Wplyw roznych dawek metali ciezkich na aktywnosc enzymow stresu oksydacyjnego oraz parametry fizjologiczne pszenicy jarej. Czesc I.Wplyw miedzi

• Autorzy: Smolik B , Malinowska K.
• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Określono aktywność enzymów katalazy i peroksydazy. zawartość barwników asymilacyjnych oraz natężenie procesu asymilacji CO₂ i transpiracji w różnych fazach rozwojowych pszenicy rosnącej w glebie z dodatkiem różnych ilości soli miedzi oraz dodatkiem nawożenia NPK. Uzyskane wyniki wykazały duże zróżnicowanie badanych parametrów biochemicznych i fizjologicznych w zależności od dawki soli miedzi, nawożenia NPK oraz terminu pomiaru. W pierwszej części doświadczenia obserwowano wyraźnie stymulujący wpływ wszystkich zastosowanych dawek miedzi na aktywność katalazy i peroksydazy, a podczas III i IV pomiaru spadek aktywności peroksydazy. Miedź spowodowała w I i II terminie badań wzrost zawartości chlorofilu a i b, natomiast w dalszych terminach badań spadek zawartości oznaczanych parametrów fizjologicznych. Nawożenie NPK wpłynęło na wzrost zawartości barwników asymilacyjnych w pszenicy, na intensywność transpiracji oraz aktywność peroksydazy w stosunku do pozostałych obiektów badawczych.

EN

Authors investigated enzymatic activity of catalase and peroxidase, contents of assimilatory pigments and intensity of CO₂ assimilation and transpiration at different development stages of wheat, grown on the soil with various copper salt addition and NPK fertilization. Obtained results showed large differentiation of examined biochemical and physiological parameters depending on copper salt dose, NPK fertilization and plant development stage. In the first part of experiment all used copper doses showed stimulatory effect on catalase and peroxidase activity, but at 3rd and 4th measurements a decrease of peroxidase activity was observed. At first part of experiment Cu caused an increase of chlorophyll a and b, but at the rest of experiment it decreased the physiological parameters. Applied NPK fertilization increased the content of assimilatory pigments, content, transpiration intensity and peroxidase activity in wheat, as compared to other experimental objects.

Słowa kluczowe

PL

pszenica jara; transpiracja; asymilacja; dwutlenek wegla; aktywnosc enzymatyczna; metale ciezkie; katalaza; enzymy; stres oksydacyjny; peroksydaza; miedz; barwniki asymilacyjne

EN

spring wheat; transpiration; assimilation; carbon dioxide; enzyme activity; heavy metal; catalase; enzyme; oxidative stress; peroxidase; copper; assimilation pigment

• Wydawca: -
• Czasopismo: Zeszyty Problemowe Postępów Nauk Rolniczych
• Rocznik: 2006
• Tom: 515
• Opis fizyczny: s.371-379,rys.,tab.,bibliogr.

Twórcy

autor

Smolik B

• Akademia Rolnicza, ul.Slowackiego 17, 71-434 Szczecin

autor

Malinowska K.

Bibliografia

• Arnon D. J., Allen M. B., Wharley F. 1956. Photosynthesis by isolated chloroplasts. Biochim. Biophys. Acta. 20: 449 - 461.
• Chance B., Machly A. C. 1955. Methods in enzymology. T 2. Pod red. Calonik C. P., N.O. Kaplan Academic Press. Nowy Jork: 764 - 775.
• Groppa M. D., Tomaro M. L., Benavides M. P. 2001. Polyamines as protectors against cadmium or copper-induced oxidative damage in sunflower leaf discs. Plant Science 161: 481 - 488.
• Jasiewicz Cz., Zemanek M., Antonkiewicz J. 2004. Wpływ miedzi na zawartość barwników fotosyntetycznych u kukurydzy uprawianej w kulturach wodnych. Zesz. Prób. Post. Nauk Rol. 496: 459 - 467.
• Jurkowska H., Rogoż A., Wojciechowicz T. 1996. Interactive influence of big doses of Cu, Zn, Pb and Cd on their uptake by plants. Pol. J. Soil Sci. 29(1): 73 - 78.
• Kabata-Pendias A., Pendias H. 1999. Biogeochemia pierwiastków śladowych. PWN, Warszawa: 398 ss.
• Küpper H., Šetlik J., Spiller M., Küpper F. C., Prasill O. 2002. Heavy metal - induced inhibition of photosynthesis: targets of in vitro heavy metals chlorophyll formation. J. of Phycol. 38(3): 429 - 441.
• Lichtenthaler H. K., Wellburn A. R. 1983. Determinations of total carotenoids and chlorophyll a and b of leaf extracts in different solvents. Bioch. Soc. Trans. 11: 591 - 592.
• Lityński T. 1971. Żyzność gleby. Cz. I, w: Żyzność gleby i nawożenie. PWN, Warszawa: 380 ss.
• Lück H. 1963. Catalase, w: Methods of enzymatic analysis. Bergmeyer H-U, Verlag Chemie. Nowy Jork - Londyn: 885 - 888.
• Maksymiec W. 1997. Effect of copper on cellular processes in higher plants. Photosynthetica 34(3): 321 - 342.
• McBride M. B. 2001. Cupric ion activity in peal soil as a toxicity indicator for maize. J. Environ. Qual. 30: 78 - 84.
• McBride M. B., Martinem C. E. 2000. Copper phytotoxicity in a contaminated soil: remediation tests with adsorptive material. Environ. Sci. Technol. 34: 4386 - 4391.
• Metz R. Wilke B. M. 1992. Einfluss der Bodenbelaslung von Rieselfeldern auf Wachstum, Erlrag und Schwermetcillentug von Mais (Zen mays) in Gefässversuch. Wissenschaftliche. Zeitschrift der Humboldt Universität zu Berlin. Reihe Agrarwissen-schaften 41(3): 29 - 33.
• Mocquot B., Vongronsreld J., Clusters H., Mench M. 1996. Copper loxicitv in young maize (Zea mays L.) plants: effects on growth, mineral and chlorophyll contents, and enzyme activities. Plant Soil 182: 287 - 300.
• Mostowska A., Gwóźdź E. A. 1995. Reakcje aparatu fotosyntetycznego na stres oksydacyjny. Post. Biol. Kom. 22(1): 43 - 63.
• Piotrowska M., Dudka S., Boilbrzuch E. 1992. Wpływ zróżnicowanych dawek metali śladowych na plon oraz zawartość tych pierwiastków w kukurydzy. Cz. II. Miedź i ołów. Arch. Ochr. Śród. 2: 145 - 152.
• Podsiadło C., Jaroszewska A., Biczak R., Herman B. 2003. Zmiany aktywności enzymów oksydoredukcyjnych oraz zawartość barwników asymilacyjnych w grochu siewnym i łubinie wąskolistnym pod wpływem nawadniania i nawożenia mineralnego. Zesz. Probl. Post. Nauk Rol. 495: 201 - 210.
• Stiborowa M., Doubravova M., Brezinova A. 1986. Efecl of heavy metal ions on growth and biochemical characteristics of photosynthesis of barley (Hordeum vulgare L.). Photosynthetica 20: 418 - 425.
• Szkolnik M. 1980. Mikroelementy w życiu rośliny. PWRiL, Warszawa: 175 ss.
• Wang S. H.. Yang H., Li S. O., Lu Y. P. 2004. Copper - induced stress and antioxidalive responsem in roots of Brassica juncea. L. Bot. Bull. Acad. Sin. 45: 203 - 214.
• Woźny A. 1995. Ołów w komórkach roślinnych. Wydawnictwo Sorus, Poznań: 163 ss.