Ocena efektywności przeciwutleniającej preparatów łubinowych w układzie modelowym z kwasem linolowym

• Autorzy: Nogala-Kalucka M. , Lampart-Szczapa E. , Malinowska M. , Gramza A. , Kossowska I.

Warianty tytułu

EN

Study on antioxidative effectiveness of the lupin preparations in the linoleic acid model system

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

W pracy określono efektywność preparatów łubinowych w stabilizowaniu emulsji kwasu linolowego. Badany materiał stanowiły rozdrobnione w warunkach laboratoryjnych liścienie nasion łubinu odmiany Boros (Lupinus albus), które poddano modyfikacjom - fermentacji, ekstruzji oraz obu procesom łącznie. Preparaty po odtłuszczeniu ekstrahowano 80% etanolem (ETOH). Stosowano dwa stężenia ekstraktów łubinowych 0,1% i 0,02% w układzie modelowym z kwasem linolowym. Próby inkubowano w temperaturze 37±1°C przez 96 godz. Efektywność przeciwutleniajacą ekstraktów określano poprzez oznaczenie nadtlenków, dialdehydu malonowego oraz dienów skoniugowanych. Wykazano, że najskuteczniejszym przeciwutleniaczem w stosunku do substratu był ekstrakt ETOH preparatu uzyskanego z łubinu białego odmiany Boros bez łuski po fermentacji w stężeniu 0,1%. Najmniej efektywnie działał ekstrakt ETOH z preparatu nasion łubinu z łuską niemodyfikowanego w obu zastosowanych stężeniach 0,1% i 0,02%

EN

Effectiveness of the lupin preparations in stabilizing the linoleic acid emulsion was studied. The ground cotyledons of the Boros cultivar (Lupinus albus L.) were analysed. They were subjected to modifications: fermentation, extrusion and both processes together. After defatting, the preparations were extracted with 80% ethanol (ETOH). Two concentrations of lupin ETOH extracts were applied in the model system with linoleic acid: 0.1 and 0.02%. The samples were incubated at temperature 37±1°C for 96 hrs. Antioxidative effectiveness of the extracts was measured by determining the peroxides, malonyl dialdehyde and conjugated dienes. It was revealed that the most efficient antioxidant, with respect to the substrate, was addition of 0.1% extract obtained from the white lupin cv. Boros without hull and after fermentation. The least efficient was 0.1% and 0.02% addition of the extract of lupin preparation with hull and not modified.

• Wydawca: -
• Czasopismo: Zeszyty Problemowe Postępów Nauk Rolniczych
• Rocznik: 2007
• Tom: 522
• Opis fizyczny: s.405-412,rys.,tab.,bibliogr.

Twórcy

autor

Nogala-Kalucka M.

• Katedra Biochemii i Analizy śywności Akademia Rolnicza im. A. Cieszkowskiego, ul. Mazowiecka 48, 60-623 Poznań

autor

Lampart-Szczapa E.

• Katedra Biochemii i Analizy śywności Akademia Rolnicza im. A. Cieszkowskiego, ul. Mazowiecka 48, 60-623 Poznań

autor

Malinowska M.

• Katedra Biochemii i Analizy śywności Akademia Rolnicza im. A. Cieszkowskiego, ul. Mazowiecka 48, 60-623 Poznań

autor

Gramza A.

• Katedra Technologii śywienia Człowieka, Akademia Rolnicza im. A. Cieszkowskiego, Poznań

autor

Kossowska I.

• Katedra Biochemii i Analizy śywności Akademia Rolnicza im. A. Cieszkowskiego, ul. Mazowiecka 48, 60-623 Poznań

Bibliografia

• AMAROWICZ R., KARAMAĆ M., SHAHIDI F. 2003. Antioxidant activity of phenolic fractions of lentil. J. Food Lipids 10: 1-11.
• BARLOW S.M. 1990. Toxicological aspects of antioxidants used as food additives. Food Antioxidants, Elsev. Sci. Pub. LTD, New York: 171.
• BARTNIKOWSKA E. 1995. Health benefis of dietary antioxidants-review. Pol. J. Food Nutr. Sci. 4/45(4): 3-22.
• BUEGE J.A., AUST. S.T. 1978. Microsomal lipid peroxidation. Methods Enzym. 35: 302-310.
• HEIMLER A., VIGNOLINI P. 2005. Rapid tests to asses the antioxidant activity of Phaseolus vulgaris L. dry beans. J. Agric. Food Chem. 53: 3053-3056.
• HERMANN H. 1992. Contents of principle plant phenols in fruits. Fluess. Obst. 59: 66-70.
• KAVASIMA K., ITOH H., CHIBATA I. 1981. Antioxidant effect of peptide in combination with sugar on autoxidation of edible oils. Agric. Biol. Chem. 45: 987-992.
• LAMPART-SZCZAPA E., NOGALA-KAŁUCKA M., TROJANOWSKA K., MIŚKIEWICZ M., CZACZYK K., KOSSOWSKA I., OBUCHOWSKI W., MALINOWSKA M., KIRYLUK J., HOFFMAN A. 2003. Influence of technological processes on the oligosaccharides profile of lupin seed preparations. Zesz. Probl. Post. Nauk Rol. 495: 359-367.
• LINGNERT H., VALLENTIN K., ERICSSON C.E. 1979. Measurement of antioxidative effect in model system. J. Food Preserv. 3: 87-103.
• MONTSERRAT D., FERNANDEZ D., HERNANDEZ T., ESTRELLA I., MUNOZ R. 2005. Bioactive phenolic compounds of cowpeas (Vigna sinensis L.). modifications by fermentation with natural microflora and with Lactobacillus plantarum ATCC 14917. J Sci. Food Agric. 85: 297-304.
• MANIAK B., TARGOŃSKI Z. 1996. Przeciwutleniacze naturalne występujące w żywności. Przem. Ferm. i Owoc.-Warz. 4: 7-10.
• NOGALA-KAŁUCKA M., LAMPART-SZCZAPA E., JANCZAK R., MALINOWSKA M., KOSSOWSKA I. 2003. Zmiany jakościowe i ilościowe tokochromanoli w preparatach łubinowych uzyskiwanych na drodze modyfikacji technologicznych. Zesz. Probl. Post. Nauk Rol. 495: 375-382.
• REMISZEWSKI M., KULCZAK M., PRZYGOŃSKI K. 2006. Zmiany aktywności antyoksydacyjnej wybranych roślin strączkowych podczas obróbki technologicznej. Bromat. Chem. Toksykol. 39: 503-507.
• SIKORSKI Z.E. 2002. Chemia żywności, WNT, Warszawa: 460-466.
• TAGA M.S., MILLER E.E., PRATT D.E. 1984. Chia seeds as a source of natural lipid antioxidants. JAOCS 61(5): 928-930.
• ZADERNOWSKI R., BOROWSKA J., NACZK M. 2001. Effect of broad bean and pea phenolics on the activity of lipase and lipooxygenase. J. Food Lipids 8: 263-270.

Uwagi

PL