Ocena tworzenia biofilmu przez szczepy Staphylococcus aureus wyizolowane z plwociny pacjentow z mukowiscydoza

• Autorzy: Pietruczuk-Padzik A. , Stefanska J. , Semczuk K. , Dzierzanowska D. , Tyski S.

Warianty tytułu

EN

Evaluation of biofilm formations by Staphylococcus aureus isolated from sputum of cystic fibrosis patients

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Celem przedstawionych badań była ocena dwóch metod wykrywania biofil- mu bakteryjnego tworzonego przez kliniczne szczepy Staphylococcus aureus wyizolowane z plwociny pacjentów z mukowiscydozą oraz ocena tworzenia biofilmu na powierzchni dołków płytek polistyrenowych w zależności od użytego podłoża hodowlanego (LB, BHI, TSBglu). Zdolność i intensywność tworzenia biofilmu analizowano metodą barwienia z użyciem fioletu krystalicznego (CV) oraz metodą oceny redukcji chlorku 2,3,5-trójfenylotetrazoliowego (TTC). Stwierdzono, że obydwie metody barwienia okazały się przydatne do oceny powstającego biofilmu gronkowcowego. Za najbardziej optymalne podłoże do hodowli biofilmu gronkowcowego uznano podłoże LB.

EN

The purpose of this study was to evaluate two screening methods for detection of biofilm formation by eighty clinical Staphylococcus aureus isolates from patients with cystic fibrosis, and evaluation of biofilm production on the polystyrene 96-well tissue culture plates, depending on media applied. All clinical strains were incubated in three different media: Luria-Bertani broth (LB), tryptic soy broth supplemented with 2% glucose (TSBglu) and brain heart infusion (BHI). Biofilm production was screened by staining with crystal violet (CV) or with 2,3,5-triphenyltetrazolium chloride (TTC). Both CV and TTC assays showed, that all analyzed isolates created biofilm, in all tested media, however with different intensity. In conclusion, the CV method was found to be more sensitive than the TTC method, when we need information about whole mass of biofilm. The most optimal medium for the biofilm culture was LB medium.

Słowa kluczowe

PL

szczepy bakteryjne; Staphylococcus aureus; biofilmy bakteryjne; ludzie chorzy; mukowiscydoza; plwociny; wykrywanie drobnoustrojow

• Wydawca: -
• Czasopismo: Medycyna Doświadczalna i Mikrobiologia
• Rocznik: 2010
• Tom: 62
• Numer: 1
• Opis fizyczny: s.1-8,rys.,tab.,bibliogr.

Twórcy

autor

Pietruczuk-Padzik A.

• Zaklad Mikrobiologii Farmaceutycznej, Warszawski Uniwersytet Medyczny, ul.Oczki 3, 02-007 Warszawa

autor

Stefanska J.

autor

Semczuk K.

autor

Dzierzanowska D.

autor

Tyski S.

Bibliografia

• 1. Bartoszewicz M, Rygiel A, Krzemiński M, Przondo-Mordarska A. Penetration of a selected antibiotic and antiseptic into a biofilm formed on orthopedic steel implants. Ortop Traumatol Rehabil. 2007;9:310-18.
• 2. Bendouah Z, Barbeau J, Hamad WA, Desrosiers M. Biofilm formation by Staphylococcus aureus and Pseudomonas aeruginosa is associated with an unfavorable evolution after surgery for chronic sinusitis and nasal polyposis. Otolaryngol Head Neck Surg. 2006; 134: 991 - 6.
• 3. Bryers JD. Medical Biofilms. Biotechnol. Bioeng. 2008; 100: 1 - 18.
• 4. Burmølle M, Webb JS, Rao D i inni. Enhanced biofilm formation and increased resistance to antimicrobial agents and bacterial invasion are caused by synergistic interactions in multispecies biofilms. Appl. Environ. Microbiol. 2006; 72: 3916 - 23.
• 5. Costerton JW, Stewart PS, Greenberg EP. Bacterial Biofilms: A Common Cause of Persistent Infections. Science 1999; 284: 1318-22.
• 6. Davey ME, O 'Toole GA. Microbial Biofilms: from Ecology to Molecular Genetics. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 2000; 64: 847 - 67.
• 7. Donlan RM, Costerton JW. Biofilms: Survival Mechanisms of Clinically Relevant Microorganisms. Clin. Microbiol. Rev. 2002; 15: 167-93.
• 8. Gabrielson J, Hart M, Jarelov A i inni. Evaluation of redox indicators and the use of digital scanners and spectrophotometer for quantification of microbial growth in microplates. J. Microbiol. Methods 2002; 50: 63 - 73.
• 9. Gilbert P, Das J, Foley I. Biofilm susceptibility to antimicrobials. Adv. Dent. Res. 1997; 11: 160 -7.
• 10. Kalicińska A, Tyski S. Analiza wzrostu biofilmu Pseudomonas aeruginosa w zależności od warunków namnażania szczepów i barwienia biofilmu. Med. Dośw. Mikrobiol. 2009; 61: 243 -52.
• 11. Knobloch JK-M, Horstkotte MA, Rohde H, Mack D. Evaluation of different detection methods of biofilm formation m Staphylococcus aureus. Med. Microbiol. Immunol. 2002; 191: 101 -6.
• 12. Mandal S, Berendt AR, Peacock SJ. Staphylococcus aureus bone and joint infection. J. Infect. 2002; 44: 143-51.
• 13. Molina A, Del Campo R, Máiz L i inni. High prevalence in cystic fibrosis patients of multiresistant hospital-acquired methicillin-resistant Staphylococcus aureus ST228-SCCmecI capable of biofilm formation. J. Antimicrob. Chemother. 2008; 62: 961 - 7.
• 14. Moreau-Marquisa S, Stantona ВА, О 'Toole GA. Pseudomonas aeruginosa biofilm formation in the cystic fibrosis airway. Pulm Pharmacol Ther. 2008; 21: 595 - 9.
• 15. Murraya TS, Egana M, Kazmierczak BI. Pseudomonas aeruginosa chronic colonization in cystic fibrosis patients. Curr. Opin. Pediatr. 2007; 19: 83 - 8.
• 16. Ratjen F, Döring G. Cystic fibrosis. Lancet 2003; 361: 681-9.
• 17. Saiman L. Microbiology of early CF lung disease. Paediatr Respir Rev. 2004; 5: 367 - 9.
• 18. Semczuk K, Dzierżanowska-Fangrat K, Dmeńska H, Dzierżanowska D. Ocena wytwarzania biofilmu przez szczepy Staphylococcus aureus izolowane od dzieci chorych na mukowiscydozę. Med. Dośw. Mikrobiol. 2008; 60: 311 -8.
• 19. Trafny EA. Powstawanie biofilmu Pseudomonas aeruginosa i jego znaczenie w patogenezie zakażeń przewlekłych. Post. Microbiol. 2000; 39: 55-71.
• 20. Wagner VE, Iglewski BH. P. aeruginosa biofilms in CF infection. Clin Rev Allergy Immunol. 2008; 35: 124-34.