Influence of individual variability in the percentage of motile spermatozoa and motility time on the survival of embryos of chosen fish species

• Autorzy: Targonska K , Kucharczyk D. , Mamcarz A. , Glogowski J. , Krejszeff S. , Prusinska M. , Kupren K.

Warianty tytułu

PL

Wplyw indywidualnej zmiennosci odsetka ruchliwych plemnikow i czasu ruchu na przezywalnosc embrionow u wybranych gatunkow ryb

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

Studies on the influence of individual spermatozoa motility parameters (% of motility, motility time) on survival of embryos to the eyed-egg-stage were conducted on four freshwater fish species: burbot, ide, Eurasian perch and goldfish. Semen from individual males was collected to separate syringes and next the spermatozoa motility parameters were determined. Samples of oocytes originated from one female from each of the species covered. Each sample of eggs was fertilized with semen originating from a different male. Additionally an attempt was made to fertilize the oocytes with the pooled semen collected from many males, which formed as the control. At the eyed-egg-stage the numbers of live and dead embryos were counted. Aiming at determining the influence of the examined spermatozoa motility parameters single and multiple regression analysis was conducted. It was established that the highest embryos average survival values obtained after fertilization of spawn samples with semen originating from individual males did not differ from the results obtained for the controls that were fertilized with semen from pooled sample. In all cases investigated significant relationships between the spermatozoa motility parameters and the survival of embryos were recorded.

PL

Przeprowadzono badania wpływu indywidualnych parametrów ruchliwości plemników (% ruchliwości, czas ruchu) czterech gatunków ryb słodkowodnych: miętusa, jazia, okonia i złotej rybki na przeżywalność embrionów do stadium zaoczkowania. Nasienie od poszczególnych samców pobierano do oddzielnych strzykawek, a następnie określano jego parametry ruchliwości. Próbki oocytów pochodziły od jednej samicy każdego z badanych gatunków. Każda próbka ikry zaplemniana była nasieniem od innego samca. Dodatkowo wykonano próbę zaplemnienia oocytów nasieniem zbiorczym, pobranym od wielu samców (próba kontrolna). W stadium zaoczkowania liczono ilość żywych i martwych embrionów oraz przeprowadzono analizę regresji jedno- i wielokrotnej. Stwierdzono, że średnie najwyższe wartości przeżywalności embrionów, uzyskane po zaplemnianiu próbek ikry nasieniem pojedynczych samców, nie różniły się od wyników otrzymanych w grupach kontrolnych. We wszystkich analizowanych przypadkach wykazano istotne zależności pomiędzy badanymi parametrami ruchliwości nasienia a przeżywalnością embrionów.

• Wydawca: -
• Czasopismo: Polish Journal of Natural Sciences
• Rocznik: 2008
• Tom: 23
• Numer: 1
• Opis fizyczny: p.178-187,fig.,ref.

Twórcy

autor

Targonska K

• University of Warmia and Mazury in Olsztyn, Michala Oczapowskiego 5, 10-719 Olsztyn, Poland

autor

Kucharczyk D.

autor

Mamcarz A.

autor

Glogowski J.

autor

Krejszeff S.

autor

Prusinska M.

autor

Kupren K.

Bibliografia

• ASTUARINO J.F., SORBERA L.A., CARRILLO M., ZANUY S., RAMOS J., NAVARRO J.C., BROMAGE N. 2001. Reproductive performance in male European sea bass (Dicentrarchus labrax, L.) fed two PUFA- -enriched experimental diets: a comparison with males fed a wet diet. Aquacult., 194: 173-190.
• BABIAK I., GLOGOWSKI J., LUCZYNSKI M., GORYCZKO K., DOBOSZ S., KUZMINSKI H. 1998. The effect of individual male potency on fertilization ability of fresh and cryopreserved milt of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss Walbaum, Aquacult. Res., 29: 337-340.
• BROOKS S., TYLER C.R., SUMPTER J.P. 1997. Egg quality in fish: what makes a good egg? Rev. Fish Biol. Fish., 7: 387-416.
• BRZUSKA E. 1999. Artificial spawning of herbivorous fish: use of an LHRH-a to induce ovulation in grass carp Ctenopharyngodon idella (Valenciennes) and silver carp Hypophthalmichthys molitrix (Valenciennes). Aquacult. Res., 30: 849-856.
• BRZUSKA E. 2000. Artificial spawning of carp Cyprinus carpio L. Differences between the effects on reproduc-tion in females of Polish and Hungarian provenance treated with carp pituitary and (D-Ala6) GnRH ProN-HEt (Kobarelin). Aquacult. Res., 31: 457-465.
• BRZUSKA E., BIENIARZ K. 1977. Metoda przyżyciowego określania dojrzałości płciowej samic karpia w związku z iniekcjami homogenatu przysadki mózgowej karpia. Broszura IRŚ, 105: 1-27.
• CAMPBELL P.M., POTTINGER T.G., SUMPTER J.P. 1992. Stress reduces the quality of gametes produced by rainbow trout. Biol. Reprod., 47: 1140-1150.
• CAMPBELL P.M., POTTINGER T.G., SUMPTER J.P. 1994. Preliminary evidence that chronic confinement stress reduces the quality of gametes produced by brown and rainbow trout. Aquacult., 120: 1-2.
• CASSELMAN S.J., SCHULTE-HOSTEDDE A., MONTGOMERIE R. 2006. Sperm quality influences male fertilization sukcess in walleye (Sander vitreum). Can. J. Fish. Aquat. Sci., 63: 2119-2125.
• CIERESZKO A., LIU L., DABROWSKI K. 1996. Effects of season and dietary ascorbic acid on some biochemical characteristics of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) semen. Fish Physiol. Biochem., 15: 1-10.
• DABROWSKI K., CIERESZKO A., RAMSEYER L., CULVER D., KES-TEMONT P. 1994. Effects of hormonal treatment on induced spermiation and ovulation in the yellow perch (Perca flavescens). Aquacult., 12: 171-180.
• FURUITA H., TANAKA H., YAMAMOTO T., SHIRAISHI M., TAKEUCHI T. 2000. Effects of n-3 HUFA levels in broodstock diet on the reproductive performance and egg and larval quality of the Japanese flounder, Paralichthys olivaceus. Aquacult., 187: 387-398.
• GLOGOWSKI J., BABIAK I., KUCHARCZYK D., LUCZYNSKI M. 1997. The effect of individual male variability on cryopreservation of bream (Abramis brama L.) sperm. Pol. Arch. Hydrobiol., 44: 281-285.
• GLOGOWSKI J., BABIAK I., KUCHARCZYK D., LUCZYNSKI M., PIROS B. 1999. Some properties of bream Abramis brama L. sperm and its cryopreservation. Aquacult. Res., 30: 765-772.
• GLUBOKOV A.I., MOTLOCH N.N., SEDOVA M.A. 1991. Effect of a synthetic LHRH analogue and dopamine antago-nists on the maturation of bream, Abramis brama L., Aquacult., 95: 373-377.
• HORVATH L., SZABO T., BURKE J. 1997. Hatchery testing of GnRH analogue-containing pellets on ovulation in four cyprinid species. Pol. Arch. Hydrobiol., 44: 221-226.
• KIME D.E., NASH J.P., 1999. Gamete viability as an indicator of reproductive endocrine disruption in fish. Sci. Total Environ. 233: 123- 129.
• KREJSZEFF S., STĘPNIAK P., KUCHARCZYK D., MAMCARZ A., KUJAWA R., TARGOŃSKA K. 2008. Mass rearing of goldfish larvae and juveniles under controlled conditions. EJPAU – accepted.
• KUCHARCZYK D. 2002. Rozród kontrolowany i androgeneza wybranych ryb karpiowatych. Wyd. UWM, Olsztyn, Rozpr. Monogr. 63, ss. 80.
• KUCHARCZYK D., KUJAWA R., MAMCARZ A. 1996. A new experimental incubation unit for eggs of the perch Perca fluviatilis. Progve Fish. Cult., 58: 281-283.
• KUCHARCZYK D., KUJAWA R., MAMCARZ A., WYSZOMIRSKA E. 1997. Artificial spawning in bream (Abramis brama L.). Pol. Arch. Hydrobiol., 44: 203-207.
• KUCHARCZYK D., MAMCARZ A., SZCZERBOWSKI A., LUCZYNSKI M.J., SKRZYPCZAK A., KUJAWA R., WYSZOMIRSKA E., RATAJSKI S. 1998. The artificial spawning of Eurasian perch (Perca fluviatilis L.) beyond their spawning season. Europ. Aquacult. Soc., Spec. Publ., 26: 151-152.
• KUCHARCZYK D., KUJAWA R., MAMCARZ A., SKRZYPCZAK A. 1999. Stimulation of spermiation by GnRH analogue in burbot (Lota lota L.). Europ. Aquacult. Soc., Spec. Publ., 27: 129-130.
• KUCHARCZYK D., KRÓL R., KUJAWA R., MAMCARZ A., WYSZOMIRSKA E., SZCZERBOWSKI A., LUCZYNSKI M.J. 2000. Out of season spawning of ide (Leuciscus idus L.) under controlled conditions. Europ. Aquacult. Soc., Spec. Publ., 28: 353-353.
• KUCHARCZYK D., SZCZERBOWSKI A., LUCZYNSKI M.J., KUJAWA R., MAMCARZ A., WYSZOMIRSKA E., SZABO T., RATAJSKI S. 2001. Artificial spawning of Eurasian perch, Perca fluviatilis L., using ovopel. Arch. Pol. Fish., 9: 39-49.
• KUCHARCZYK D., KUJAWA R., MAMCARZ A., TARGONSKA-DIETRICH K., WYSZOMIRSKA E., GLOGOWSKI J., BABIAK I., SZABO T. 2005. Induced spawning in bream ( Abramis brama L.) using pellets containing GnRH. Czech J. Anim. Sci., 50(3): 89-95.
• KUJAWA R., KUCHARCZYK D. 1996. Przyżyciowe pobieranie oocytów ryb karpiowatych i okoniowatych za pomocą katetera. Komunikaty Rybackie, 4: 20-21.
• KUJAWA R., KUCHARCZYK D., MAMCARZ A. 1999. A model system for keeping spawners of wild and domestic fish before artificial spawning. Aquacult. Eng., 20: 85-89.
• KUJAWA R., KUCHARCZYK D., MAMCARZ A. 2002. Burbot. Wyd. IRS, Olsztyn, ss. 96.
• LAVENS P., LEBEGUE E., JAUNET H., BRUNEL A., DHERT P., SORGELOOS P. 1999. Effect of dietary essential fatty acids and vitamins on egg quality in turbot broodstocks. Aquacult. Int., 7: 225-240.
• MIKOŁAJCZYK T., CHYB J., SZCZERBIK P., SOKOŁOWSKA-MIKOŁAJCZYK M. 2004. Evaluation of the potency of azagly-nafarelin (GnRH analogue), administered in combination with different formulations of pimozide, on LH secretion, ovulation and egg quality in common carp (Cyprinus carpio L.) under laboratory, commercial hatchery and natural conditions. Aquacult., 234: 447-460.
• PAVLOV D.A., KNUDSEN P., EMELYANOVA N.G., MOKSNESS E. 1997. Spermatozoa ultrastructure and sperm production in wolffish (Anarhichas lupus), a species with internal fertilisation. Aquat. Living Resour., 10: 187-194.
• RURANGWA E., KIME D.E., OLLEVIER F., NASH J.P. 2004. The measurement of sperm motility and factors affecting sperm quality in cultured fish. Aquacult., 234: 1-28.
• SUMPTER J.P. 1997. Environmental control of fish reproduction: a different perspective. Fish Physiol. Biochem., 17: 25-31.
• SZCZERBOWSKI J.A., SZCZERBOWSKI A. 1996. Karasie. Wyd. IRS, Olsztyn, ss. 175.
• TARGOŃSKA-DIETRICH K., ZIELAZNY T., KUCHARCZYK D., MAMCARZ A., KUJAWA R. 2004. Out-of-season spawning of cultured ide ( Leuciscus idus L.) under controlled conditions. Electronic Journal of Polish Agricultural Universities, Fisheries, , 7.
• TATE A.E., HELFRICH L.A. 1998. Off-season spawning of sunshine bass (Morone chrysops x M. saxatilis) exposed to 6- or 9-month phase-shifted photothermal cycles. Aquacult., 167: 67-83.