The effect of salicylic acid and acetylsalicylic acid on red pigment formation in mechanically wounded scales of Hippeastrum x hybr. hort. and on the growth and development of Phoma narcissi

• Autorzy: Saniewska A , Horbowicz M , Saniewski M

Warianty tytułu

PL

Wplyw kwasu salicylowego i kwasu acetylosalicylowego na tworzenie sie czerwonego barwnika w mechanicznie uszkodzonych luskach Hippeastrum x hybr. hort. i na wzrost i rozwoj Phoma narcissi

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

Various organs of Hippeastrum infected by Phoma narcissi, infested with mite, Steneotarsonemus laticeps or mechanically wounded, produce red pigment on the surface of injured tissues. The aim of the present work was to study the effect of salicylic (SA) and acetylsalicylic acids (ASA) (inhibitors of biosynthesis of jasmonates and ethylene) on red pigment formation in wounded scales of bulbs of Hippeastrum and on the mycelium growth of P. narcissi in vivo and in vitro. SA and ASA at a concentration of 1 and 2 mM partially inhibited the formation of red pigment in wounded scales, first of all in first 2 days after treatment. The growth and development of P. narcissi on basal plate and scales of longitudinally cut Hippeastrum bulb treated with SA and ASA (1 and 2 mM) was similar as in control. SA (50 µg·cm⁻³) and ASA (250 µg·cm⁻³) inhibited the mycelium growth of P. narcissi on PDA medium, and concentration of 1000 µg·cm⁻³ of both almost totally inhibited the mycelium growth of the pathogen. Inhibitory effect of SA and ASA on the formation of red pigment in wounded scales of Hippeastrum may be caused by lowered biosynthesis and accumulation of jasmonates.

PL

Różne organy Hippeastrum zainfekowane przez grzyb Phoma narcissi, w następstwie żerowania roztocza Steneotarsonemus laticeps lub uszkodzone mechanicznie, wytwarzają na powierzchni uszkodzonych tkanek czerwony barwnik. Celem badań było poznanie wpływu kwasów salicylowego (SA) i acetylosalicylowego (ASA) (inhibitorów biosyntezy jasmonianów i biosyntezy etylenu) na tworzenie się czerwonego barwnika w uszkodzonych łuskach cebuli Hippeastrum i wzrost grzybni P. narcissi. Kwas salicylowy i kwas acetylosalicylowy wykazały hamujący wpływ na tworzenie się czerwonego barwnika w uszkodzonych łuskach, zwłaszcza w pierwszych 2 dniach po traktowaniu. Wzrost i rozwój grzybni P. narcissi na piętce i łuskach przekrojonych wzdłuż cebuli Hippeastrum i traktowanych SA i ASA w stężeniu 1 i 2 mM był podobny jak w kontroli. Kwas salicylowy w stężeniu 50 µg·cm⁻³, oraz kwas acetylosalicylowy w stężeniu 250 µg·cm⁻³ ograniczały wzrost grzybni P. narcissi na pożywce PDA; w stężeniu 1000 µg·cm⁻³ wystąpiło niemal całkowite zahamowanie wzrostu patogena. Hamujący wpływ SA i ASA na tworzenie się czerwonego barwnika w uszkodzonych łuskach Hippeastrum może być spowodowany obniżeniem biosyntezy i akumulacji jasmonianów.

Słowa kluczowe

EN

Hippeastrum x hybridum; plant disease; fungi; Phoma narcissi; mite; Steneotarsonemus laticeps; mechanically wounded scale; red pigment; tissue; surface; mycelium growth; salicylic acid; acetylsalicylic acid; wounding

• Wydawca: -
• Czasopismo: Acta Agrobotanica
• Rocznik: 2005
• Tom: 58
• Numer: 2
• Opis fizyczny: p.81-89,fig.,ref.

Twórcy

autor

Saniewska A

• Research Institute of Pomology and Floriculture, Pomologiczna 18, 96-100 Skierniewice, Poland

autor

Horbowicz M

• Research Institute of Vegetable Crops, Konstytucji 3 Maja 1/3, 96-100 Skierniewice, Poland

autor

Saniewski M

• Research Institute of Pomology and Floriculture, Pomologiczna 18, 96-100 Skierniewice, Poland

Bibliografia

• Amborabé B.E., Fleurat-Lessard P., Chollet J.F., Roblin G., 2002. Antifungal effects of salicylic acid and other benzoic acid derivatives towards Eutypa lata: structure-activity relationship. Plant Physiol. Biodrem., 40: 1051-1010.
• Blechert S., Brodschelm W., Höylder S., Kammarer L., Kutchan T.M., Mueller M.J., Xia Z.Q., Zenk M.H., 1995. The octadecanoid pathway: Signal molecules for the regulation of secondary pathways. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 92: 4099-4105.
• Creelman R.A., Mullet J.E., 1995. Jasmonic acid distribution and action in plants: Regulation during development and response to biotic and abiotic stress. Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 92: 4114-4119.
• Doares S.H., Narváez-Vásquez J., Conconi A., Ryan C.A., 1995. Salicylic acid inhibits synthesis of proteinase inhibitors in tomato leaves induced by systemin and jasmonic acid. Plant Physiol., 108: 1741-1746.
• Doherty H.M., Selvendran R.R., Bowles D.J., 1998. The wound response of tomato plants can be inhibited by aspirin and related hydroxy-benzoic acids. Physiol. Mol. Plant Pathol., 33: 377-394.
• Horvath D.M., Chua N.-H., 1994. The role of salicylic acid in systemic acquired resistance. Curr. Opin. Biotechnol., 5: 131-136.
• Kuźniak E., Małolepsza U., Patykowski J., Saniewski M., Urbanek H., 1995. Early biochemical responses induced in pea after treatment with Ascochyta pisi and salicylates. In: Environmental Biotic Factors in Integrated Plant Disease Control, Ed. M. Mańka, European Fundation for Plant Pathology, 3rd Conference hosted by The Polish Phytopathological Society, Poznań, pp. 343-347.
• Leslie C.A., Romani R.J., 1988. Inhibition of ethylene biosynthesis by salicylic acid. Plant Physiol., 88: 833-837.
• Malamy J., Klessig D.F., 1992. Salicylic acid and plant disease resistance. Plant J., 2: 643-654.
• Niemann G.J., Baayen R.P., 1989. Inhibitory effect of phenylserine and salicylic acid on phytoalexin accumulation in carnation infected by Fusarium oxysporum f. sp. dianthi. Mededelingen van Facultei voor Landbouwwetenschappen, Rijksuniversiteit Gent, 54/2a: 435-438.
• Peña-Cortés H., Albrecht T., Prat S., Weiler E.W., Willmitzer I., 1993. Aspirin prevents wound-induced gene expression in tomato leaves by blocking jasmonic acid biosynthesis. Planta, 191: 123-128.
• Ponchet M., Duprez V., Ricci P., 1983. Suppression of both induced resistance and phytoalexin production by salicylic acid during elicitation of carnation cutting. Acta Hortic., 141: 61-65.
• Raskin I., 1992. Role of salicylic acid in plants. Annu. Rev. Plant Physiol. Plant Mol. Biol., 43: 439—463.
• Saniewska A.,1992. Influence of mechanical wounding of Hippeaslrum x hybr. hort. bulbs on infection by Stagonospora curtissi (Berk.) Sacc. Acta Hort., 325: 787-792.
• Saniewska A., 1998. Czynniki biotyczne i abiotyczne hamujące wzrost i rozwój Phoma narcissi (Aderh.) Boerema, de Gruyter et Noordel., comb. nov. Zesz. Nauk. Inst. Sadów, i Kwiac., Skiern., Monogr. Rozpr., str. 32.
• Saniewska A., Budzianowski J., 1997. On the nature of red pigment formed in wounded and in Stagonospora curtissi (Berk.) Sacc. (Phoma narcissi) infected tissues in Hippeastrum. Act. Hortic., 430: 843-848.
• Saniewski M., Czapski J.,1999. Jasmoniany i ich funkcja allelopatyczna. Post. Nauk Roln., 1: 3-18.
• Vallad G.E., Goodman R.M., 2004. Systemic acquired resistance and induced systemic resistance in conventional agriculture. Crop Sci., 44: 1920-1934.
• Vernooij B., Uknes S.,Ward E., Ryals J., 1994. Salicylic acid as a signal molecule in plant-pathogen interactions. Curr. Opin. Cell Biol., 6: 275-279.
• Wink M., Lehmann P., 1996. Wounding- and elicitor-induced formation of coloured chalcones and flavans (as phytoalexins) in Hippeastrum x hortorum. Bot. Acta, 109: 412-421.