PL EN


Preferencje help
Widoczny [Schowaj] Abstrakt
Liczba wyników
Czasopismo
2017 | 63 | 4 |
Tytuł artykułu

Chemical compounds and antimicrobial activity of petitgrain (Citrus aurantium L. var. amara) essential oil

Treść / Zawartość
Warianty tytułu
PL
Skład chemiczny i aktywność przeciwdrobnoustrojowa olejku eterycznego petitgrain (Citrus aurantium L. var. amara)
Języki publikacji
EN
Abstrakty
EN
Introduction: Due to its low cost and easy availability on the market, the petitgrain oil is commonly used in food, cosmetics, and aromatherapy. Objective: The examination of chemical composition and antibacterial activity of commercial petitgrain oil. Methods: Identification of chemical components of the petitgrain oil was performed by gas chromatography (GC). The minimum inhibitory concentrations (MIC) and minimum bactericidal/fungicidal concentrations (MBC/MFC) were determined using macrodilution method for the reference strains of bacteria and fungi. Results: Twenty components were identified. The petitgrain oil contained mostly oxygenated monoterpene hydrocarbons (98.01%), and the main components included linalyl acetate (48.06%) and linalool (26.88%). The MIC/MBC of the petitgrain oil for bacteria was in the range of 0.63–5.0/1.25–5.0 mg/ml and for fungi in the range of 1.25–40/5.0–80 mg/ml. Conclusion: The petitgrain oil had higher antibacterial activity than antifungal activity. Bacillus subtilis among the tested bacteria and Aspergillus niger and Penicillium expansum among the fungi were found to be highly inhibited by the petitgrain oil.
PL
Wstęp: Olejek eteryczny petitgrain ze względu na niewielki koszt i dostępność na rynku jest często stosowany w produkcji żywności, kosmetyków i aromaterapii. Cel: Zbadano skład chemiczny i aktywność przeciwdrobnoustrojową handlowego olejku petitgrain. Metodyka: Identyfikację chemicznych składników olejku petitgrain wykonano przy użyciu chromatografii gazowej (GC). Minimalne stężenia hamujące (mic) oraz minimalne stężenia bakteriobójcze/grzybobójcze (MBC/MFC) zostały oznaczone metodą makrorozcieńczeń wobec referencyjnych szczepów bakterii i grzybów. Wyniki: Zidentyfikowano dwadzieścia kompotentów. Olejek petitgrain zawierał najwięcej utlenionych węglowodorów monoterpenowych (98.01%), a głównymi składnikami były: octan linalilu (48,06%) i linalool (26,88%). MIC/MBC olejku petitgrain wobec bakterii były w granicach 0,63–5,0/1,25−5,0 mg/ml, a wobec grzybów były w zakresie 1,25–40/5,0–80 mg/ml. Wnioski: Olejek petitgrain miał większą aktywność przeciwbakteryjną niż przeciwgrzybiczną. Spośród badanych bakterii Bacillus subtilis, a spośród grzybów Aspergillus niger i Penicillium expansum były najsilniej hamowane przez olejek petitgrain.
Wydawca
-
Czasopismo
Rocznik
Tom
63
Numer
4
Opis fizyczny
p.18-25,ref.
Twórcy
autor
  • Department of Biotechnology, Microbiology and Food Evaluation, Warsaw University of Life Sciences – SGGW, Nowoursynowska 159c, 02-776 Warsaw, Poland
  • Department of Biotechnology, Microbiology and Food Evaluation, Warsaw University of Life Sciences – SGGW, Nowoursynowska 159c, 02-776 Warsaw, Poland
  • Department of Vegetable and Medicinal Plants, Warsaw University of Life Sciences – SGGW, Nowoursynowska 159c, 02-776 Warsaw, Poland
autor
  • Department of Biotechnology, Microbiology and Food Evaluation, Warsaw University of Life Sciences – SGGW, Nowoursynowska 159c, 02-776 Warsaw, Poland
autor
  • Department of Biotechnology, Microbiology and Food Evaluation, Warsaw University of Life Sciences – SGGW, Nowoursynowska 159c, 02-776 Warsaw, Poland
Bibliografia
  • 1.Bourgou S, Rahali FZ, Ourghemmi I, Saïdani Tounsi M. Changes of peel essential oil composition of four Tunisian citrus during fruit maturation. Sci World J 2012; 528593. doi: http://dx.doi.org/10.1100/2012/528593
  • 2. Zhao HY, Yang L, Wei J, Huang M, Jiang JG. Bioactivity evaluations of ingredients extracted from the flowers of Citrus aurantium L. var. amara Engl Food Chem 2012; 135:1275-1281.
  • 3. Kirbaslar G, Kirbaslar SI. Composition of Turkish bitter orange and lemon leaf oils. J Essent Oil Res 2004; 16:105-108.
  • 4. Ellouze I, Abderrabba M, Sabaou N, Mathieu F, Lebrihi A, Bauajila J. Season’s variation impact on Citrus aurantium leaves essential oil: chemical composition and biological activities. J Food Sci 2012; 77(9):T173-80.
  • 5. Do TKT, Hadji-Minaglou F, Antoniotti S, Fernandez X. Authenticity of essential oils. TrACTrend Anal Chem 2015; 66:146-157.
  • 6. Caiger S. Essential oils and oleoresins market insider. http://www.intracen.org/itc/market-insider.
  • 7. Lota ML, de Rocca Serra D, Jacquemond C, Tomi F, Casanova J. Chemical variability of peel and leaf essential oils of sour orange. Flavour Frag J 2001; 16:89-96.
  • 8. Ali B, Al-Wabel NA, Shams S, Ahamad A, Khan SA, Anwar F. Essnetial oils used in aromatherapy: A systemic review. Asian Pac J Trop Biomed 2015; 5:601-611.
  • 9. Kiple KF, Ornelas KC. The Cambridge World History of Food. Cambridge 2000:1822-1826.
  • 10. Hammer KA, Carson CF, Riley TV. In vitro activity of Melaleuca alternifolia (tea tree) oil against dermatophytes and other filamentous fungi. J Antimicrob Chemother 2002; 50:195-199.
  • 11. International Organization for Standards. ISO 20776–1. Clinical laboratory testing and in vitro diagnostic test systems – Susceptibility testing of infectious agents and evaluation of performance of antimicrobial susceptibility test devices – Part 1: Reference method for testing the in vitro activity of antimicrobial agents against rapidly growing aerobic bacteria involved in infectious diseases. International Organization for Standards, Geneva, Switzerland. 15 Nov 2006.
  • 12.Nascente PS, Meinerz ARM, Faria RO, Schuch LPD, Meireles MCA, Mell JRB. CLSI broth microdilution method for testing susceptibility of Malassezia pachydermatis to thiabendazole. Braz J Microbiol 2009; 40:222-226.
  • 13. Babushok VI, Linstrom PJ, Zenkevich IG. Retention indices for frequently reported compounds of plant essential oils. J Phys Chem Ref Data 2011; 40(4). doi: http://dx.doi.org/10.1063/1.3653552.
  • 14. Azadi B, Nickavar B, Amin G. Volatile constituents of the peel and leaf of Citrus aurantium L. cultivated in the north of Iran. J Pharm Health Sci 2012; 1:37-41.
  • 15. Ellouze I, Abderrabba M. Kinetics of extraction of Citrus aurantium essential oil by hydrodistillation: influence on the yield and the chemical composition. J Mater Environ Sci 2014; 5:841-848.
  • 16. De Pasquale F, Siragusa M, Abbate L, Tusa N, De Pasquale C, Alonzo G. Characterization of five sour orange clones through molecular markers and leaf essential oils analysis. Sci Hort 2006; 109:54-59.
  • 17. Hsouna AB, Hamdi N, Halima NB, Abdelkafi S. Characterization of essential oil from Citrus aurantium L. flowers: antimicrobial and antioxidant activities. J Oleo Sci 2013; 62:763-772.
  • 18. Blaskó A, Gazdag Z, Gróf P, Máté G, Sárosi S, Krisch J et al. Effects of clary sage oil and its main components, linalool and linalyl acetate, on the plasma membrane of Candida albicans: an in vivo EPR study. Apoptosis 2016; 22(2):175-187.
  • 19. Hammer KA, Carson CF, Riley TV. Antifungal activity of the components of Melaleuca alternifolia (tea tree) oil. J Appl Microbiol 2003; 95:853-860.
  • 20. Griffin SG, Wyllie SG, Markham JL, Leach DN. The role of structure and molecular properties of terpenoids in determining their antimicrobial activity. Flavour Frag J 1999; 14: 322-332.
Typ dokumentu
Bibliografia
Identyfikatory
Identyfikator YADDA
bwmeta1.element.agro-b2c3ece9-67ee-4af6-82c9-edba03ac7664
JavaScript jest wyłączony w Twojej przeglądarce internetowej. Włącz go, a następnie odśwież stronę, aby móc w pełni z niej korzystać.