PL EN


Preferencje help
Widoczny [Schowaj] Abstrakt
Liczba wyników

Czasopismo

2016 | 69 | 1 |

Tytuł artykułu

Comparative reproduction mechanisms of three species of Ocimum L. (Lamiaceae)

Treść / Zawartość

Warianty tytułu

PL
Porównanie mechanizmów reprodukcji trzech gatunków z rodzaju Ocimum L. (Lamiaceae)

Języki publikacji

EN

Abstrakty

EN
Ocimum species have a combination of reproductive system which varies with the locality and cultivar. We have studied here the reproductive mechanisms of five variants of three Ocimum species in Nigeria, namely: Ocimum canum Sims., O. basilicum L., and O. americanum L. Flowers from each variant were subjected to open and bagged pollination treatments of hand self-pollination, spontaneous selfpollination and emasculation. All open treatments of the five Ocimum variants produced more fruit and seed than the corresponding bagged treatments. The two O. canum variants and O. basilicum ‘b1’ produced high fruit and seed set in the open and bagged treatments of spontaneous self-pollination. Ocimum basilicum ‘b2’ and O. americanum produced higher fruit and seed set in the self-pollination open treatment but significantly lower fruit and seed set in the bagged treatment. Fewer fruit and seeds were produced in the emasculated open treatments but none in the emasculated bagged treatments of the five Ocimum variants. The floral foragers comprising of bees, wasps and butterflies visited the Ocimum species to collect pollen or nectar in the open treatments. The two O. canum variants and O. basilicum ‘b1’ variant reproduced mainly through autogamy but O. basilicum ‘b2’ and O. americanum showed mixed reproduction of autogamy and outcrosssing. Insect visitation to the flowers enhanced pollination resulting in higher fruit and seed set in all the Ocimum species studied.
PL
Gatunki z rodzaju Ocimum, zależnie od występowania i odmiany, reprezentują różne systemy reprodukcyjne. W pracy badano systemy reprodukcyjne trzech gatunków Ocimum canum Sims., O. basilicum L. i O. americanum L. Badania prowadzono w Nigerii. Zastosowano następujące sposoby zapylania: zapylanie swobodne (z udziałem owadów zapylających) oraz pod izolatorem (dopylanie pyłkiem własnym, spontaniczne samozapylanie z usuwaniem pylników). Wszystkie gatunki produkowały więcej owoców i nasion w warunkach swobodnego dostępu owadów do kwiatów. Kwiaty O. canum i O. basilicum ‘b1’ swobodnie dostępne dla owadów oraz spontanicznie samozapylane pod izolatorami produkowały najwięcej owoców i nasion. Ocimum basilicum ‘b2’ oraz O. americanum produkowały najwięcej owoców i nasion podczas samozapylenia z kwiatów nieizolowanych, istotnie mniej owoców i nasion powstawało z kwiatów izolowanych od owadów. Mniej owoców uzyskiwano z kwiatów nieizolowanych, z których usuwano pylniki. Kwiaty Ocimum, izolowane bez pylników, nie wiązały nasion i nie tworzyły owoców. Owady odwiedzające kwiaty badanych gatunków z rodzaju Ocimum (pszczoły, osy, motyle) korzystały z nektaru lub pyłku. Ocimum canum i O. basilicum ‘b1’ rozmnażają się głównie autogamicznie. Ocimum basilicum ‘b2’ oraz O. americanum wykazują mieszane systemy reprodukcyjne (autogamia oraz zapylenie krzyżowe). W przypadku wszystkich badanych gatunków z rodzaju Ocimum, owady wspomagają zapylenie, powodując wzrost produkcji owoców i wiązanych nasion.

Słowa kluczowe

Wydawca

-

Czasopismo

Rocznik

Tom

69

Numer

1

Opis fizyczny

Article 1648 [9p.], ref.

Twórcy

autor
  • Department of Botany, Faculty of Science, Obafemi Awolowo University, Ile-Ife, Nigeria
autor
  • Department of Botany, Faculty of Science, Obafemi Awolowo University, Ile-Ife, Nigeria
autor
  • Department of Botany, Faculty of Science, Obafemi Awolowo University, Ile-Ife, Nigeria

Bibliografia

  • 1. Paton A. A synopsis of Ocimum L. (Labiatae) in Africa. Kew Bull. 1992;47:403–435. http://dx.doi.org/10.2307/4110571
  • 2. Burkill HM. The useful plants of West tropical Africa. 2nd ed. Kew: Royal Botanic Gardens; 1995.
  • 3. Lawrence BM. Chemical components of Labiatae oils and their exploitation. In: Harley RM, Reynolds T, editors. Advances in Labiate science. Kew: Royal Botanic Gardens; 1992. p. 399–436.
  • 4. Keng H. Labiatae. In: van Steenis CGGJ, editor. Flora Malesiana. Alphen aan den Rijn: Sijthoff and Noordhoff International Publishers; 1978. p. 301–394. (vol 8).
  • 5. Gonzilez-Tejero MR, Molero-Mesa J, Casares-Porcel M. The family Labiatae in popular medicine in eastern Andalusia: the province of Granada. In: Harley RM, Reynolds T, editors.Advances in Labiate science. Kew: Royal Botanic Gardens; 1992. p. 489–506.
  • 6. Heinrich M. Economic botany of American Labiatae. In: Harley RM, Reynolds T, editors. Advances in Labiate science. Kew: Royal Botanic Gardens; 1992. p. 475–488.
  • 7. Rivera-Nufiez D, Obón de Castro C. The ethnobotany of Old World Labiatae. In: Harley RM, Reynolds T, editors. Advances in Labiate science. Kew: Royal Botanic Gardens; 1992.p. 455–474.
  • 8. Githinji CW, Kokwaro JO. Ethnomedicinal study of major species in the family Labiatae from Kenya. J Ethnopharmacol. 1993;39:197–203. http://dx.doi.org/10.1016/0378-8741(93)90036-5
  • 9. Darrah HH. The cultivated Basils. Independence, MO: Thomas Buckeye Printing Company; 1980.
  • 10. Reddy TB, Rangaiah K, Reddi EUB, Reddi CB. Consequences of nectar robbing in the pollination ecology of Vitex negundo (Verbinaceae). Curr Sci. 1992;62:690–691.
  • 11. Raju AJS. Reproductive ecology of Ocimum americanum L. and O. basilicum L. (Lamiaceae) in India. Plant Species Biol. 1989;4:107–116. http://dx.doi.org/10.1111/j.1442-1984.1989.tb00052.x
  • 12. Partap T. Mountain agriculture, marginal land and sustainable livelihoods: challenges and opportunities. In: Proceedings of the International Symposium on Mountain Agriculturein HKH Region; 2001 May 21–24; International Centre for Integrated Mountain Development (ICIMOD), Kathmandu, Nepal. 2001.
  • 13. Darrah HH. Investigation of the cultivars of the Basils (Ocimum). Econ Bot. 1974;28:63–67. http://dx.doi.org/10.1007/BF02861381
  • 14. Khosla MK. Inter-relationship studies of different species of the genus Ocimum L. Journal of Plant Anatomy and Morphology. 1986;3(2):157–167.
  • 15. Almeida OS, Silva AHB, Silva AB, Amaral CLF. Study of floral biology and reproductive mechanisms of Ocimum officinalis L. aimed at breeding. Acta Sci. 2004;26:343–348.
  • 16. Nation GR, Janick J, Simon EJ. Estimation of outcrossing in basil. HortScience. 1992;27:1221–1222.
  • 17. Michener CD. The bees of the world. Baltimore, MD: The John Hopkins University Press; 2000.
  • 18. Eardley C, Kuhlmann M, Pouly A. The bee genera and subgenera of sub-Saharan Africa. Brussels: Belgian Development Cooperation; 2010. (Abc Taxa; vol 7).
  • 19. Klein AM, Vaissieve BE, Cane JH, Steffan-Dewenter I, Cunningham SA, Kremen C, Tscharntke T. Importance of pollinators in changing landscapes for world crops. Proc BiolSci. 2007;274:303–313. http://dx.doi.org/10.1098/rspb.2006.3721
  • 20. Cruden RW. Implications of evolutionary theory to applied pollination ecology. Acta Hortic. 1997;437:27–51. http://dx.doi.org/10.17660/ActaHortic.1997.437.1
  • 21. Silva AB, Souza MF, Harley A, Almeida OS, Amaral CFL. Floral biology and reproductive mechanisms of Ocimum canum Sims. (Lamiaceae). Biotemas. 2008;21:33–40. http://dx.doi.org/10.5007/2175-7925.2008v21n2p33
  • 22. Khosla MK. Study of inter-relationship, phylogeny and evolutionary tendencies in genus Ocimum. Indian Journal of Genetics. 1995;55:71–78.
  • 23. Rudall P. Flower anatomy of the sub-tribe Hyptidinae (Labiatae). Bot J Linn Soc. 1981;8:251–262. http://dx.doi.org/10.1111/j.1095-8339.1981.tb00157.x
  • 24. Whitten WM. Pollination ecology of Monarda didyma, M. clinopodia and hybrids (Lamiaceae) in the southern Appalachian Mountains. Am J Bot. 1981;68:435–442. http://dx.doi.org/10.2307/2442781
  • 25. Cruden RW, Hermanutz L, Shuttleworth J. The pollination biology and breeding system of Monarda fistulosa (Labiatae). Oecologia. 1984;64:104–110. http://dx.doi.org/10.1007/ BF00377551
  • 26. Pushpangadan P, Sobti SN. Cytogenetical studies in the genus Ocimum. 1. Origin of O. americanum, cytotaxonomical and experimental proof. Cytologia. 1982;47:575–583.http://dx.doi.org/10.1508/cytologia.47.575
  • 27. Krishnan R. Natural out crossing in sweet basil, Ocimum basilicum L. Industrial Perfumer. 1981;25:74–77.
  • 28. Kulloli SK, Chandore AN, Aitawade MM. Nectar dynamics and pollination studies in three species of Lamiaceae. Curr Sci. 2011;25:509–516.
  • 29. Castellanos MC, Wilson P, Thomas JD. Pollen transfer by hummingbirds and bumblebees and the divergence of pollination models penstemon. Evolution. 2003;57:2742–2752.http://dx.doi.org/10.1111/j.0014-3820.2003.tb01516.x
  • 30. Kudo G. Anther arrangement influences pollen deposition and removal in hermaphroditic flowers. Funct Ecol. 2003;17:349–355.
  • 31. Sadeh A, Shidima A, Keasar T. The carpenter bee Xylocopa pubescens as an agricultural pollinator in greenhouses. Apidologie. 2007;38:508–517.
  • 32. Harder LD, Barrett SCH. Mating costs of large floral displays in hermaphrodite plants. Nature. 1995;373:512–514. http://dx.doi.org/10.1038/373512a0
  • 33. Harder LD, Barrett SCH. Pollen dispersal and mating patterns in animal-pollinated pllants. In: Lloyd DG, Barrett SCH, editors. Floral biology: studies on floral evolution inanimal-pollinated plants. New York, NY: Chapman and Hall; 1996. p. 140–190. http:// dx.doi.org/10.1007/978-1-4613-1165-2_6
  • 34. Snow AA, Spira TP, Simpson R, Klips PA. The eclogy of geitonogamous pollination. In: Lloyd DG, Barrett SCH, editors. Floral biology: studies on floral evolution in animalpollinated plants. New York, NY: Chapman and Hall; 1996. p. 191–216. http://dx.doi.org/10.1007/978-1-4613-1165-2_7
  • 35. Karron JD, Holmquist KG, Flanagan RJ, Mitchell RJ. Pollinator visitation patterns strongly influence among flower variation in selfing rate. Ann Bot. 2009;103:1379–1383. http://dx.doi.org/10.1093/aob/mcp030
  • 36. Simpson BB, Neff JL. Evolution and diversity of floral rewards. In: Jones CE, Little RJ, editors. Handbook of experimental pollination biology. New York, NY: Scientific and AcademicEditions; 1983. p. 117–141.

Typ dokumentu

Bibliografia

Identyfikatory

Identyfikator YADDA

bwmeta1.element.agro-c08893d5-efdc-4d8f-8fd9-0367aaba0a13
JavaScript jest wyłączony w Twojej przeglądarce internetowej. Włącz go, a następnie odśwież stronę, aby móc w pełni z niej korzystać.