The effect of above-water artificial light on the zooplankton abundance in cages for fish rearing

• Autorzy: Springer A. , Skrzypczak A.

Warianty tytułu

PL

Wpływ nadwodnego światła na liczebność zooplanktonu w sadzach do podchowu ryb

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

The fish larvae rearing method in illuminated cages was originally dedicated to the coregonid spp. Its technical variants are currently applied in rearing other fish species. This method is based on the attraction of zooplankton by a light source placed inside a fish cage. Zooplankton is the sole or main food source for the fish inside such a cage, therefore an effective means of attracting the plankton is critical to effective fish rearing. The aim of this paper is to assess the influence of above-water illumination in the zooplankton abundance in lake-based fish rearing cages. The experiment was conducted in eutrophic Lake Maróz (Northeastern Poland). Observations were conducted starting at dusk in lit (24V, 60W electric bulb located just above the water surface) and unlit cages. The above-water illumination significantly increases the abundance of the Cladocera and adult Copepoda forms inside the cage. At the same time, a significantly reduced attraction to visible light was noted for the juvenile Copepoda and Rotifera forms. Overall, the above-water illumination is an effective method. The level of zooplankton density and its overall abundance might be dependent on the zooplankton’s qualitative structure.

PL

Sadze oświetlone pierwszy raz zastosowano przy podchowie larw koregonidów. W różnych wariantach technologicznych jest obecnie wykorzystywana przy podchowie innych gatunków ryb. Metoda ta jest oparta na wabieniu zooplanktonu przez światło umieszczone we wnętrzu sadza. Dla ryb w sadzach zooplankton jest głównym źródłem pokarmu. Dlatego skuteczność jego wabienia jest kluczowa dla efektywności podchowu. Celem niniejszej pracy jest ocena wpływu nadwodnego oświetlenia na liczebność zooplanktonu w środowisku jeziorowych sadzów do podchowu ryb. Eksperyment przeprowadzono w jeziorze Maróz (północno-wschodnia Polska). Obserwacje prowadzono w sadzach oświetlonych od zmierzchu żarówką elektryczną umieszczoną tuż nad powierzchnią wody (24V, 60W) oraz w sadzach nieoświetlonych. Oświetlenie nadwodne w porze nocnej istotnie zwiększa liczebność Cladocera oraz dorosłych form Copepoda w sadzach. Jednocześnie wykazano istotnie mniejsze wabiące oddziaływanie światła widzialnego na młodociane formy Copepoda oraz Rotifera. Nadwodne źródło światła jest rozwiązaniem efektywnym. Zagęszczenie zooplanktonu pod wpływem światła i ogólna liczebność organizmów pokarmowych dla ryb mogą być znacząco uzależnione od struktury jakościowej zooplanktonu.

• Wydawca: -
• Czasopismo: Polish Journal of Natural Sciences
• Rocznik: 2015
• Tom: 30
• Numer: 4
• Opis fizyczny: p.379-387,fig.,ref.

Twórcy

autor

Springer A.

• Department of Tourism, Recreation and Ecology, University of Warmia and Mazury in Olsztyn, Oczapowskiego 5, 10-719 Olsztyn, Poland

autor

Skrzypczak A.

• Department of Tourism, Recreation and Ecology, University of Warmia and Mazury in Olsztyn, Olsztyn, Poland

Bibliografia

• CECCUZI P., TEROVA G., BRAMBILLA F., ANTONINI M., SAROGLIA M. 2010. Observations of eurasian Perch (Perca fluviatilis, L.) post-larvae growth performances reared in an illuminated floating cage in Varese lake (N-W Italy) over a two years period. Ital. J. Anim. Sci., 9: 65–72.
• DODSON S.I., TOLLRIAN R., LAMPERT W. 1997. Daphnia swimming behavior during vertical migration. J. Plankton Res., 19: 969–978.
• FERMIN A.C., SERONAY G.A. 1997. Effects of different illumination levels on zooplankton abundance, feeding periodicity, growth and survival of the Asian sea bass, Lates calcarifer (Bloch), fry in illuminated floating nursery cages. Aquaculture, 157(3–4): 227–237.
• FLÖSSNER VON D. 1972. Krebstiere, Crustacea. Kiemen- und Blattfüsser, Branchiopoda, Fischläuse, Branchiura. VEB Gustav Fischer Verlag, Jena.
• FURGALA-SELEZNIOW G., SKRZYPCZAK A., KUCHARCZYK D., KUJAWA R., MAMCARZ A., ŻARSKI D., TARGOŃSKA K. 2014. Food selection of burbot (Lota lota L.) larvae reared in illuminated net cages in mesotrophic Lake Maróz (north-eastern Poland). Aquacult. Int., 22(1): 41–52.
• GOODMAN J. W. 1993. Static optics. Wyd. Nauk. PWN, Warszawa, Poland.
• KIEFER F., FRYER G. 1978. Das Zooplankton der Biennengewasser. 2 Teil.
• KIM H.-J., SAWADA C., RHEE J.-S., LEE J.-S., SUGA K., HAGIWARA A. 2014. Nutritional effects on the visual system of the rotifer Brachionus plicatilis sensu stricto (Rotifera: Monogononta). J. Exp. Mar. Biol. Ecol., 460: 177–183.
• KOSTE W. 1978. Rotatoria. Die Rädertiere Mitteleuropas. Gebrüder Borntraeger, Berlin – Stuttgart. I Textband: 52-600, II Tafelband.
• KUCZYŃSKA-KIPPEN N. 2008. Spatial distribution of zooplankton communities between the Sphagnum mat and open water in a dystrophic lake. Pol. J. Ecol., 56(1): 57–64.
• LAMPERT W. 1992. Zooplankton vertical migrations: Implications for phytoplankton-zooplankton interactions. Arch. Hydrobiol. Beih. Ergebn. Limnol., 35: 69–78.
• LAMPERT W., SOMMER U. 2001. Ecology of inland waters. Wyd. Nauk. PWN, Warszawa, Poland.
• LIVINGS M.E., SCHOENEBECK C.W., BROWN M.L. 2010. Comparison of two zooplankton sampling gears in shallow, homogeneous lakes. The Prairie Naturalist. 42, 19–23.
• LOOSE C.J. 1993. Daphnia diel vertical migration behavior. Response to vertebrate predator abundance. Arch. Hydrobiol. Beih. Ergebn. Limnol., 39: 29–36.
• MAMCARZ A. 1995a. Rearing of coregonid (Coregonus sp.) larvae in illuminated cages: a review. Arch. Hydrobiol. Spec. Issues Advanc. Limnol., 46: 287–292.
• MAMCARZ A. 1995b. Changes in zooplankton structure around illuminated cage culture. Aquacult. Res., 26: 515–525.
• MAMCARZ A., NOWAK M. 1987. New version of an illuminated cage for coregonid rearing. Aquaculture, 65: 183–188.
• MARTYNOVA D.M., GORDEEVA A.V. 2010. Light-dependent behavior of abundant zooplankton species in the White Sea. J. Plan. Res., 32(4): 441–456.
• MOORE A.E. 1912. Concerning negative phototropism in Daphnia pulex. J. Exp. Zoology, 13: 573–575.
• NESBITT L.M., RIESSEN H.P., RAMCHARAN C.W. 1996. Opposing predation pressures and induced migration responses in Daphnia. Limnol. Oceanogr., 41: 1306–1311.
• PAGGI J.C., MENDOZA R.O., DEBONIS C.J., DE PAGGI S.B.J. 2001. A simple and inexpensive trap-tube sampler for zooplankton collection in shallow waters. Hydrobiologia, 464: 45–49.
• PASTERNAK A.F., MIKHEEV V.N., WANZENBÖCK J. 2006. How plankton copepods avoid fish predation: from individual responses to variations of the life cycle. J. Ichthyol. 46: 220–226.
• RINGELBERG J., FLIK B.J.G. 1994. Increased phototaxis in the field leads to enhanced diel vertical migration. Limnol. Oceanogr., 39: 1855–1864.
• SICHROWSKY U., SCHABETSBERGER R., GASSNER H., KAISER R., BOUFA B., PSENNER R. 2013. Cradle or plague pit? Illuminated cages increase the transmission risk of parasites from copepods to coregonids. Aquaculture 392–395: 8–15.
• SKRZYPCZAK A., MAMCARZ A., KUCHARCZYK D., KUJAWA R. 1998a. Use of a floating pump to collect and transfer live zooplankton as food for percid larvae reared in net cages. Prog. Fish-Cult., 60: 239–241.
• SKRZYPCZAK A., MAMCARZ A., KUCHARCZYK D., KUJAWA R., FURGALA-SELEZNIOW G. 1998b. Feeding habits of larval Eurasian perch, Perca fluviatilis (Percidae). Ital. J. Zool., 65: Suppl: 243–245.
• STORZ U.C., PAUL R.J. 1998. Phototaxis in water fleas (Daphnia magna) is differently influenced by visible and UV light. J. Comp. Physiol. A Sens. Neural Behav. Physiol., 183: 709–717.
• SUTHERS I.M., RISSIK D. 2009. Plankton: A guide to their ecology and monitoring for water quality. CSIRO Publishing.
• WANG S., XIE P., WU S., WU A. 2007. Crustacea zooplankton distribution patterns and their biomass as related to trophic indicators of 29 shallow subtropical lakes. Limnologica, 37: 242–249.
• WILLIAMSON C., FISCHER J., BOLLENS S., OVERHOLT E., BRECKENRIDGE J. 2011. Toward a more comprehensive theory of zooplankton diel vertical migration: Integrating ultraviolet radiation and water transparency into the biotic paradigm. Limnol. Oceanogr., 56(5): 1603–1623.
• ŽILIUKIENĖ V. 2005. The diet of Abramis brama (L.) larvae reared in illuminated cages. J. Appl. Ichthyol., 21(5): 406–409.