Biomass, abundance and sensitivity to antibiotics and antimycotics of the fungi in the Vistula River with its main tributaries

• Autorzy: Pietryczuk A. , Gorniak A.S. , Wiecko A. , Cudowski A.

Warianty tytułu

PL

Biomasa, liczebność i wrażliwość na antybiotyki i antymykotyki grzybów w Wiśle i jej głównych dopływach

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

Mycoplankton of Vistula River and its main tributaries biomass as well as the number and morphotype diversity was studied in summer and autumn 2011. Summer mycoplankton biomass was within the range of 0.2 – 0.5 μg/l, while in the autumn it was two times wider range (0.1 – 1.3 μg/l). The number of fungi in river water most often did not exceed 1000 – 2000 CFU/ml. Fungi colonies isolated from rivers water were sensitive to the commonly used amphotericine B (10 μg) and gentamicin (10 μg). It seems to be plausible that aquatic fungi can acquire immunity to drugs as a result of horizontal transfer of a gene responsible for drug resistance or as an effect of antibiotics and antimycotics getting into the aquatic ecosystems from wastewaters.

PL

Latem i jesienią 2011 roku określono biomasę oraz różnorodność morfotypów mykoplanktonu w wodach powierzchniowych Wisły i jej głównych dopływów. Letnia biomasa mykoplanktonu mieściła się w zakresie 0,2 – 0,5 μg/L , zaś jesienią w przedziale 0,1 – 1,3 μg/L. Liczebność grzybów w wodach rzecznych najczęściej nie przekraczała 1000-2000 CFU/mL. Próbki wody charakteryzowały się obecnością grzybów wrażliwych na powszechnie stosowany mikotyk amfoterycynę B (10 μg) i antybiotyk gentamycynę (10 μg). Wydaję się prawdopodobne, że grzyby wodne mogą nabywać oporność na leki, w wyniku horyzontalnego transferu genu odpowiedzialnego za lekooporność od innych mikroorganizmów lub wskutek dostawania się antybiotyków i antymikotyków ze ściekami do ekosystemów wodnych.

Słowa kluczowe

EN

biomass; abundance; sensitivity; antibiotic; antifungal agent; fungi; Vistula River; tributary

• Wydawca: -
• Czasopismo: Acta Mycologica
• Rocznik: 2013
• Tom: 48
• Numer: 2
• Opis fizyczny: p.237-245,fig.,ref.

Twórcy

autor

Pietryczuk A.

• Institute of Biology, University of Bialystok, Swierkowa 20B, 15-950 Bialystok, Poland

autor

Gorniak A.S.

• Institute of Biology, University of Bialystok, Swierkowa 20B, 15-950 Bialystok, Poland

autor

Wiecko A.

• Institute of Biology, University of Bialystok, Swierkowa 20B, 15-950 Bialystok, Poland

autor

Cudowski A.

• Institute of Biology, University of Bialystok, Swierkowa 20B, 15-950 Bialystok, Poland

Bibliografia

• Anaissie E.J., Penzak S.R., Dignani M.C. 2002. The hospital water supply as a source of nosocomial infections. A plea for action. Archv. Internal Med. 162: 1483-1492.
• Anon. 2003. Drinking water regulations (in Swedish). SLVFS 2001: 30. National Food Administration, Stockholm, Sweden.
• Bossche H.V., Marichal P., Odds F.C. 1994. Molecular mechanisms of drug resistance in fungi. Trends Microbiol. 2: 393-400.
• Cabral D., Fernández P. 2002. Fungal spoilage of bottled mineral water. Intern. J. Food Microbiol. 72: 73-76.
• Canhoto C., Graca M.A.S. 2008. Interactions between fungi and stream invertebrates: back to the future, Novel techniques and ideas in mycology, Fungal diversity research series (Sridhar K.R., Bärlocher F., Hyde K.D., eds), pp. Fungal Diversity Press, Yunnan, P.R. China: 305-325.
• Davis M.W., Lamar, R. T. 1992. Evaluation of methods to extract ergosterol for quantitation of soil fungal biomass. Soil Biol Biochem. 24 (3): 189-198.
• Descals E. 2007. Techniques for handling ingoldian fungi. (In:) M.A.S. Graça, F. Bärlocher, M.O. Gessner (eds). Methods to study litter decomposition. A practical guide. Springer: 129-141.
• Doggett M.S. 2000. Characterization of fungal biofilms within a municipal water distribution system. Appl. Environ. Microbiol. 66: 1249-1251. http://dx.doi.org/10.1128%2FAEM.66.3.1249-1251.2000
• Flannigan B., McCabe E.M., McGarry F. 1991. Allergenic and toxigenic microorganisms in houses. J. Appl. Bacteriol. Symp. Suppl. 70: 61S-73S.
• Gotz A., Smalla K. 1997. Manure enhances plasmid mobilization and survival in Pseudomonas putida introduced into the field soil. Appl. Environ. Microbiol. 63: 1980-1986.
• Gruszecki W.I., Luchowski R., Gagoś M., Arczewska M., Sarkar P., Hereć M., Myśliwa-Kurdziel B., Strzałka K., Gryczynski I., Gryczynski Z. 2009. Molecular organization of antifungal antibiotic amphotericin B in lipid monolayers studied by means of Fluorescence Lifetime Imaging Microscopy. Biophysics Chem. 143: 95-101.
• Hageskal G., Knutsen A.K., Gaustad P., de Hoog G.S., Skaar I. 2006. Diversity and significance of mold species in Norwegian drinking water. Appl. Environ. Microbiol. 72: 7586-7593. http://dx.doi.org/10.1128%2FAEM.01628-06
• Hageskal G., Gaustad P., Heier B.T., Skaar I. 2007. Occurrence of moulds in drinking water. J. Appl. Microbiol. 102: 774-780. http://dx.doi.org/10.1111%2Fj.1365-2672.2006.03119.x
• Hageskal G., Lima N., Skaar I. 2009. The study of fungi in drinking water. Mycol. Res. 113: 165-172. http://dx.doi.org/10.1016%2Fj.mycres.2008.10.002
• Hill K.E., Fry J.C., Weightman A.J. 1994. Gene transfer in the aquatic environment: persistence and mobilization of the catabolic recombinant plasmid pD10 in the epilithon. Microbiol. 140: 1555-1563.
• Ho W.H., To P.C., Hyde K.D. 2003. Induction of antibiotic production of freshwater fungi using mix-culture fermentation. Fungal Diversity 12: 45-51.
• Holt R.J. 1975. Laboratory tests of antifungal drugs. J. Clin. Path. 28: 767-774.
• Jørgensen N.O.G., Stepanauskas R. 2009. Biomass of pelagic fungi in Baltic rivers. Hydrobiologia 623:105-112. http://dx.doi.org/10.1007%2Fs10750-008-9651-2
• Kim S., Aga D.S. 2007. Potential ecological and human health impact of antibiotics and antibiotic-resistant bacteria from wastewater treatment plants. J. Toxicol. Environ. Health 10: 559-573.
• Krauss G.J., Solé M., Krauss G., Schlosser D., Wesenberg D., Bärlocher F. 2011. Fungi in freshwaters: ecology, physiology and biochemical potetntial. FEMS Microbial. Rev. 35: 620-651.

Identyfikatory

DOI

10.5586/am.2013.025