Analysis of flowering ability of regenerated Carlina acaulis subsp. simplex plants

• Autorzy: Trejgell A , Tretyn A.

Warianty tytułu

PL

Analiza zdolnosci do kwitnienia regenerantow Carlina acaulis subsp. simplex

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

Regenerated plants of Carlina acaulis subsp. simplex induced on shoot tips and fragments of hypocotyls, cotyledons and roots were used as an experimental material. Explants were isolated from 10-day-old, sterile seedlings and were put on growth media supplemented with BA(3 mg × dm⁻³), andNAA(0,l mg × dm⁻³). Plantlets were acclimatized to ex vitro conditions and planted to the field. Analysis of flowering ability, inflorescence stem morphology, and survival level was the objective of the study. The plants regenerated from shoot tips and cotyledons were able to flower in the first year after acclimatization, however no vital seeds were found, while in the case of hypocotyl- and root-regenerated plants flowering appeared in the second year after acclimatization. Number of flowering-able plants grew in time, reaching 100% level. Few percent of inflorescence stems displayed branches ending with additional capitula. The number of this type of plants decreased in successive years, while the average length of inflorescence stem increased. In the case of intensively flowering plants, the survival rate decreased in 3 consecutive years.

PL

Materiał eksperymentalny stanowiły regeneranty Carlina acaulis subsp. simplex, indukowane na wierzchołkach wzrostu oraz fragmentach hypokotyli, liścieni i korzeni. Eksplanty były izolowane z 10-dniowych sterylnych siewek i wykładane na pożywki uzupełnione w BA (3 mg × dm⁻³) i NAA (0,1 mg × dm⁻³). Regeneranty były aklimatyzowane do warunków ex vitro i wysadzane do gruntu. Celem badań była analiza: zdolności do kwitnienia, morfologii pędu kwiatostanowego oraz poziomu przeżywalności w 3 kolejnych sezonach wegetacyjnych. Rośliny zregenerowane z wierzchołków wzrostu i liścieni były zdolne do kwitnienia już w pierwszym roku po aklimatyzacji, ale nie stwierdzono żywotnych nasion. Natomiast rośliny zregenerowane z fragmentów hypokotyli i korzeni były zdolne do kwitnienia w drugim roku po aklimatyzacji. Liczba roślin zdolnych do kwitnienia rosła w kolejnych latach osiągając poziom 100%. Niewielki odsetek roślin wykazywał rozgałęzione pędy kwiatostanowe zakończone dodatkowymi koszyczkami. Liczba tego typu roślin zmniejszała się w kolejnych latach, rosła natomiast średnia długość pędów kwiatostanowych. W przypadku roślin intensywnie kwitnących po 3 latach uprawy spadał wskaźnik przeżywalności.

Słowa kluczowe

EN

regenerated plant; plant; flowering ability; inflorescence stem morphology; Carlina acaulis ssp.simplex; seedling explant; stem development

• Wydawca: -
• Czasopismo: Acta Agrobotanica
• Rocznik: 2007
• Tom: 60
• Numer: 2
• Opis fizyczny: p.39-44,fig.,ref.

Twórcy

autor

Trejgell A

• Nicolaus Copernicus University, Gagarina 9, 87-100 Torun, Poland

autor

Tretyn A.

Bibliografia

• Bernier G., 1988: The control of floral evocation and morphogenesis. Annu. Rev. Plant. Physiol. Plant. Mol. Biol. 39: 175-219.
• Bernier G., Havelange A., Houssa C., Petitjeaen A., Lejeune P., 1993. Physiological signals that induced flowering. Plant Cell. 5: 1147-1155.
• Burn J. B., Bagnall D. J., Fmetzger J. D., Dennis E. S., Peacock W. J., 1993: DNA methylation, vernalization and the initiation of flowering. Proc. Natl. Acad. Sci. Usa, 90: 287-291.
• Czarnecka B., 2006. Large-scale vs. small-scale factors affecting flowering patterns in Senecio macrophyllus M.BIEB., a long-lived perennial. Acta Agrobot. 59: 233- 239.
• Choffe K. L., Victor J.M.R., Murch S. J., Saxena P. K., 2000: In vitro regeneration of Echinacea pururea L.: direct somatic embriogenesis and indirect shoot organogenesis in petiole culture. In vitro Cell Dev. Biol.-Plant 36: 30-36.
• Cuenca S., Amo-Marco J. B., Parra R., 1999: Micropropagation from inflorescence stems of the Spanish endemic plant Centaurea paui Loscos ex Willk. (Compositae). Plant Cell Reports, 18: 674-679.
• Dhaka N., Kothari S. L., 2005: Micropropagation of Eclipa alba (L.) Hassk - an important medicinal plant. In Vitro Cell. Dev. Biol.-Plant, 41:658-661.
• Echeverrigaray S., Fracaro F., Andrade L. B., Biasio S., Antti-Serafini L., 2000: In vitro shoot regeneration from lesf explants of Roman Chamomile. Plant Cell Tiss. Org. Cult. 60: 1-4.
• Eckert C. G., 2002. The loss of sex in clonal plants. Evolutionary Ecology 15: 501-520.
• Evenor D., Reuveni M., 2004: Micropropagation of Achillea filipendulina cv. "Parker". Plant Cell Tiss. Org. Cult. 79: 91-93.
• Hayama R., Coupland G., 2003: Shedding light on the circadian clock and the photoperiodic control of flowering. Curr. Opin. Plant Biol. 6: 13-19.
• Kakimoto T., 1996. CKI1, a histidine kinase homolog implicated in cytokinin signal transduction. Science, 274: 982-985.
• Kinet J.M., 1993: Environmental, chemical, and genetic control of flowering. Hort. Rev. 15: 38-47.
• Klinkhamer PGL., de Jong T.J. Meelis E., 1991. The control of fowering in monocarpic perennial Carlina vulgaris. Oikos, 61: 88-95.
• Leavy Y. Y., Dean C., 1998: The transition to flowering. Plant Cell. 10: 1973-1989.
• Lewak S., 2002. Regulacja procesów fizjologicznych przez czynniki endogenne. / Regulation of physiological processes by endogenous factors. [In:] Fizjologia roślin J. Kopcewicz, S. Lewak (ed). PWN., Warszawa: pp. 146.
• Mitka J., Tumidajewicz D., 1993. Program ochrony zagrożonych gatunków roślin. / Endangered plant species protection programme. [In:]: Biderman A.W., Wiśniewski B. (red.) (1993): Utrzymywanie i restytucja ginących gatunków roślin i zwierząt w parkach narodowych i rezerwatach przyrody. / The maintenance and restoration of plant and animal species facing extinction in national parks and nature reserves. Prace Muz. Szafera, ss: 27-37.
• Mouradov A., Cremer F., Coupland G., 2002: Control of flowering time: interacting pathways as a basis for diversity. Plant Cell (Suppl.): 111-130.
• Murashige T., Skoog F., 1962: A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol. Plant, 15: 437-497.
• Piękoś-Mirkowa H., Mirek Z., 2003: Atlas roślin chronionych. Multico Oficyna Wydawnicza. Warszawa, pp. 60-61.