Phenolic glycosides content in purple willow bark originated from natural

• Autorzy: Sugier D , Sugier P.

Warianty tytułu

PL

Glikozydy fenolowe w korze wierzby purpurowej pochodzacej ze stanowisk naturalnych

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

The objective of the study was to evaluate the content of phenolic glycosides in bark of purple willow [Salix purpurea L.), originated from natural habitats. Special attention was paid to the soil features determining phenolic glycosides concentration in willow bark. The phenolic glycosides content in the purple willow ecotypes on peat soils was the high­est (6.00%), whereas on alluvial soils (4.18%) and rendzina type (4.37%) was much lower. The content of phenolic glycosides in Salix purpurea bark in river valley habitats was deter­mined by reaction and the content of Mg and CaC03

PL

Celem badań było określenie zawartości glikozydów fenolowych w korze ekotypów wierz­by purpurowej (Salix purpurea L.) pochodzących z siedlisk naturalnych i wskazanie czyn­ników glebowych determinujących koncentrację substancji czynnych w korze. Największą zawartością salicylanów odznaczała się kora ekotypów wierzby purpurowej rosnących na glebach torfowych (6,0%), zaś mniejszą na rędzinach (4,37%) i madach (4,18%). Zawartość glikozydów fenolowych w korze Salix purpurea zlokalizowanej w obrębie siedlisk doliny rzecznej była determinowana odczynem oraz zawartością Mg i CaC03.

Słowa kluczowe

EN

plant use; purple willow; natural habitat; Salix purpurea; medicinal plant; bark; conference; phenolic glycoside; willow bark; plant cultivation; Lublin city

• Wydawca: -
• Czasopismo: Herba Polonica
• Rocznik: 2007
• Tom: 53
• Numer: 3
• Opis fizyczny: p.325-330,fig.,ref.

Twórcy

autor

Sugier D

• Agricultural University, Akademicka 15, 20-935 Lublin, Poland

autor

Sugier P.

Bibliografia

• 1. Matuszkiewicz W. Przewodnik do oznaczania zbiorowisk roślinnych Polski. Wydawnictwo Naukowe PWN, Warszawa 2006:537.
• 2. Ożarowski A. Wierzba purpurowa jako roślina lecznicza. Herba Pol 1997; 43(2): 184-6.
• 3. Szczukowski S, Tworkowski J, Sulima P. Kora wierzb krzewiastych źródłem glikozydów salicylowych. Wiadomości Zielarskie 2002; 1:6-7.
• 4. Sugier D. Content of salicylic glycosides in the bark of cultivated Salix purpurea and Salix daphnoides. Herba Pol 2005;51:153-5.
• 5. Chrubasik S, Kiinzel O, Model A, Conradt C, Black A. Treatment of low back pain with a herbal or synthetic anti-rheumatic: a randomized controlled study. Willow bark extract for low back pain. Rheumatology 2001; 40:1388-93.
• 6. Zaugg SE, Cefalo D, Walker EB. Capillary electrophoretic analysis of salicin in Salix spp. J. Chromatogr. 1997; 781:487-90.
• 7. Chrubasik S, Eisenberg E, Balan E, Weinberger T, Luzzati R, Conradt C. Treatment of low back pain exacerbations with willow bark extract: a randomized double-blind study. Am J Med 2000; 109:9-14.
• 8. Schmid B, Lüdtke R, Selbmann HK, Schaffner W, Kötter I, Tschirdewahn B, Heide L, Schaffer W. Efficacy and tolerability of a standardized willow bark extract in patients with osteoarthritis: randomized placebo-controlled, double blind clinical trial. Phytother Res 2001; 15:344-50.
• 9. AkaoT, YoshinoT, Kobashi K, Hattori M. Evaluation of salicin as an antipyretic prodrug that does not cause gastric injury. Planta Med 2002; 68:714-18.
• 10. Sulima P. Produktywność i charakterystyka wybranych genotypów wikliny (Salix spp.) jako surowca zielarskiego. Praca doktorska UWM, Olsztyn 2004:57.
• 11. Orians CM, Lower S, Fritz RS, Roche B. The effects of plant genetic variation and soil nutrients on secondary chemistry and growth in a shrubby willow, Salix sericea: patterns and constraints on the evolution of resistance traits. Biochem System Ecol 2003; 31:233-47.
• 11. Polish Pharmacopeia V. PTF, Warszawa 1999:880-1.
• 12. Zalecenia nawozowe. Cz I. Liczby graniczne do wyceny zawartości w glebach makro- i mikroelementów. Puławy 1990:26.
• 13. Julkunen-Tiitto R, Rousi M, Meier B, Tirkkonen V, Tegelberg R, Heiska S, Turtola S, Paunonen R. Herbal medicine production: breeding and cultivation of salicylates producing plants. In: Anneli Jalkanen & Pekka Nygren (eds.) Sustainable use of renewable natural resources — from principles to practices. University of Helsinki, Department of Forest Ecology Publications 2005; 34. http://www.helsinki.fi/ mmtdk/mmeko/sunare.
• 14. Szabo LG, Botz L. Salicin content in the bark willow. Olaj Szappan Kozmet 1999; 48:207-9.
• 15. Julkunen-Tiitto R, Tahvanainen J, SilvolaJ. Increased C02 and nutrient status changes affect phytomass and the production of plant defensive secondary chemicals in Salix myrsinifolia (Salisb.). Oecologia 1993;95:495-8.
• 16. Larsson S, Wirén A, Lundgren L, Ericsson T. Effects of light and nutrient stress on leaf phenolic chemistry in Salix dasyclados and susceptibility to Calerucella lineóla (Coleóptera). Oikos 1986; 47:205-10.
• 17. HakulinenJ. Nitrogen-induced reduction in leaf phenolic level is not accompanied by increased rust frequency in a compatible willow (Salix myrsinifolia) - Melampsora rust interaction. Physiol Plant 1998; 102:101-10.
• 18. HakulinenJ, Julkunen-Tiitto R, Tahvanainen J. Does nitrogen fertilization have an impact on the trade­off between willow growth and defensive secondary metabolism? Trees 1995; 9:235-40.
• 19. Heiska S, Rousi M, Turtola S, Meier B, Tirkkonen V Julkunen-Tiitto R. The effect of genotype and cultivation method on the total salicylate yield of dark-leaved willows (Salix myrsinifolia). Planta Med 2005; 71:1134-9.