Yield and level of phenolic compounds in the inflorescence of yellow everlasting Helichrysum arenarium (L.) Moench collected from natural sites

• Autorzy: Forycka A. , Adamczak A. , Opala B. , Gryszczynska A. , Buchwald W.

Warianty tytułu

PL

Plon i zawartość związków fenolowych w kwiatostanach kocanek piaskowych Helichrysum arenarium (l.) Moench zbieranych ze stanu naturalnego

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

Introduction: The inflorescence of Helichrysum arenarium (L.) Moench shows anti-inflammatory, antioxidant, detoxifying properties and is traditionally used in liver and biliary tract diseases. Because of its difficult and expensive cultivation, the plant raw material is mainly harvested from natural sites. Objective: The research aimed to determine the local variation in yield and content of flavonoids and phenolic acids in the yellow everlasting inflorescence against the background of the layer structure of vegetation as the rate of plant succession. Methods: The plant raw material was collected from 30 plots of 1 m2, established for three separate populations developing on sandy fallows near Zielona Góra (western Poland). For each study area, percentage cover of the moss-lichen and herb layers, the height, cover and yield of H. arenarium as well as the height and cover of other herbaceous plants were determined. Total contents of flavonoids (expressed as quercetin) and phenolic acids (calculated as caffeic acid) were measured spectrophotometrically, according to Polish Pharmacopoeia. Results: Everlastings reached a cover of up to 70% and the maximum air-dry matter yield of 46.42 g/m2. The height, coverage and yield of H. arenarium were correlated with the parameters describing the herb layer. The content of flavonoids ranged from 0.56 to 0.99%, while that of phenolic acids from 0.82 to 1.80% DM. Conclusions: Yellow everlasting is an important species of early fallows on poor sandy soils and these habitats constitute a rich natural source of herbal raw material. Inflorescences harvested from natural sites are distinguished by a high and similar content of polyphenols and usually meet the requirements of Polish Pharmacopoeia.

PL

Wstęp: Kwiatostany Helichrysum arenarium (L.) Moench są tradycyjnie stosowane w chorobach wątroby i dróg żółciowych, wykazując właściwości przeciwzapalne, antyoksydacyjne oraz odtruwające. Ze względu na trudności w uprawie tego gatunku i wysokie koszty prowadzenia plantacji, surowiec zielarski wciąż jest pozyskiwany głównie ze stanu naturalnego. Cel: W prezentowanych badaniach określono lokalną zmienność plonowania oraz zawartości flawonoidów i fenolokwasów ogółem w kwiatostanach kocanek piaskowych na tle struktury warstwowej roślinności jako wskaźnika zaawansowania procesu sukcesji. Metody: Surowiec zielarski zebrano z 30 poletek (1 m2), wyznaczonych w obrębie trzech populacji kocanek występujących na piaszczystych odłogach w okolicach Zielonej Góry. Na każdej powierzchni badawczej opisano strukturę warstwową roślinności: procentowe pokrycie warstwy porostowo-mszystej i zielnej, wysokość, pokrycie i plon H. arenarium oraz przeciętną wysokość i pokrycie pozostałych gatunków zielnych. Całkowitą zawartość flawonoidów (w przeliczeniu na kwercetynę) i fenolokwasów (w przeliczeniu na kwas kawowy) oznaczono metodą spektrofotometryczną według Farmakopei Polskiej. Wyniki: Kocanki uzyskiwały pokrycie do 70%, a maksymalny plon powietrznie suchej masy kwiatostanów wynosił 46,42 g/m2. Wysokość, pokrycie i plon H. arenarium były skorelowane z parametrami opisującymi warstwę zielną. Poziom flawonoidów w surowcu mieścił się w granicach od 0,56 do 0,99% suchej masy (s.m.), natomiast kwasów fenolowych: od 0,82 do 1,80% s.m. Wnioski: Kocanki stanowią ważny element roślinności wczesnych odłogów powstałych na ubogich, piaszczystych glebach. Dlatego też, wspomniane siedliska mogą być zasobnym źródłem surowca zielarskiego. Kwiatostany zbierane ze stanu naturalnego charakteryzują się wysoką i wyrównaną zawartością związków polifenolowych i zwykle spełniają wymagania Farmakopei Polskiej.

• Wydawca: -
• Czasopismo: Herba Polonica
• Rocznik: 2016
• Tom: 62
• Numer: 4
• Opis fizyczny: p.11-21,fig.,ref.

Twórcy

autor

Forycka A.

• Department of Botany, Breeding and Agricultural Technology of Medicinal Plants, Institute of Natural Fibres and Medicinal Plants, Kolejowa 2, 62-064 Plewiska, Poland

autor

Adamczak A.

• Department of Botany, Breeding and Agricultural Technology of Medicinal Plants, Institute of Natural Fibres and Medicinal Plants, Kolejowa 2, 62-064 Plewiska, Poland

autor

Opala B.

• Department of Pharmacology and Phytochemistry, Institute of Natural Fibres and Medicinal Plants, Kolejowa 2, 62-064 Plewiska, Poland

autor

Gryszczynska A.

• Department of Pharmacology and Phytochemistry, Institute of Natural Fibres and Medicinal Plants, Kolejowa 2, 62-064 Plewiska, Poland

autor

Buchwald W.

• Department of Botany, Breeding and Agricultural Technology of Medicinal Plants, Institute of Natural Fibres and Medicinal Plants, Kolejowa 2, 62-064 Plewiska, Poland

Bibliografia

• 1. Ożarowski A, ed. Ziołolecznictwo. Poradnik dla lekarzy. 2nd ed. Warszawa. PZWL, 1980:156-157.
• 2. Smirnova LP, Pervykh LN. Quantitative determination of the total content of flavonoids in the flowers of immortelle Helichrysum arenarium. Pharm Chem J 1998; 32(6):321-324.
• 3. Czinner E, Kursinszki L, Baumann D, Hamburger M, Kéry Á, Szőke É et al. Phytochemical study of phenolic compounds from Helichrysi flos by LC-DAD-MS. In: Rauter AP, Palma FB, Justino J, Araújo ME, Pina dos Santos S, eds. Natural Products in the New Millennium: Prospects and Industrial Application. Dordrecht-Boston-London. Kluwer Academic Publishers, 2002:99-109.
• 4. Lemberkovics É, Czinner E, Szentmihályi K, Balázs A, Szőke É. Comparative evaluation of Helichrysi flos herbal extracts as dietary sources of plant polyphenols, and macro- and microelements. Food Chem 2002; 78:119-127.
• 5. Sroka Z, Kuta I, Cisowski W, Dryś A. Antiradical activity of hydrolyzed and non-hydrolyzed extracts from Helichrysi inflorescentia and its phenolic contents. Z Naturforsch 2004; 59c:363-367.
• 6. Bryksa-Godzisz M, Węglarz Z, Przybył J. Phenolic compounds in yellow everlasting (Helichrysum arenarium (L.) Moench) growing wild in the middle part of the Bug river valley. Herba Pol 2006; 52(4):26-31.
• 7. Pacholak H, Załęcki R. Sposoby rozmnażania kocanek piaskowych. Wiad Ziel 1979; 21(3):10-11.
• 8. Buchwald W. Kocanki piaskowe – ginącym gatunkiem. Wiad Ziel 1992; 34(5):5-6.
• 9. Sawilska AK, Jendrzejczak E. Efficiency of Sandy Everlasting [Helichrysum arenarium (L.) Moench] cultivation from in vitro seedlings and achenes. Ind Crop Prod 2013; (43):50-55. doi: http://dx.doi.org/10.1016/j.indcrop.2012.07.009
• 10. Mucina L. Conspectus of classes of European vegetation. Folia Geobot Phytotax 1997; 32:117-172.
• 11. Matuszkiewicz W. Przewodnik do oznaczania zbiorowisk roślinnych Polski. Warszawa. PWN, 2001:119.
• 12. Ratyńska H, Wojterska M, Brzeg A, Kołacz M. Multimedialna encyklopedia zbiorowisk roślinnych Polski. Bydgoszcz. Uniwersytet Kazimierza Wielkiego, 2010: CD.
• 13. Nowiński M. Dzieje upraw i roślin leczniczych. Warszawa. PWRiL, 1980:186-188.
• 14. Szafer W, Kulczyński S, Pawłowski B. Rośliny polskie. 5th ed., vol. II. Warszawa. PWN, 1986:671.
• 15. Rutkowski L. Klucz do oznaczania roślin naczyniowych Polski niżowej. 2nd ed. Warszawa. PWN, 2008:467-468.
• 16. Zarzycki K, Trzcińska-Tacik H, Różański W, Szeląg Z, Wołek J, Korzeniak U. Ecological indicator values of vascular plants of Poland. Kraków. W. Szafer Institute of Botany, Polish Academy of Sciences, 2002:65.
• 17. Wojterska M. Struktura krajobrazów roślinnych Pojezierza Międzychodzko-Sierakowskiego. Poznań. Bogucki Wyd. Nauk., 2003:168-181.
• 18. Adamczak A. Vegetation of early stages of succession on sandy post-cultivated lands – selected examples. In: Brzeg A, Wojterska M, eds. Coniferous forest vegetation – differentiation, dynamics and transformations. Poznań. Wyd. Nauk. UAM, Seria Biologia 2004; 69:233-239.
• 19. Forycka A, Buchwald W. Badania zasobów naturalnych roślin leczniczych objętych w Polsce ochroną prawną. Herba Pol 2008; 54(3):81-112.
• 20. Farmakopea Polska. 6th ed. Warszawa. PTF, 2002:150, 860-861, 881.
• 21. Farmakopea Polska. 9th ed., vol. II. Warszawa. PTF, 2011:3558-3559, 3563.
• 22. Geszprych A, Rosłon W, Przybył J. Ocena chemiczna dziko rosnących populacji kocanek piaskowych (Helichrysum arenarium (L.) Moench). Folia Hort 2003; suppl. 1:370-372.
• 23. Sawilska AK, Mielcarek S. The content of flavonoids and polyphenolic acids in inflorescences of Sandy Everlasting [Helichrysum arenarium (L.) Moench] from natural stands and plantations. Herba Pol 2009; 55(3):118-126.
• 24. Faliński JB. Sukcesja roślinności na nieużytkach porolnych jako przejaw dynamiki ekosystemu wyzwolonego spod długotrwałej presji antropogenicznej. Część I: Podstawy teoretyczne i prezentacja wybranej serii sukcesji wtórnej. Wiad Bot 1986; 30(1):25-50.
• 25. Adamczak A. Anthoxanthum aristatum Boiss. w zbiorowiskach roślinnych odłogów na terenie Poznania. Acta Bot Warm Masur 2007; 4:321-332.
• 26. Sawilska AK, Dąbrowska B. Rośliny o właściwościach leczniczych zasiedlające grunty porolne na glebach słabych. Acta Bot Warm Masur 2007; 4:449-461.
• 27. Sawilska AK. Dynamics of Helichrysum arenarium (L.) Moench populations growing in fallow field on barren soil. Ecol Quest 2008; 9:93-101. doi: http://dx.doi.org/10.2478/v10090-009-0024-x
• 28. Adamczak A. Acer negundo L. i Padus serotina (Ehrh.) Borkh. jako kenofity inicjujące rozwój formacji drzewiastej na odłogach. Przegl Przyr 2007; 18(1-2):243-253.
• 29. Sawilska AK. The influence of origin of Helichrysum arenarium (L.) Moench individuals on their inflorescence yield and germination ability. Acta Agrobot 2007; 60(2):111-116.

Identyfikatory

DOI

10.1515/hepo-2016-0019