Micropropagation of Harpagophytum procumbens [Burch.] DC. ex Meisn.: the effect of cytokinins on shoot multiplication

• Autorzy: Grabkowska R , Wysokinska H.

Warianty tytułu

PL

Mikrorozmnazanie Harpagophytum procumbens [Burch.] DC. ex Meisn.: wplyw cytokinin na mnozenie pedow

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

The procedure of in vitro propagation of Harpagophytum procumbens using shoot tips was developed. Shoot tips were cultured on Schenk and Hildebrandt (SH) agar medium supplemented with 0.57 µM indole-3-acetic acid (IAA) in combination with various cytokinins: 6-benzylaminopurine (BAP), thidiazurone (TDZ), kinetin or zeatin at four concentrations (2, 4, 6 or 8 µM). The best shoot multiplication rate (11.2 shoots/explant for 5 weeks) was achieved in the presence of 6 µM TDZ. The shoots were small and their elongation on SH medium supplemented with gibberellic acid (GA3 ) was necessary. Shoots of H. procumbens were rooted on full-strength or half-strength Murashige and Skoog (MS) agar medium either with or without auxin. Plantlets were transferred into pots and maintained in the greenhouse. After 1 month, the overall survival of plants was 83% but it decreased to 27% after 6 months.

PL

Opracowano procedurę mikrorozmnażania Harpagophytum procumbens przy użyciu wierzchołków pędów. Wierzchołki pędów hodowano na agarowym podłożu Schenka i Hildebrandta (SH) uzupełnionym kwasem indolilo-3-octowym (IAA) w stężeniu 0.57 µM i jedną z cytokinin: 6-benzyloaminopuryną (BAP), tidiazuronem (TDZ), kinetyną lub zeatyną w czterech różnych stężeniach (2, 4, 6 lub 8 µM). Najwyższy współczynnik mnożenia pędów (11,2 z jednego eksplantatu w ciągu 5 tygodni) osiągnięto w obecności 6 µM TDZ. Pędy były krótkie i konieczne było ich wydłużanie na podłożu SH uzupełnionym kwasem giberelinowym (GA3 ). Pędy H. procumbens ukorzeniano na agarowym podłożu Murashige i Skooga (MS) z całkowitą lub obniżoną do połowy zawartością makro- i mikroelementów, bez auksyn lub z ich dodatkiem. Roślinki przenoszono do doniczek i hodowano w szklarni. Po miesiącu przeżywało 83% roślin, ale procent ten obniżał się do 27% po 6 miesiącach.

Słowa kluczowe

EN

perennial plant; Harpagophytum procumbens; micropropagation; shoot multiplication; cytokinin; gibberellic acid

• Wydawca: -
• Czasopismo: Herba Polonica
• Rocznik: 2009
• Tom: 55
• Numer: 3
• Opis fizyczny: p.244-250,ref.

Twórcy

autor

Grabkowska R

• Medical University of Lodz, Muszynskiego 1, 90-151 Lodz, Poland

autor

Wysokinska H.

Bibliografia

• 1. Hachfeld B, Schippmann U. Conservation data sheet 2: Exploitation, trade and population status of Harpagophytum procumbens in southern Africa. Medicinal Plant Conservation 2000; 6:4-9.
• 2. Burger JF, Brandt V, Ferreira D. Iridoid and phenolic glycosides from Harpagophytum procumbens. Phytochemistry 1987; 26:1453-7.
• 3. Boje K, Lechtenberg M, Nahrstedt A. New and known iridoid- and phenylethanoid glycosides from Harpagophytum procumbens and their in vitro inhibition of human leukocyte elastase. Planta Med 2003; 69:820-5.
• 4. European Pharmacopoeia. 6th ed. vol. 2. Council of Europe, Strasbourg 2007:1662-3.
• 5. ESCOP (European Scientific Cooperative on Phytotherapy) Monographs. 2nd ed. Thieme Verlag, Stuttgart 2003:233-40.
• 6. Raimondo D, Donaldson J. The trade, management and biological status of Harpagophytum spp. in Southern African range states. In: 12th meeting of the Plants Committee; 2002 May 13-17; Leiden 2002:1-20.
• 7. Shushu DD. In vitro regeneration of the Kalahari devil’s claw, Harpagophytum procumbens, an important medicinal plant. South Afr J Bot 2001; 67:378-80.
• 8. Kaliamoorthy S, Naidoo G, Achar P. Micropropagation of Harpagophytum procumbens. Biol Plantarum 2008; 52:191-4.
• 9. Bairu MW, Jain N, Stirk WA, Doležal K, Van Staden J. Solving the problem of shoot-tips necrosis in Harpagophytum procumbens by changing the cytokinin types, calcium and boron concentrations in the medium. South Afr J Bot 2009; 75:122-7.
• 10. Murashige T, Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol Plant 1962; 15:473-97.
• 11. Schenk RW, Hildebrandt AC. Medium and techniques for induction of growth of monocotyledonous and dicotyledonous plant cell cultures. Can J Bot 1972; 50:199-204.
• 12. Peddaboina V, Thamidala Ch, Karampuri S. In vitro shoot multiplication and plant regeneration in four Capsicum species using thidiazuron. Sci Hortic 2006; 107:117-22.
• 13. Vengadesan G, Ganapathi A, Pream Anand R, Selvaraj N. In vitro propagation of Acacia sinuata (Lour.) Merr. from nodal segments of a 10-year-old tree. In Vitro Cell Dev Biol-Plant 2003; 39:409-14.
• 14. Sugla T, Purkayastha J, Singh SK, Solleti SK, Sahoo L. Micropropagation of Pongamia pinnata through enhanced axillary branching. In Vitro Cell Dev Biol-Plant 2007; 43:409-14.