h K. E. 1988. Carbon cost of the fungal symbiont relative to net leaf P accumulation in a split-root VA mycorrhizal symbiosis. Plant Physiol. 86: 491-496.
• Du n h am R. M., R a y A. M., I n o u y e R. S. 2003. Growth, physiology, and chemistry of mycorrhizal and nonmycorrhizal Typha latifolia seedlings. Wetlands, 23 (4): 890-896.
• E n t r y J. A., R y g i ewi c z P. T., Wa t r u d L. S., D o n n e l l y P. K. 2002. Influence of adverse soil conditions on the formation and function of arbuscular mycorrhizas. Adv. Environ. Res. 7 (1): 123-138.
• Ga u r A., A d h o l e y a A. 2005. Diverse response of five ornamental plant species to mixed indigenous and single isolate arbuscular-mycorrhizal inocula in marginal soil amended with organic matter. J. Plant Nutr. 28: 707-723.
• G e o r g e E. 2000. Nutrient uptake. [In:] Arbuscular mycorrhizas: physiology and function. Kapulnik Y. and Douds D. D. Jr. (eds.), Kluver Academic Publishers, Dortrecht, The Netherlands: 307-343.
• Ko i d e , R. T., L a n d h e r r , L. L., B e sme r , Y. L., D e t we i l e r , J. M., and H o l c omb , E. J. 1999. Strategies for mycorrhizal inoculation of six annual bedding plant species. Hort Science, 34: 1217-1220.
• L i X. L., G e o r g e E., M a r s c h n e r H., 1991. Phosphorus depletion and pH decrease at the root-soil and hyphaesoil interfaces of VA mycorrhizal white clover fertilized with ammonium. New Phytol. 119: 397-404.
• L i n d e r ma n R. G., D a v i s E. A. 2004. Varied response of marigold (Tagetes spp.) genotypes to inoculation with different arbuscular mycorrhizal fungi. Scientia Horticulturae, 99 (1): 67-78.
• Nowa k J. 2004 a. CO2 enrichment and mycorrhizal effects on root growth and some physiological traits of cuttings during rooting. Proc. International Congress Rhizosphere 2004. Perspectives and challenges. Munich, Germany, 12-17. September, 2004, PAS 4/15.
• Nowa k J. 2004 b. Effects of arbuscular mycorrhizal fungi and organic fertilization on growth, flowering, nutrient uptake, photosynthesis and transpiration of geranium (Pelargonium hortorum L.H. Bailey ‘Tango Orange’). Symbiosis, 37: 259-266.
• Nowo s i e l s k i , O., 1989. Zasady opracowywania zaleceń nawozowych. Państwowe Wydawnictwo Rolnicze i Leśne, Warszawa, Poland.
• P e n g S., E i s s e n s t a t D. M., G r a h am J. H., W i l l i ams K., H o d g e N. C. 1993. Growth depression in mycorrhizal Citrus at high-phosphorus supply. Plant Physiol. 101: 1063-1071.
• P h i l l i p s , J. M., A n d H a yma n , D. S. 1970. Improved procedures for clearing roots and staining parasitic and vesicular-arbuscular mycorrhizal fungi for rapid assessment of infection. Transactions of the British Mycological Society, 55: 150-160.
• S awa k i H., S a i t o M. 2001. Expressed genes in the extraradical hyphae of an arbuscular mycorrhizal fungus, Glomus intraradices, in the symbiotic phase. FEMS Microbiology Letters, 195: 109-113.