Wplyw cytokinin na namnazanie Kohleria amabilis [Planch. et Linden] Fritsch in vitro

• Autorzy: Kozak D , Hetman J , Witek M
• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

W pracy określono wpływ cytokinin: BA, kinetyny, 2iP, dodanych w stężeniu 1 lub 5 mg·dm⁻³ do zmodyfikowanej pożywki ½ Murashige i Skoog, na wzrost i namnażanie pędów Kohleria amabilis. Pędy wykorzystane do doświadczenia pochodziły z ustabilizowanej kultury in vitro. Wykazano istotny wpływ cytokinin na wielkość współczynnika namnażania pędów. Najbardziej przydatna do namnażania pędów kohlerii okazała się BA w ilości 1 mg·dm⁻³. Cytokininy w stężeniu 5 mg·dm⁻³ całkowicie hamowały wytwarzanie korzeni.

EN

The aim of the study was to test the influence of cytokinins: BA, kinetin, 2iP at the concentrations of 1 and 5 mg·dm⁻³, added to the modified ½ Murashige and Skoog medium, on the growth and multiplication in vitro of kohleria shoots. The shoots used in the experiment were obtained from the aseptically grown shoot clusters. A significant influence of cytokinins on the multiplication of kohleria’s shoots was observed. BA at the concentration of 1 mg·dm⁻³ was the best for the multiplication of shoots. Induction of roots was completely inhibited at 5 mg·dm⁻³ cytokinin concentration.

Słowa kluczowe

PL

cytokininy; Kohleria amabilis; rosliny ozdobne; hodowla in vitro; namnazanie

EN

cytokinin; Kohleria amabilis; ornamental plant; in vitro culture

• Wydawca: -
• Czasopismo: Zeszyty Problemowe Postępów Nauk Rolniczych
• Rocznik: 2006
• Tom: 510
• Numer: 1
• Opis fizyczny: s.295-300,tab.,bibliogr.

Twórcy

autor

Kozak D

• Instytut Roslin Ozdobnych i Architektury Krajobrazu, Akademia Rolnicza, ul. Leszczynskiego 28, 20-068 Lublin

autor

Hetman J

• Instytut Roslin Ozdobnych i Architektury Krajobrazu, Akademia Rolnicza, ul. Leszczynskiego 28, 20-068 Lublin

autor

Witek M

• Instytut Roslin Ozdobnych i Architektury Krajobrazu, Akademia Rolnicza, ul. Leszczynskiego 28, 20-068 Lublin

Bibliografia

• Bilkey P.C., McCown B.H. 1979. In vitro culture and propagation of Episcia sp. (Flame Violets). J. Amer. Soc. Hort. Sci. 104(1): 109-114.
• Cook R.C. 1977. Tissue culture propagation of African violets. HortScience 12(6): 549.
• Dąbski M., Kozak D. 1996. Ocena zdolności regeneracyjnych kilku genotypów Aeschynanthus in vitro. Zesz. Nauk. AT-R w Bydgoszczy, Ser. Rol. 39: 109-114.
• Dąbski M., Kozak D., Wilk K. 1994. Mikrorozmnażanie klonów hodowlanych saintpaulii, w: Hodowla i nasiennictwo roślin ogrodniczych. Duczmal K.W. (red.), Poznań: 383-386.
• Geier T. 1988. In vitro chemical induction and propagation of Kohleria mutants with altered plant shape and flowering behaviour. Acta Hort. 226: 687-691.
• Kozak D., Dąbski M. 1995a. Wpływ cytokinin na namnażanie Hypocyrta glabra Hook, in vitro. Mat. Ogólnopol. Konf. Nauk. „Nauka praktyce ogrodniczej”. Lublin, 14-15 IX 1995: 867-870.
• Kozak D., Dąbski M. 1995b. Reakcja trzech gatunków Columnea na cytokininy in vitro. Mat. z V Ogólnopol. Zjaz. Hod. Roś. Ogród. Cz. II, Skierniewice, 23-24 II 1995: 476-480.
• Lubomski M. 1986. Rozmnażanie fiołka afrykańskiego metodą kultur in vitro. Ogrodnictwo 11: 24-25.
• Murashige T., Skoog F. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue culture. Physiol. Plant. 15: 473-479.
• Nitsch J.P., Nitsch C. 1969. Haploid plants from pollen grains. Science 163: 85-87.
• Smith R.H., Norris R.F. 1983. In vitro propagation of African violet chimeras. HortScience 18(4): 436-437.
• Start N.D., Cumming B.G. 1976. In vitro propagation of Saintpaulia ionantha Wendl. HortScience 11(3): 204-206.
• Vlahos J.C. 1989. Regeneration of two cultivars of Achimenes longiflora DC. in vitro. Acta Hort. 251: 255-273.