PL EN


Preferencje help
Widoczny [Schowaj] Abstrakt
Liczba wyników
2009 | 14 | 2 |

Tytuł artykułu

The influence of black currant [Ribes nigrum] seed extract on effectiveness of human ceruloplasmin in Fe[II] ions elimination

Treść / Zawartość

Warianty tytułu

PL
Wplyw ekstraktu z pestek porzeczki czarnej [Ribus nigrum] na skutecznosc ludzkiej ceruloplazminy w eliminowaniu Fe[II]

Języki publikacji

EN

Abstrakty

EN
Ions of irons, especially ferrous ions may be harmful for living organisms, because they generate reactive oxygen species like O2 •- or •OH. Probability of the risk rises especially in pathological conditions, in which high level of iron is observed. For this reason scientists try to establish new methods that can support organism in eliminating reactive ferrous ions. Nowadays, attention focuses on substances present in plants, especially polyphenols, whose administration prevents oxidative damages in iron overloading. This new approach requires some research on behavior of plant-derived compounds in human organism, within a system containing other biomolecules involved in iron metabolism. The aim of this study has been to investigate the influence of black currant (Ribes nigrum) seed extract, a source of polyphenols, on the activity of ceruloplasmin, an enzyme participating in Fe(II) elimination from blood plasma in human organism. Depletion of Fe(II) caused by ceruloplasmin isolated from healthy blood donors was compared to its decrease in a system containing both ceruloplasmin and the extract. The results have shown that addition of a particular amount of the extract elevates the effectiveness of ceruloplasmin in eliminating Fe(II) from the sample but only under physiological condition (pH 7.4; T 37°C). In a weak acidic solution, addition of the extract does not lead to any change in Fe(II) concentration.
PL
Jony żelaza, szczególnie jony żelazawe Fe(II), ze względu na wysoki potencjał oksydoredukcyjny mają zdolność generowania wolnych rodników, takich jak O2 •- i •OH. W pewnych stanach patologicznych, którym towarzyszy przeładowanie organizmu żelazem, ryzyko pojawienia się wolnych jonów Fe(II) inicjujących wiele procesów wolnorodnikowych jest bardzo prawdopodobne. W tym celu dąży się do opracowania terapii, które w chorobach żelazozależnych wspomogą naturalne mechanizmy usuwania reaktywnych jonów żelaza z organizmu. Ostatnio dużą uwagę poświęca się aktywnym substancjom obecnym w roślinach, szczególnie związkom polifenolowym, ze względu na ich silne właściwości chelatujące. Ten nowy kierunek badań wymaga jednak wnikliwej analizy, która wyjaśni mechanizm współdziałania substancji roślinnych z innymi biomolekułami zaangażowanymi w prawidłowy metabolizm żelaza w organizmie oraz rozstrzygnie o bezpieczeństwie ich stosowania. Celem badań było ustalenie wpływu ekstraktu z pestek porzeczki czarnej (Ribus nigrum), bogatego w związki polifenolowe, na aktywność ludzkiej ceruloplazminy, enzymu uczestniczącego w usuwaniu Fe(II) w organizmie ludzkim. Ubytek Fe(II) obserwowany w obecności ceruloplazminy porównywano z jego ubytkiem w mieszaninie ceruloplazmina-ekstrakt. Stwierdzono, że dodatek ekstraktu podnosi skuteczność ceruloplazminy w eliminowaniu Fe(II) ze środowiska. Istnieje więc przypuszczenie, że związki pochodzenia roślinnego takie jak polifenole mogą wspomagać naturalne mechanizmy eliminowania Fe(II) w organizmie.

Wydawca

-

Rocznik

Tom

14

Numer

2

Opis fizyczny

p.217-227,fig.,ref.

Twórcy

autor
  • Poznan University of Medical Science, 6 Grunwaldzka Street, 60-789 Poznan, Poland
autor
autor

Bibliografia

  • Afanas’ev I.B. 1995. Different antioxidant activities of bioflavonoid rutin in normal and iron-overloading rats. Biochem. Pharmacol., 50: 627-635.
  • Afanas’ev I.B., Dorozhko A.I., Brodski A.V., Kostyuk V.A., Potapovitch A.I. 1989. Chelating and free radical scavenging mechanisms of inhibitory action of rutin and quercetin in lipid peroxidation. Biochem. Pharmacol., 38: 1763-1769.
  • Benvenuti S., Pellati E., Melegari M., Bertelli D. 2004. Polyphenols, anthocyanins, ascorbic acid and radical scavenging activity of Rubus, Ribes and Aronia. J. Food. Scien., 69: 164-169.
  • Church W.R., Jernigan R.L., Toole J., Hewick R.M., Knopf J., Knut G.J., Nesheim M.E., Mann K.G., Fass D.N. 1984. Coagulation factors V and VIII and ceruloplasmin constitute afamily of structurally related proteins. Proc. Nat. Acad. Sci. USA., 81: 6934-6937.
  • Dagg J.H. 1974. Treatment of iron deficiency and iron overload. BMJ., 2: 494-497.
  • Declume C. 1989. Anti-inflammatory evaluation of hydroalcoholic extract of black currant leaves (Ribes nigrum). J. Ethnophamacol., 27: 91-98.
  • Duthie G.G., Duthie S.J., Kyle J.A.M. 2000. Plant polyphenols in cancer and heart disease: implications as nutritional antioxidants. Nutr. Research., 13: 79-106.
  • Erel O. 1998. Automated measurement of serum ferroxidase activity. Clin. Chem., 44: 2313-2319.
  • Hilewicz-Grabska M., Zgirski A., Krajewski T., Płonka A. 1998. Purification and partial characterization of goose ceruloplasmin. Arch. Biochem. Biophys., 260: 18-27.
  • Konno T., Okubo T. 2005. Immunostimulatory effects of polysaccharide-rich substance with antitumor activity isolated from black currant (Ribes nigrum L.). Biosci. Biotechnol. Biochem., 69: 2042-2050.
  • Lu Y., Yeap Foo L. 2003. Polyphenolic constituents of black currant seed residue. Food Chem., 80: 71-76.
  • Lugasi A., Hovari J. 2003. Antioxidant properties of commercial alcoholic and nonalcoholic beverages. Food., 47: 79-86.
  • Mccullough K.D., Bartfay W.J. 2007. The dose-dependent effects of chronic iron overload on the production of oxygen free radicals and vitamin E concentrations in the liver of a murine model. Biol. Res. Nurs., 8: 300-304.
  • Mikkonen T.P., Maata K.R., Hukkanen A.T., Kokko H.J., Torronen A.R., Karenlampi S.O., Karjalainen R.O. 2001. Flavonols content varies among blackcurrant cultivars. J. Agric. Food. Chem., 49: 3274-3277.
  • Mira L., Fernandez M.T., Santos M., Rocha R., Florencio M.H., Jennings K.R. 2002. Interactions of flavonoids with iron and copper ions: a mechanism for their antioxidant activity. Free. Radic. Res., 36: 1199-2008.
  • Moran J.F., Klucas R.V., Grayer R.J., Abian J., Becana M. 1997. Complexes of iron with phenolic compounds from soybean nodules and other legume tissues; prooxidant and antioxidant properties. Free. Radic. Biol. Med., 22: 861-870.
  • Nielsen J.L.F., Haren G.R., Magnussen E.L., Dragsted L.O., Rasmussen S.E. 2003. Quantification of antocyanins in commercial black currant juices by simple high performance liquid chromatography. Investigation of their pH stability and antioxidative potency. J. Agric. Food. Chem., 51: 5861-5866.
  • Ortel T.N., Takahashi N., Putnam F.W. 1984. Structural model of human ceruloplasmin based on internal triplication, hydrophilic/hydrophobic character, and secondary structure of domains. Proc. Nat. Acad. Sci., USA, 81: 4761-4765.
  • Picuric-Joranovick K., Demenko V.J., Milovanovic M. 2002. Compositional components and the oxidative stability of Ribes nigrum seed oil. J. Herb. Spec. & Med. Plants., 10: 37-43.
  • Pietrangelo A., Montosi G., Garuti C., Contri M., Giovannini F., Ceccarelli D., Masini A. 2002. Iron-induced oxidant stress in nonparenchymal liver cells: mitochondrial derangement and fibrosis in acutely iron-dosed gerbils and its prevention by silybin. J. Bioenerg. Biomembr., 34: 67-79.
  • Powell L.W. 2002. Hereditary hemochromatosis and iron overload diseases. J. Gastroenterol. Hepatol., 17: 191-195.
  • Roeser H.P., Lee G.R., Nacht G.E., Cartwright G.E. 1970. The role of ceruloplasmin in iron metabolism. J. Clin. Invest., 49: 2408-2417.
  • Roura E., Andres-Lacueva C., Estruch R., Lamuela-Raventos R.M. 2006. Total polyphenol intake estimated by a modified Folin-Ciocalteu assay of urine. Clin. Chem., 52: 749-752.
  • Ryeden L. 1984. Ceruloplasmin. In: Copper proteins and copper enzymes. Lontie R. Jr. (ed.) Boca Raton: CRC Press., (3): 37-100.
  • Sochaski M.A., Bartfay W.J., Thorpe S.R., Baynes J.W., Bartfay E., Lehotay D.C., Liu P.P. 2002. Lipid peroxidation and protein modification in a mouse model of chronic iron overload. Metabolism., 51: 645-651.
  • Stocks J., Gutteridge J.M.C., Sharp R.J., Dortmandy T.L. 1974. The inhibition of lipid autooxidation by human serum and its relationship to serum proteins and tocopherol. Clin. Sci. Mol. Med., 47: 223-233.
  • Stoner G.D., Mukhtar H. 1995. Polyphenols as a cancer chemopreventive agent. J. Cell. Biochem. suppl., 22: 169-180.
  • Yoko M.K., Tatsuo S., Itsuro Y., Masanobu A. 2003. Anti-influenza virus activity of crude extract of Ribes nigrum L. Pthytother. Res., 17: 120-122.
  • Yoshino M., Murakami K. 1998. Interaction of iron with polyphenolic compounds; application to antioxidant characterization. Anal. Biochem., 257: 140-144.
  • Zhang Y., Li H., Zhao Y., Gao Z. 2006. Dietary supplementation of baicalin and quercetin attenuates iron overload induced mouse liver injury. Eur. J. Pharmacol., 535: 263-269.
  • Zhao Y., Li H., Gao Z., Xu H. 2005. Effects of dietary baicalin supplementation on iron overload-induced mouse liver oxidative injury. Eur. J. Pharmacol., 509: 195-200.
  • Zhao Z.S., Khan S., O’Brien P.J. 1998. Catecholic iron complexes as cytoprotective superoxide scavengers against hypoxia: reoxygenetion injury in isolated hepatocytes. Biochem. Pharmacol., 56: 825-830.

Typ dokumentu

Bibliografia

Identyfikatory

Identyfikator YADDA

bwmeta1.element.agro-article-1c3e7066-3ef3-4f5e-814d-d2a8ad9099cc
JavaScript jest wyłączony w Twojej przeglądarce internetowej. Włącz go, a następnie odśwież stronę, aby móc w pełni z niej korzystać.