Wplyw chlodzenia cebul matecznych i regulatorow wzrostu na regeneracje in vitro zwartnicy Chmiela [Hippeastrum x chmielii Chm.] z eksplantatow pedowych

• Autorzy: Ilczuk A , Witomska M.
• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

W 1993 roku w Katedrze Roślin Ozdobnych SGGW uzyskano mieszańca międzygatunkowego - zwartnicę Chmielą (Hippeastrum × chmielii Chm.). Wyselekcjonowane klony nowego gatunku zwartnicy charakteryzują się piękną barwą kwiatów, obfitym kwitnieniem i bujnym wzrostem. Nadają się do uprawy doniczkowej i na kwiat cięty. Ze względu na spodziewane duże zapotrzebowanie na materiał nasadzeniowy zwartnicy Chmielą niezbędne jest opracowanie wydajnych technik mikrorozmnażania. W tym celu podjęto próbę różnicowania cebulek przybyszowych z pędów kwiatostanowych uzyskanych z cebul (klon 3/7) po trzech, pięciu i siedmiu miesiącach przechowywania w temperaturze 4°C. Stwierdzono wpływ czasu chłodzenia cebul na procent eksplantatów regenerujących cebulki i liczbę cebulek na eksplantat. Pięciomiesięczne chłodzenie cebul i obecność w pożywce 2 mg·dm⁻³ izopentyloadeniny (2iP) oraz 0,2 mg·dm⁻³ kwasu α-naftalenooctowego (NAA) stymulowały różnicowanie cebulek przybyszowych. Wydłużenie czasu chłodzenia cebul o 2 miesiące wpływało negatywnie na procent eksplantatów regenerujących cebulki oraz na liczbę cebulek uformowanych na eksplantacie.

EN

In 1993 a new hybrid Hippeastrum × chmielii was obtained in the Department of Ornamental Plants at Warsaw Agricultural University. Selected clones grow vigorously and flower abundantly, producing flowers in bright vivid colors. They can be grown for cut flowers or as pot plants. As a great demand for planting material can be expected it is necessary to elaborate efficient methods of vegetative propagation of these new creations. In order to meet this goal trials were undertaken to obtain bulblet regeneration in vitro from flower shoots (scapes) grown out from bulbs (clone 3/7) stored 3, 5 or 7 months at 4°C. Both length of chilling period and growth regulators present in the medium affected a percentage of regenerating explants and a number of bulblets per explant. Five month chilling and presence of 2 mg·dm⁻³ isopenthenyladenine (2iP) together with 0.2 mg·dm⁻³ α-naphthylacetic acid (NAA) stimulated bulblet regeneration. Prolonging the storage period by 2 months decreased both the percentage of regeneration and the bulblet number per explant.

Słowa kluczowe

PL

Hippeastrum x chmielii; cebule mateczne; eksplantaty lisciowe; rozmnazanie roslin; rosliny ozdobne; hodowla in vitro; chlodzenie; zwartnica Chmiela; regulatory wzrostu

• Wydawca: -
• Czasopismo: Zeszyty Problemowe Postępów Nauk Rolniczych
• Rocznik: 2003
• Tom: 491
• Opis fizyczny: s.103-110,tab.,bibliogr.

Twórcy

autor

Ilczuk A

• Szkola Glowna Gospodarstwa Wiejskiego, ul. Nowoursynowska 166, 02-787 Warszawa

autor

Witomska M.

Bibliografia

• Aartrijk J. Van, Blom-Barnhoorn G. J. 1981. Growth regulator requirements for adventitious regeneration from Lilium bulb-scale tissue in vitro, in relation to duration of bulb storage and cultivar. Sci. Hort. 14: 261 - 268.
• Aartrijk J. Van, Blom-Barnhoorn G. J. 1984. Adventitious bud formation from bulb-scale explants of Lilium speciosum Thunb. in vitro. Interacting effects of NAA, TIBA, wounding, and temperature. J. Plant Physiol. 116(5): 409 - 416.
• Bach A., Pawłowska B., Pułczyńska K. 1992. Utilization of soluble carbohydrates in shoot and bulb regeneration of Hyacinthus orientalis L. in vitro. Acta Hort. 325: 487 - 193.
• De Bruyn M. H., Ferreira D. I., Slabbert M. M., Pretorius J. 1992. In vitro propagation of Amaryllis belladonna. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 31: 179 - 184.
• Delvallee I., Paffen A., de Klerk G. J. 1990. The development of dormancy in bulblets of Lilium speciosum generated in vitro. II. The effect of temperature. Physiol. Plant. 80: 431 - 436.
• Gabryszewska E., Saniewski M. 1989. Czynniki regulujące wzrost i rozwój roślin ozdobnych z rodzin Liliaceae, Amaryllidaceae i Iridaceae in vitro. Kosmos 38(4): 485 - 503.
• Hosoki T., Asaihra T. 1980. In vitro propagation of Narcissus. Hort. Sci. 15(5): 602 - 603.
• Hussey G. 1975. Totipotency in tissue explants and callus of some members of the Liliaceae, Iridaceae and Amaryllidaceae. J. Exp. Bot. 91: 253 - 262.
• Jacobs G., Richard M., Allderman L. A., Theron K. I. 1992. Direct and indirect organogenesis in tissue cultures of Nerine bowdenii W. Watts. Acta Hort. 325: 475 - 479.
• Kromer K. D. 1985. Regeneration of some monocotyledonous plants from subterranean organs in vitro. Acta Agrobot. 38(2): 65417.
• Mujib A., Jana B. K., Ghosh P. D. 1991. Plantlet regeneration from flower bud callus in Hippeastrum hybridum 'Belladona'. Environ. Ecology 9(2): 429 - 431.
• Murashige T., Skoog F. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol. Plant. 15: 473 - 497.
• Okubo H. 1992. Dormancy in bulbous plants. Acta Hort. 325: 35 - 41.
• Okubo H., Huang C. W., Uemoto S. 1990. Role of outer scale in twin-scale propagation of Hippeastrum hybridum and comparison of bulbet formation from single- and twin-scales. Acta Hort. 266: 59 - 65.
• Pierik R. L. M., Blokker J. S., Dekker M. W. C., De Does H., Kuip A. C., Van der Made T. A., Menten Y. M. J., De Vetten N. C. M. H. 1990. Micropropagation of Hippeastrum hybridum. Integration of in vitro techniques in ornamental plant breeding. Proceedings of Symposium 10-14 November. Eucarpia, Section ornamentals. Centre for Plant Breeding Research, The Nederlands: 21 - 26.
• Saker M., Rady M., El-Bahr M. 1998. Towards commercial production of ornamental bulbs in vitro. Egyptian Journal of Hortic. 25(1): 113 - 128.
• Seabrook J. E. A., Cumming B. G. 1982. In vitro morphogenesis and growth of Narcissus in response to temperature. Sci. Hort. 16: 185 - 190.
• Slabbert M. M., Bruyn de M. H., Ferreira DJ., Pretorius J. 1995. Adventitious in vitro plantlet formation from immature floral stems of Crinum macowanii. Plant Cell Tissue and Organ Culture 43(1): 51 - 57.
• Stimart D. P., Ascher P. D. 1981a. The developmental responses of Lilium longiflorum Thunb. in tissue culture to constant or alternating temperatures. J. Amer. Soc. Hort. Sci. 106(4): 450 - 454.
• Stimart D. P., Ascher P. D. 1981b. Foliar emergence from bulblets of Lilium longiflorum Thunb. as related to in vitro generation temperatures. J. Amer. Soc. Hort. Sci. 106(4): 446 - 450.
• Stimart D. P., Ascher P. D., Wilkins H. F. 1982. Overcoming dormancy in Lilium longiflorum bulblets produced in tissue culture. J. Amer. Soc. Hort. Sci. 107(6): 1004 - 1007.
• Taeb A. G., Alderson P. G. 1987. Micropropagation of tulip: optimising shoot production from floral stem explants. Acta Hort. 212: 677 - 681.
• Takayama S., Misawa M. 1983. A scheme for mass propagation of Lilium in vitro. Sci. Hort. 18: 353 - 362.
• Witomska M. 2000. Wpływ temperatury przechowywania cebul Fritillaria imperialis L. na poziom cukrów rozpuszczalnych, ABA i cytokinin oraz regenerację in vitro. Zesz. Probl. Post. Nauk Rol. 473: 335 - 341.
• Witomska M., Łukaszewska A. 1997. Bulblets regeneration in vitro from different explants of Fritillaria imperialis. Acta Hort. 430: 331 - 338.
• Ziv M., Lilien-Kipnis H., Altman A. 1997. The inflorescence stalk: a source of highly regenerative explants for micropropagation geophytes. Acta Hort. 447: 107 - 111.
• Ziv M., Lilien-Kipnis H. 2000. Bud regeneration from inflorescence explants for rapid propagation of geophytes in vitro. Plant Cell Reports 19(9): 845 - 850.