PL EN


Preferencje help
Widoczny [Schowaj] Abstrakt
Liczba wyników
2011 | 19 | 1 |
Tytuł artykułu

Effect of salicylic acid on antioxidant enzyme activity and petal senescence in "Yellow Island" cut rose flowers

Warianty tytułu
PL
Wplyw kwasu salicylowego na aktywnosc enzymow oksydacyjnych oraz starzenie sie platkow cietej rozy "Yellow Island"
Języki publikacji
EN
Abstrakty
EN
The effect of exogenous salicylic acid (SA) on the vase life of cut rose flowers was investigated. 'Yellow Island' roses were obtained from a commercial grower. The roses were pulse treated with SA (0, 50, 100, 150, 200 mg l-1) for 18 hours. Com­pared to the control treatment (DW), the greatest delay in senescence was obtained in cut roses treated with 150 mg l-1 SA. With this treatment, flower vase life was dou­bled. The physiological characteristics such as protein concentration, lipid peroxida- tion (MDA) level and enzyme activity such as lipoxygenase (LOX), superoxide dis- mutase (SOD) and peroxidase (POD) were measured only in the control (DW) and those kept in a solution of 150 mg l-1 salicylic acid (SA) for over 8 days of vase life. Degradation of protein and accumulation of MDA during vase life was shown to be suppressed by 150 mg l-1 SA. The activity of LOX and POD gradually increased with progressing flower senescence, while SOD activity declined. The flowers which had been pulsed with SA exhibited lower LOX and POD activity, and a higher activity of SOD. Overall, the results suggest that SA increases vase life by improving the anti- oxidant system and reducing oxidative stress damages during rose flower senescence.
PL
Badanie miało na celu określenie wpływu egzogennego kwasu salicylowego (SA) na kwiaty ciętej róży. Róże 'Yellow Island' pochodzące od hodowcy komercyjnego traktowane były w sposób pulsacyjny kwasem salicylowym (0, 50, 100, 150, 200 mgl-1) przez 18 godzin. W porównaniu z grupą kontrolną (DW) największe opóźnienie w procesie starzenia, i dwukrotne wydłużenie żywotności kwiatów po ich ścięciu, wykazał róże traktowane 150 mg l-1 SA. Fizjologiczne cechy, takie jak stę­żenie białek, poziom utlenienia lipidów (MDA) i aktywność enzymów - lipoksygena- zy (LOX), dysmutazy ponadtlenkowej (SOD) i peroksydazy (POD) byfy oznaczone jedynie w grupie kontrolnej (DW) oraz u roślin trzymanych w 150 mg l-1 roztworze kwasu salicylowego (SA) przez ponad 8 dni po zbiorze. Rozpad białek i gromadzenie się MDA po ścięciu zostaty zahamowane po zastosowaniu 150 mg l-1 SA. Aktywność LOX i POD stopniowo zwiększyła się wraz z postępującym starzeniem się kwiatów, podczas gdy aktywność SOD się zmniejszyła. Kwiaty traktowane pulsacyjnie SA wykazafy niższą aktywność LOX i POD, natomiast wy ższą SOD. Wyniki wskazują, że SA przedłuża żywotność kwiatów po ich zbiorze wzmacniając działanie przeciwu- tleniaczy i redukując stres oksydacyjny w czasie starzenia się kwiatów róży.
Wydawca
-
Rocznik
Tom
19
Numer
1
Opis fizyczny
p.183-193,fig.,ref.
Twórcy
autor
  • Department of Horticultural Sciences, Faculty of Agriculture, Islamic Azad University, Karaj Branch, Iran
Bibliografia
  • Arora A.V.P., Singh S.S., Sindhu D.N., Voleti S.R. 2007. Oxidative stress mechanisms during flower senescence. Plant Stress Global Science Books, Japan, 228 p.
  • Baker J.E., Lieberman M., Anderson J.D. 1978. Inhibition of ethylene pro­duction in fruit slices by rhizobitox- ine analogs and free radical scaven­gers. PLANT PYSIOL. 61: 886-888.
  • Bartoli C.G., Simontacchi M., Guiamet J., Montaldi E., Puntarulo S. 1995. Antioxidant enzymes and lipid peroxidation during aging of Chrysan­themum morifolium RAM petals. PLANT SCI. 104: 161-168.
  • Bates L.S., Waldren R.P., Teare I.D. 1973. Rapid determination of free proline for water stress studies. PLANT SOIL 39: 205-207.
  • Bonnet J.L., Crouzet J. 1977. Lipoxy- genase from tomato fruit: partial pu­rification and study of some properties. J FOOD SCI. 42: 625-628.
  • Bradford M.M. 1976. A rapid and sensi­tive method for quantitation of mi­crogram quantities of protein utilizing the principle of protein dye bind­ing. ANAL BIOCHEM. 72: 248-252.
  • Bueno P., Del Rio L.A. 1992. Purification and properties of lyoxysomal cu- perozinc superoxide dismutase from watermelon (Citrullus vulgaris Scrad.). PLANT PHYSIOL. 8: 331-336.
  • Dhindsa R.S., Plumb-Dhindsa D., Thorpe T. 1981. Leaf senescence cor­related with increased levels of membrane permeability and lipid peroxidation and decreased levels of superoxide dismutase and catalase. J. EXP. BOT. 32: 93-101.
  • Ezhilmathi K., 2001. Physiological and biochemical studies of senescence in gladiolus. M.Sc. Thesis, Indian Agricultural Research Institute, New Delhi-110012, India, 67 p.
  • Ezhilmathi K., Singh V.P., Arora A., Sairam R.K. 2007. Effect of 5- sulfo salicylic acid on antioxidant ac­tivity in relation to vase life of gladiolus cut flowers. PLANT GROWTH REGUL. 51: 99-108.
  • Fukuchi-Mizutani M., Ishiguro K., Nakayuama T., Utsunomia Y., Tanaka Y., Kusumi T., Ueda T. 2000. Mo­lecular and functional characteriza­tion of a rose lipoxygenase cDNA rs- lated to flower senescence. PLANT SCI. 160: 129-137.
  • Halevy A.H., Mayak M. 1981. Senescence and postharvest physiology of cut flowers. Part 2. HORT. REVIEW 3: 59-112.
  • Jones R., McConchie R. 1995. Characteristics of petal senescence in a non- climacteric cut flower. ACTA HORT. 405: 216-223.
  • Kenis J.D, Silvente S.T., Trippi V.S. 1985. Nitrogen metabolism and senescence associated changes during growth of carnation flowers (Dianthus caryophyllus). PHYSIOL. PLANT. 65: 455-459.
  • Ketsa S., Sribunma R. 1985. Pulsing effect of sucrose and sodium benzoate on senescence of 'Christian Dior' cut roses. KASETSART J. 19: 261-264.
  • Kumar N., Srivastava G.C., Dixit K. 2008. Role of sucrose synthase and invertases during petal senescence in rose (Rosa hybrida L.). J. HORT. SCI. BIOTECH. 83: 520-524.
  • Lay-Yee M., Stead A.D., Reid M.S. 1992. Flower senescence in daylily (Hemerocallis). PHYSIOL. PLANT. 86: 308-314.
  • Lynch D.V., Thompson J.E. 1984. Lipoxygenase mediated production of superoxide anion in senescing plant tissue. FEBS LETT. 173 : 251-254.
  • Mayak S., Adam Z. 1984. Accelerated ethylene production by a microsomal membrane fraction from carnation petals in vitro. PLANT SCI. LETT. 33: 345-52.
  • Neill S.J., Desikan R., Clarke A., Hurst R.D., Hancock J. 2002. Hydrogen peroxide and nitric oxide as signal­ling molecules in plants. J. EXP BOT. 53: 1237-1247.
  • Paulin A., Droillard J., Bureau J.M. 1986. Effect of a free radical scavenger, 3,4,5-trichlorophenol, on ethyl­ene production and on changes in lipids and membrane integrity during senescence of petals of cut carnations (Dianthus caryophyllus). PHYSIOL. PLANT. 67: 465-471.
  • Panavas T., Rubinstein B. 1998. Oxidative events during programmed cell death of daylily (Hemerocallis hybrid) petals. PLANT SCI. 133: 125-138.
  • Prochazkova D., Sairam R.K., Srivastava G.C., Singh D.V. 2001. Oxidative stress and antioxidant activity as the basis of senescence in maize leaves. PLANT SCI. 161:765-771.
  • Reid M.S. 2002. Cut Flowers and Greens. Department of Environmental Horticulture. University of California, Davies, CA, 36 p.
  • Sylvestre I., Droillard M.J., Bureau J.M., Paulin A. 1989. Effects of the ethyl- ene rise on the peroxidation of mem­brane lipids during senescence of cut carnations. PLANT PHYSIOL. BIOCHEM. 27: 407-413.
  • Thompson S.E. 1974. The behaviour of cytoplasmic membranes in Phaseolus vulgaris cotyledon during germination. CAN. J. BOT. 2: 534-541.
  • Thompson J.E., Legge R.L., Barber R.L. 1987. The role of free radicals in se­nescence and wounding. NEW PHTOL. 105: 317-334.
  • Van Doorn W.G., Stead A.D. 1994. The physiology of petal senescence which is not initiated by ethylene. In: Scott RJ, Stead AD (eds), Molecular and cellular aspects of plant reproduction. Cambridge University Press, Cambridge, UK, pp. 239-254.
  • Woolhouse H W. 1984. The biochemis­try and regulation of senescence in chloroplasts. CAN. J. BOT. 62: 2934-2942.
Typ dokumentu
Bibliografia
Identyfikatory
Identyfikator YADDA
bwmeta1.element.agro-d178830f-ee5e-48c9-b9e0-2ba10b139486
JavaScript jest wyłączony w Twojej przeglądarce internetowej. Włącz go, a następnie odśwież stronę, aby móc w pełni z niej korzystać.