Formowanie zarodków somatycznych narcyza (Narcissus L.) z tkanki kalusowej w systemie okresowego zalewania pożywką RITA oraz na pożywce stałej

• Autorzy: Malik M. , Molenda A.

Warianty tytułu

EN

Formation of narcissus (Narcissus L.) somatic embryos from callus tissue in temporary immersion system with RITA and on solid media

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Określono wpływ czasu i częstości zalewania pożywką kultury embriogenicznego kalusa narcyza oraz regulatorów wzrostu na formowanie zarodków somatycznych. Embriogeniczny kalus narcyza odmiany ‘Carlton’ uzyskany w kulturach zalążni pod wpływem 25 µM 2,4-D i 5 µM BA kultywowano przez 4 tygodnie w systemie okresowego zalewania pożywką RITA®, a następnie przez 20 tygodni na pożywkach stałych. Kontrolę stanowiły kultury prowadzone przez 24 tygodnie na pożywkach stałych. Najwięcej zarodków somatycznych narcyza w stadium globularnym uzyskano w kulturach kalusa zalewanych pożywką zawierającą 25 µM 2,4-D i 5 µM BA co 6 i 8 godzin przez 5 minut, natomiast najwięcej zarodków dojrzałych i roślin w kulturach zalewanych co 2 i 4 godziny przez 5 minut pożywką wzbogaconą 0,5 µM NAA i 5 µM BA.

EN

The objective of research was to determine the effect of immersion duration and frequency as well as the content of growth regulators on somatic embryos formation in Narcissus L. embryogenic callus culture. Embryogenic callus of Narcissus L. ‘Carlton’ obtained on ovary explants under the influence of 25 µM 2,4-D and 5 µM BA were cultured for 4 weeks in temporary immersion system with RITA® and then for 20 weeks on the solid media. The cultures maintained for 24 weeks on solid media were used as a control. 5 minutes immersion every 6 and 8 hours affected the highest number of narcissus somatic embryos at globular stage formation, whereas the culture immersed in medium containing 0.5 µM NAA and 5 µM BA for 5 minutes every 2 and 4 hours obtained successive development and convertion of the highest number of embryos.

Słowa kluczowe

PL

bioreaktor RITA; Narcissus; embriogeneza somatyczna; kalus embriogenny; narcyz; okresowe zalewanie pozywka; pozywki plynne; pozywki stale; tkanka kalusowa; zarodki somatyczne

EN

RITA bioreactor; Narcissus; somatic embryogenesis; embryogenic callus; liquid medium; solid medium; callus tissue; somatic embryo

• Wydawca: -
• Czasopismo: Zeszyty Problemowe Postępów Nauk Rolniczych
• Rocznik: 2008
• Tom: 525
• Opis fizyczny: s.237-243,tab.,bibliogr.

Twórcy

autor

Malik M.

• Katedra Roślin Ozdobnych, Uniwersytet Rolniczy im. H. Kołłątaja w Krakowie, Al. 29 Listopada 54, 31-425 Kraków

autor

Molenda A.

• Katedra Roślin Ozdobnych, Uniwersytet Rolniczy im. H. Kołłątaja w Krakowie, Al. 29 Listopada 54, 31-425 Kraków

Bibliografia

• Bergonon S., Codina C., Bastida J., Viladomat F., Mele E. 1992. The shake liquid culture as an alternative way to the multiplication of Narcissus plants. Acta Horticulturae 325: 447-452.
• Berthouly M., Etienne H. 2005. Temporary immersion system: a new concept for use liquid medium in mass propagation, w: Liquid culture systems for in vitro plant propagation. Hvoslef-Eide A. K., Preil W. (red.), Springer, Dordrecht: 165-195.
• Bronsema F.B.F., Van Oostveen W.J.F., Van Lammeren A.A.M. 2001. Influence of 2,4-D, TIBA and 3,5-D on the growth response of cultured maize embryos. Plant Cell Tissue and Organ Culture 65: 45-56.
• Chen J., Ziv M. 2001. The effect of ancymidol on hyperhydricity, regeneration, starch and antioxidant enzymatic activities in liquid-cultured Narcissus. Plant Cell Reports 20: 22-27.
• Etienne H., Berthouly M. 2002. Temporary immersion system in plant micropropagation. Plant Cell Tissue and Organ Culture 69: 215-231.
• Gonzalez E.J. 2005. Mass propagation of tropical crops in temporary immersion systems, w: Liquid culture systems for in vitro plant propagation. Hvoslef-Eide A.K., Preil W. (red.), Springer, Dordrecht: 197-211.
• Groll J., Mycock D.J., Gray V.M., Laminski S. 2001. Secondary somatic embryogenesis of cassava on Picloram supplemented media. Plant Cell Tissue and Organ Culture 65: 201-210.
• KrishnaRaj S., Vasil I.K. 1995. Somatic embryogenesis in herbaceous monocots, w: In vitro embryogenesis in plants. Thorpe T.A. (red.), Kluwer AP, Dordrecht: 417-540.
• Lilien-Kipnis H., Azizbekova N., Ziv M. 1994. Scaled-up proliferation and regeneration of Nerine in liquid cultures. Part II. Ontogeny of somatic embryos and bulblet regeneration. Plant Cell Tissue and Organ Culture 39: 117-123.
• Malik M., Bach A. 2004. Wpływ regulatorów wzrostu na indukcję kalusa embriogenicznego w kulturach narcyza (Narcissus L.) odmiany ‘Carlton’. Folia Univ. Agric. Stetin., Agricultura 236: 115-118.
• Michalczuk L., Ribnicky D.M., Cooke T.J., Cohen J.D. 1992. Regulation of indole-3-acetic acid biosynthetic pathways in carrot cell cultures. Plant Physiology 100: 1346-1353.
• Murashige T., Skoog F. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol. Plant. 15: 473-497.
• Popelka J.C., Altpeter F. 2001. Interactions between genotypes and culture media components for improved in vitro response of rye (Secale cereale L.) inbred lines. Plant Cell Reports 20: 575-582.
• Rees A.R. 1969. Initiaton and growth of Narcissus bulbs. Annals of Botany 33: 277-288.
• Remotti P.C. 1995. Primary and secondary embryogenesis from cell suspension cultures of Gladiolus. Plant Science 107: 205-214.
• Sage D.O., Lynn J., Hammatt N. 2000. Somatic embryogenesis in Narcissus pseudonarcissus cvs. Golden Harvest and St. Keverne. Plant Science 150: 209-216.
• Selles M., Bergonon S., Viladomat F., Bastida J., Codina C. 1997. Effect of sucrose on growth and galanthamine production in shoot-clump cultures of Narcissus confusus in liquid-shake medium. Plant Cell Tissue and Organ Culture 49: 129-136.
• Selles M., Viladomat F., Bastida J., Codina C. 1999. Callus induction, somatic embryogenesis and organogenesis in Narcissus confusus: correlation between the state of differentiation and the content of galanthamine and related alkaloids. Plant Cell Reports 18: 646-651.
• Zimmerman J.L. 1993. Somatic embryogenesis: a model for early development in higher plants. Plant Cell 5: 1411-1423.