The effect of growth regulators and culture conditions on the callus induction in tomato Lycopersicon sp.

• Autorzy: Rzepka-Plevnes D , Kulpa D. , Grabiec M. , Kowalczys K. , Kurek J.

Warianty tytułu

PL

Wplyw roslinnych regulatorow wzrostu i warunkow prowadzenia kultury na indukcje kalusa u Lycopersicon sp.

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

Effect of auxins: (NAA, IAA), cytokinin BAP and culture conditions (light, darkness) on callus induction in cotyledons of tomato cultivar ‘Maskotka’ and the wild form of Lycopersicon peruvianum was investigated. Callus was obtained in all experimental combinations, except of the culture with L. peruvianum on the medium with 1.0 mg⋅dm⁻³ of IAA. Callus weight, colour and structure depended on the tomato genotypes and experimental conditions. Best medium for the culture of tomato cultivar ‘Maskotka’ and the wild form L. peruvianum proved to be MS medium supplemented with 2.0 mg⋅dm⁻³ of IAA and 1.0mg⋅dm⁻³ of BAP.

PL

W pracy określono wpływ auksyn (NAA i IAA) i cytokininy BAP oraz warunków kultury (światło, ciemność) na tworzenie się kalusa na liścieniach odmiany uprawnej pomidora ‘Maskotka’ oraz formy dzikiej Lycopersicon peruvianum. Indukcję kalusa obserwowano u obu badanych form niezależnie od składu hormonalnego pożywki, za wyjątkiem kombinacji, z auksyną IAA w ilości 1.0 mg⋅dm⁻³. Masa, zabarwienie i struktura otrzymanego kalusa zależały od genotypu badanych form pomidora oraz od warunków prowadzenia kultury. Inicjacja kalusa pomidora odmiany ‘Maskotka’ i L. peruvianum powinna odbywać się na pożywce MS uzupełnionej 2,0 mg dm⁻³ IAA i 1,0 mg dm⁻³ BAP.

Słowa kluczowe

EN

cotyledon; darkness; light; tomato; growth regulator; Lycopersicon; callus induction; culture condition

• Wydawca: -
• Czasopismo: Acta Scientiarum Polonorum. Hortorum Cultus
• Rocznik: 2006
• Tom: 05
• Numer: 2
• Opis fizyczny: p.23-34,fig.,ref.

Twórcy

autor

Rzepka-Plevnes D

• Agricultural University in Szczecin, Szczecin, Poland

autor

Kulpa D.

autor

Grabiec M.

autor

Kowalczys K.

autor

Kurek J.

Bibliografia

• Ahmed E. E., Bisztray G., Velich I., 2001. Transformation of bean callus by using high-velocity microprojecttles. Acta Horticulture 560, 129–131.
• Brown J. T. 1990. The initiation and maintenance of callus cultures. 6. [in:] Pollard J.W., Walker J.M. (eds.) Plant Cell and Tissue Cultures. Methods in Molecular Biology. (6). Humana Press, Clifton, New Jersey, 57–64.
• Brown J. T., Charlwood B.V., 1990. Organogenesis in callus culture. 7. [in:] Pollard J.W., Walker J.M. (eds.) Plant Cell and Tissue Cultures. Methods in Molecular Biology. (6). Humana Press, Clifton, New Jersey, 65–69.
• Gamborg O.L., Constabel F., Shyluk J.P., 1974. Organogenesis in callus from shoot apices of Pisum sativum. Physiol. Plant 30, 125–128.
• Giovinazzo, Greco V., Bollini R., 1993. Optimization of cell suspension culture, protoplasts solution, and transient transformation of Phaseolus vulgaris L. Ann. Rep. Bean Improvement Cooperative 36, 14.
• Ling H.Q., Kriseleit D., Ganal M.W., 1998. Effect of ticarcillin/potassium clavulante on callus growth and shoot regeneration in Agrobacterium-mediated transformation of tomato (Lycopersicon esculentum Mill.). Plant Cell Reports 17, 843–847.
• Malik M., Bach A., 2004. Wpływ regulatorów wzrostu na indukcję kalusa embriogenicznego w kulturach narcyza (Narcissus L.) odmiany Carlton. Folia Univ. Agric. Stetin. Agricultura 236 (94), 115–118.
• Meyers J.M., Simon P.W., 1999. Regeneration of garlic callus as affected by clonal variation plant growth regulators and culture conditions over tissue. Plant Cell Reports 19, 32–36.
• Monnier M., 1990. Induction of embryogenesis in callus culture. 15. [in:] Pollard J.W., Walker J.M. (eds.) Plant Cell and Tissue Cultures. Methods in Molecular Biology. (6). Humana Press, Clifton, New Jersey, 147–148.
• Murashige T., Skoog F., 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue culture. Physiol. Plant. 15, 473–497.
• Nabiałkowska D., Szarejko I., Siwińska D., 2004. Zróżnicowany poziom mutacji punktowych i chromosomowych u regenerantów z kultury tkankowej Arabidopsis thalina (L.) Heynh. Biotechnologia 2 (65), 79–85.
• Rzepka-Plevneš D., Kowalczys K., Grabiec M., 2004. Comparison of the callus originated from tomato cotyledons growing in different culture condition during first stage of its development. Acta Physiol. Plant, The 14th FESPB Congress Book of Abstracts. August 23–27. 2004, Cracow, Poland, 148.
• Skucińska B., 2001. Metoda kultury in vitro. 2. [w:] Malepszy S. (red.). Biotechnologia roślin. PWN, Warszawa: 26–28.
• Soniya E.V., Banerjee N.S., Das M.R., 2001. Genetic analysis of somaclonal variation among callus-derived plants of tomato. Current Science 80, 1213–1215.
• Szybka-Hrynkiewicz B., Janeczko Z., 2004. Densytometryczna analiza diospeniny w ekstraktach tkanki kalusowej Polygonatum verticillatum (L.) All. Biotechnologia 2 (65), 93–99.