Wplyw regulatorow wzrostu i sacharozy na regeneracje in vitro zwartnicy mieszancowej [Hippeastrum hybridum] i zwartnicy Chmiela [Hippeastrum x chmielii Chm.]

• Autorzy: Witomska M
• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

The studies were carried out in 2001. Effect of two cytokinin and auxin combinations in the medium (1 mg(BA)·dm³ + 0.1 mg (NAA)·dm³ and kinetin 5 mg·dm³ + 0.5 mg(IAA)·dm³) on differentiation of bulblets on twin scale expla nts of three Hippeastrum X chmielii clones and one clone of Hippeastrum hybridum, was tested. Next the effects of sucrose concentration in the medium (30, 60 or 90 g·dm³) as well as the presence of BA and NAA on fresh weight of whole plants, bulblets, leaves and roots were compared. Hipeastrum species differed in their response to the culture conditions. Explants of all Hippeastrum X chmielii clones produced more bulblets at pre­sence of BA + NAA than with kinetin + IAA in the medium, while no such difference in bulblet number was observed in Hippeastrum hybridum cultured on the same media. Sucrose in concentration 30 g·dm³ and medium without growth regulators positively affected fresh weight of Hippeastrum X chmielii plants while no diffe­rences in fresch weight of Hippeastrum hybridum plants were observed between 30 and 60 g·dm³ sucrose concentrations.

EN

Badania przeprowadzono w 2001 r. Określono wpływ 1 mg(BA)-dm³ + 0,1 mg(NAA)-dm³ oraz kinetyny 5 mg·dm³ + 0,5 mg(IAA)·dm³ na różnicowanie cebul na eksplantatach dwuluskowych trzech klonów zwartnicy Chmielą i jednego klonu zwartnicy mieszańcowej. Następnie porównano wpływ stężenia sacharozy (30, 60 i 90 g·dm³) oraz obecności BA i NAA w pożywce na świeżą masę całych roślin, cebul, liści i korzeni dwóch gatunków zwartnicy. Badane gatunki zwartnicy różnie reagowały na warunki prowadzenia kultu­ry. Liczba cebul wytworzonych przez jeden eksplantat zależała od obecności regu- lataorów wzrostu w pożywce i od gatunku zwartnicy. Eksplantaty wszystkich klonów zwartnicy Chmielą różnicowały więcej cebul w obecności BA i NAA niż po dodaniu kinetyny i IAA do pożywki, podczas gdy u zwartnicy mieszańcowej takiego wpływu nie obserwowano. Na świeżą masę roślin i cebul obydwu badanych klonów zwartnicy Chmielą korzystnie wpływało stężenie sacharozy 30 g·dm³ i pożywka bez hormonów. U zwartnicy mieszańcowej cechy te nie różniły się przy zastosowaniu sacharozy 30 i 60 g·dm³. Masa liści malała wraz ze wzrostem stężenia sacharozy w pożywce u obydwu gatunków zwartnicy. Masa korzeni natomiast nie różniła się przy stężeniu sacharozy 30 i 60 g·dm³ na pożywce bez hormonów u zwartnicy mieszańcowej i klonu 3/7 zwartnicy Chmielą, podczas gdy u klonu 6 zwartnicy Chmielą była naj­wyższa w obecności sacharozy 30 g·dm³, bez hormonów.

Słowa kluczowe

PL

regeneracja; Hippeastrum x chmielii; sacharoza; Hippeastrum x hybridum; zwartnica mieszancowa; rosliny ozdobne; hodowla in vitro; zwartnica Chmiela; regulatory wzrostu

• Wydawca: -
• Czasopismo: Zeszyty Problemowe Postępów Nauk Rolniczych
• Rocznik: 2002
• Tom: 483
• Opis fizyczny: s.263-270,tab.,bibliogr.

Twórcy

autor

Witomska M

• Szkola Glowna Gospodarstwa Wiejskiego, ul. Nowoursynowska 166, 02-787 Warszawa

Bibliografia

• 1. Aartrijk J. Van, Blom-Barnhoorn G.J. 1981. Growth regulator requirements for adventitious regeneration from Lilium bulb-scale tissue in vitro, in relation to dura­tion of bulb storage and cultivar. Sci. Hort. 14: 261-268.
• 2. Bach A. 1990. Shoot multiplication and bulblet production of hyacinth (Hyacinthus orientalis L.) in vitro. Zesz. Nauk. AR w Krakowie 150: 82 s.
• 3. Bach A., Pawłowska B. 1993. Effect of type of carbohydrates in regeneration of Hyacinthus orientalis L. in long-term cultures. Flia Hort. 5: 3-11.
• 4. Chung J.D., Chun C.K., Suh Y.K., Rhee E.M. 1983. In vitro propagagation of Hya­cinthus orientalis L. III. Efect of auxin concentration and light or dark incubation on organogenesis from flower stalk tissue and comparison of totipotency in bulb scale and flower stalk tissue. J. Kor. Soc. Hortic. Sci. 24: 76-85.
• 5. Chung J.D., Chun C.K., Suh Y.K., Rhee E.M. 1984. In vitro propagagation of Hyacinthus orientalis L. VI. Effects of sucrose concentration, pH value, bulblet age and chilling treatment of bulblet on organogenesis from bulblet scale and leaf tissue. J. Kor. Soc. Hortic. Sci. 25: 72-79.
• 6. Gabryszewska E. 1996. The influence of various light conditions on the adventitious bulb formation from bulb-scale explants of lily cv. 'Red Band' in vitro and disease resistance of horticultural plants. Theses II International Symposium Salaspils, Latvia: 37-41.
• 7. Gerrits M.M., De Klerk GJ. 1992. Dry-matter partitioning between bulbs and leaves in plantlets of Lilium speciosum regenerated in vitro. Acta Bot. Neerl. 41: 461-468.
• 8. Haruki K, Yamada K., Hosoki Т., Ohta K. 1996. Effect of sugar and temperature on the growth of miniature bulbs of Lilium japonicum Thunb. cultured on a rotary shaker. J. Jap. Soc. Hortic. Sci. 65: 363-367.
• 9. Hosoki Т., Asahira T. 1980. In vitro propagation of Narcissus. HortScience 15: 602-603.
• 10. Jeong J.H. 1996. In vitro propagation of bulb scale section of several Korean native lilies. Acta Hortic. 414: 269-276.
• 11. Kukvlczanka K., Kromer K, Cząstka В. 1989. Propagation of Fritillaria meleagris L. through tissue culture. Acta Hortic. 251: 147-153.
• 12. Mii M., Mori Т., Iwase N. 1974. Organ formation from the excised bulb scales of Hippeastrum hybridum in vitro. J. Hortic. Sci. 49: 241-244.
• 13. Murashige Т., Skoog F. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol. Plant. 15: 473-497.
• 14. Novak F.J., Petru E. 1981. Tissue culture propagation of Lilium hybrids. Sci. Hortic. 14: 191-199.
• 15. Okazaki K., Koizumi M., Nishito Т., Dore С. 1995. Callus formation and regenera­tion of some species of Lilium. Acta Hortic. 392: 97-106.
• 16. Pierik R.L.M., Blokker J.S., Dekker M.W.C., De Does H., Kuip A.C., Van Der Made T.A., Menten Y.MJ., De Vetten N.C.M.H. 1990. Micropropagation of Hippeastrum hybridum. Integration of in vitro techniques in ornamental plant breeding. Procee­dings of Symposium 10-14 November. Eucarpia, Section ornamentals. Centre for Plant Breeding Research, The Nederlands: 21-26.
• 17. Podwyszyńska M. 1999. Regeneracja i rozmnażanie tulipana in vitro. Mat. z konf. „Rozmnażanie roślin in vitro" ISiK, 14 IV 1999 Skierniewice: 14-20.
• 18. Seabrook J.E.A., Cumming B.G. 1977. The in vitro propagation of amarylis (Hippeastrum sp. hybrids). \\Vco."Vo\. Yb.'Ho. IT. SiV-SJfc.
• 19. Takayama S., Misawa M. 1980. Differentiation in Lilium bulb-scales grown in vitro. Effect of activated charcoal, physiological age of bulbs and sucrose concentration on differentiation and scale leaf formation in vitro. Physiol. Plant. 48: 121-125.
• 20. Takayama S., Misawa M. 1982/83. A scheme for mass propagation of Lilium in vitro. Sci. Hortic. 18: 353-362.
• 21. Witomska M. 2001. Wpływ regulatorów wzrostu na rozmnażanie Fritillaria imperialis L. 'Rubra Maxima' in vitro. Zesz. Nauk. ISiK 9: 355-362.
• 22. Witomska M., Łukaszewska A. 2000. Effect of sucrose concentration on regeneration in vitro from different explants of Fritillaria imperialis L. Ann. Warsaw Agric. Univ. Hortic. 21: 21-28.