The effect of colour grading of milk thistle (Silybum marianum (L.) Gaertn.) seeds on their quality for sowing

• Autorzy: Rosinska A. , Dorna H. , Szopinska D. , Seidler-Lozykowska K.

Warianty tytułu

PL

Wpływ frakcjonowania nasion ostropestu plamistego (Silybum marianum (L.) Gaertn) pod względem barwy na ich wartość siewną

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

Introduction: Milk thistle (Silybum marianum (L.) Gaertn.) is a medicinal plant belonging to Asteraceae family. Extract from milk thistle achenes (termed in practice as seeds) contains sylimarin, which protects liver cells against inorganic and organic toxic compounds. Objective: The aim of the research was to evaluate the effect of colour grading on the quality of milk thistle seeds. Methods: Seeds were graded manually by colour according to the Royal Horticultural Society Colour Chart, issued in Great Britain. In three samples two fractions of seeds were separated: beige and brown, whereas seeds of the fourth sample were graded into three fractions: yellow, beige and brown. The 1000-seed weight and germination of graded and non-graded seeds were evaluated. Infestation of graded seeds with fungi was assessed. Results: Brown seeds had a higher 1000-seed weight than beige or yellow ones. Germination at the final count of beige seeds did not differ as compared to that of brown seeds or was even better. Milk thistle seeds were infested with numerous fungi, however Alternaria alternata and Ulocladium consortiale predominated. Conclusions: Less mature beige seeds can be used as sowing material because their germination at the final count did not differ as compared to that of fully mature brown seeds or was even better. Infestation of these seeds with some of the fungi was lower than brown seeds.

PL

Ostropest plamisty (Silybum marianum (L.) Gaertn.) jest rośliną leczniczą należącą do rodziny Asteraceae. Wyciąg z niełupek ostropestu (w praktyce zwanych nasionami) zawiera sylimarynę, która chroni komórki wątroby przed szkodliwym działaniem substancji organicznych i nieorganicznych. Cel: Celem badań było określenie wpływu frakcjonowania nasion pod względem barwy na ich jakość. Metody: Nasiona podzielono ręcznie na frakcje różniące się barwą na podstawie katalogu barw wydanego przez Królewskie Towarzystwo Ogrodnicze w Wielkiej Brytanii. W trzech próbach wydzielono dwie frakcje nasion: beżowe i brązowe, natomiast nasiona próby czwartej podzielono na trzy frakcje: żółte, beżowe i brązowe. Oceniono masę 1000 nasion oraz kiełkowanie nasion frakcjonowanych i niefrakcjonowanych. Określono też występowanie grzybów na nasionach frakcjonowanych. Wyniki: Nasiona brązowe charakteryzowały się większą masą 1000 nasion niż beżowe lub żółte. Zdolność kiełkowania nasion beżowych nie różniła się lub była lepsza od zdolności kiełkowania nasion brązowych. Nasiona ostropestu były zasiedlone przez liczne grzyby, jednak dominowały Alternaria alternata i Ulocladium consortiale. Wnioski: Nasiona beżowe, mniej dojrzałe, mogą być wykorzystane jako materiał siewny, ponieważ ich zdolność kiełkowania nie różniła się lub była nawet lepsza od zdolności kiełkowania w pełni dojrzałych nasion brązowych. Zasiedlenie tych nasion przez niektóre grzyby było mniejsze niż nasion brązowych.

• Wydawca: -
• Czasopismo: Herba Polonica
• Rocznik: 2017
• Tom: 63
• Numer: 1
• Opis fizyczny: p.7-19,ref.

Twórcy

autor

Rosinska A.

• Department of Phytopathology, Seed Science and Technology, Faculty of Horticulture and Landscape Architecture,Poznan University of Life Sciences, Szamotulska 28, Baranowo, 62-081 Przezmierowo, Poland

autor

Dorna H.

• Department of Phytopathology, Seed Science and Technology, Faculty of Horticulture and Landscape Architecture,Poznan University of Life Sciences, Szamotulska 28, Baranowo, 62-081 Przezmierowo, Poland

autor

Szopinska D.

• Department of Phytopathology, Seed Science and Technology, Faculty of Horticulture and Landscape Architecture,Poznan University of Life Sciences, Szamotulska 28, Baranowo, 62-081 Przezmierowo, Poland

autor

Seidler-Lozykowska K.

• Department of Botany, Breeding and Agricultural Technology of Medicinal Plants, Institute of Natural Fibres and Medicinal Plants,Kolejowa 2, 62-064 Plewiska, Poland

Bibliografia

• 1. Ghasemi SH, Hemati K, Bashiri Sadr Z, Ghasem Nezhad A, Ghasemi M. Quantitation of phenolic compounds in tissues of lime ( Citrus aurantifolia) fruit during growth and maturation. Iran J Food Sci Technol 2011; 8(31):69-75.
• 2. Fotouhi Ghazvini R, Fattahi Moghadam J. Citrus growing in Iran. 3th ed. Guilan University Press 2010:55-56.
• 3. Yadav AR, Chauhan AS, Rekha MN, Rao LJM, Ramteke RS. Flavour quality of dehydrated lime [Citrus aurantifolia (Christm.) Swingle]. Food Chem 2004; 85(1):59-62.
• 4. Bourgou S, Rahali FZ, Ourghemmi I, Tounsi MS. Changes of peel essential oil composition of four Tunisian citrus during fruit maturation. Sci World J 2011; 2012(1):1-10. doi: http://dx.doi.org/10.1100/2012/528593
• 5. Yaghmae P, Parivar K, Haftsavar M, Zarrehbinan F, Shahsavari S. Study of the effect of lemon peel essential oil on blood lipid levels and differential leukocyte count. Sci J Kurdistan Univ Med Sci 2009; 14(1):55-64.
• 6. Jeong-Hyun L, Jae-Sug L. Chemical composition and antifungal activity of plant essential oils against Malassezia furfur. Microbial Biotechnol 2010; 38(3):315-321.
• 7. Patil JR, Jayaprakasha GK, Chidamabara Murthy KN, Tichy SE, Chetti BM, Patil BS. Apoptosis-mediated proliferation inhibition of human colon cancer cells by volatile principles of Citrus aurantifolia. Food Chem 2008; 114(4):1351-1358. http://dx.doi.org/10.1016/j.foodchem.2008.11.033
• 8. Vekiari SA, Protopapadakis EE, Papadopoulou P, Papanicolaou D, Panou C, Vamvakias M. Composition and seasonal variation of the essential oil from leaves and peel of a Cretan lemon variety. J Agric Food Chem 2002; 50(1):147-153. doi: http://dx.doi.org/ 10.1021/jf001369a
• 9. Venkateshwarlu G, Selvaraj Y. Changes in the peel oil composition of Kagzi Lime (Citrus aurantifolia Swingle) during Ripening. J Essent Oil Res 2000; 12(1):50-52. doi: http://dx.doi.org/10.1080/10412905.2000.9712040
• 10. Droby S, Eick A, Macarsin D, Cohen L, Rafael G, Stange R, et al. Role of citrus volatiles in host recognition, germination and growth of Penicillim digitatum and Penicillim italicum. Postharvest Biol Tec 2008; 49(3):386-396. doi: http://dx.doi.org/10.1016/j.postharvbio.2008.01.016
• 11. Ebadati Esfahani R, HajiAkhondi A, Moradi P. Effect of different stages of fruit development on essential oil composition of Mexican lime skin (Citrus aurantifolia (Christm) Swingle) in Darab Eco-Phytochemical J Med Plants 2015; 2(10):65-72.
• 12. Bhuyan N, Barua PC, Kalita P, Saikia A. Physico-chemical variation in peel oils of Khasi mandarin (Citrus reticulata Blanco) during ripening. Indian J Plant Phys 2015; 20(3):227-231. doi: http://dx.doi.org/10.1007/s40502-015-0164-5
• 13. Saleem M, Mmahmud S, Waheed A, Akhtar M, Iqbal Z. Volatile constituents of Citrus aurantifolia variety “KAGHZI NIMBU”. Pak J Sci 2008; 60(3-4): 90-93.
• 14. Chamblee TS, Clark Jr BS. Analysis and chemistry of distilled Lime oil (Citrus aurantifolia Swingle). J Essent Oil Res 1997; 9(3):267-274. doi: http://dx.doi.org/ 10.1080/10412905.1997.10554242

Identyfikatory

DOI

10.1515/hepo-2017-0001