PL EN


Preferencje help
Widoczny [Schowaj] Abstrakt
Liczba wyników

Czasopismo

2004 | 50 | 2 |

Tytuł artykułu

Clonal multiplication of Lithospermum canescens [Michx.] Lehm. and Onosma paniculatum [Bur. and Franch]

Warianty tytułu

Języki publikacji

EN

Abstrakty

EN
An efficient plant micropropagation system was established using shoot tips and stem segments of Lithospermum canescens and Onosma paniculatum (Boraginaceae). A high frequency of axillary shoot formation was achieved on LS [15] medium with 0.5 mg/1 kinetin and 2.0 mg/1 BAP (average shoot formation per explant was 6.18 ± 1.89 for L. canescens and 3.01 ± 0.82 for 0. paniculatum). The best results were obtained with 1x8 clone of L canescens. Axillary branching and root formation were the highest (8.22 shoot formation, 46.7% of rooting). Contamination of the explants with Rhodococcus fascians D188 increased the number of newly formed shoots of 0. paniculatum to 4.6 ± 0.72, while the propagation process of L. canescens was not affected. The highest percentage of rooted shoots of L canescens was observed on V, B5 medium [14] with 0.2 mg/1 1BA (from 27% to 46.7%, depending on plant line), while in the case of regenerated shoots of 0. paniculatum hormone-free LS medium induced roots more effectively (36.7%) than V2 B5 medium with 0.2 mg/1 1BA (25%).
PL
Wydajny sposób mikrorozmnażania roślin Lithospermum canescens (Michx.) Lehm, i Onosma paniculatum (Bur. and Franch) (Boraginaceae) opracowano z wykorzystaniem pąków szczytowych oraz bocznych. Największą liczbę pędów rozwijających się z eksplantatów obserwowano na pożywce LS (15] z kinetyną (0,5 mg/1) i BAP (2,0 mg/l). Średnia liczba rozwijających się pędów w wypadku L canescens wyniosła 6,18 ± 1,89, a w wypadku 0. paniculatum 3,01 ± 0,82. Najlepsze wyniki uzyskano dla klonu Lc8 L. canescens. Liczba uzyskanych pędów z istniejących merystemów wyniosła 8,22, a procent ukorzenionych pędów - 46,7. Zakażenie eksplantatów roślinnych szczepem bakteryjnym Rhodococcus fascians Dl 88 zwiększało liczbę nowopowstających pąków w kulturze 0. paniculatum do 4,6 ± 0,72, natomiast w wypadku L. canescens proces ten nie byt efektywny. Najwyższy procent ukorzenionych pędów L canescens otrzymano na pożywce V. B5 (141-7~IBA (zależnie od linii: od 27% do 46,7%), podczas gdy wytwarzanie korzeni 0. paniculatum następowało lepiej (36,7%) na pożywce LS bez regulatorów wzrostu.

Wydawca

-

Czasopismo

Rocznik

Tom

50

Numer

2

Opis fizyczny

p.55-64,fig.,ref.

Twórcy

  • Medical University of Warsaw, Banacha 1, 02-097 Warsaw, Poland
autor
autor

Bibliografia

  • 1. Crowford D, Puccons: hoary or hairy? Minnesota Plant Press 1998, 17 (2). File:///A//Puccons Hoary or Hairy.htm.
  • 2. Wiedenfeld H, Pietrosiuk A, Furmanowa M, Roeder E, Pigment compounds in Lithospermum canescens Lehm. Abstracts of Plenary Lectures, Short Lectures and Posters of 46th Annual Congress of the Society for Medicinal Plant Research, Vienna, Austria 1998, 31 August - 4 September, G21.
  • 3. Wiedenfeld H, Pietrosiuk A, Furmanowa M, Roeder E, Pyrrolizidine alkaloids from Lithospermum canescens Lehm. Zeitschrift für Naturforschung 2003; 58G173-176.
  • 4. Couladouros EA, Plyta ZF, Strongilos AT, Papageorgiou VP, Asymetrie synthesis of alkanin and shikonin. Tetrahedron Letters 1997; 38 (41):7263-7266.
  • 5. Pietrosiuk A, Furmanowa M, Skopińska-Różewska E, Sommer E et al., The effect of acetylshikonin isolated from Lithospermum canesceus roots on tumor-induced cutaneous angiogenesis. Acta Poloniae Pharmaceutica - Drug Research 2004; 61(5): 379-382.
  • 6. Tabata M, Fujita Y, Production of shikonin by plant cell cultures. In: Day P, Zaitlin M, Hollaender A. Ed. Biotechnology in Plant Science, Academic Press, Orlando, FL 1985:207-218.
  • 7. Pietrosiuk A, Wiedenfeld H, Shikonin derivatives from Lithospermum canescens (Michx.) Lehm, (accepted to Pharmaceutical Biology).
  • 8. Pietrosiuk A, Kędzia B, Holderna-Kędzia E et al, Antimicrobial activity of naphthoquinones from Lithospermum canescens Lehm. Herba Polonica 2003; 50 (3/4):82-88.
  • 9. Pietrosiuk A, Skopińska-Różewska E, Furmanowa M et al, Immunomodulatory effect of shikonin derivatives isolated from Lithospermum canescens on cellular and humoral immunity in Balb/c mice. Die Pharmazie 2004: 59 (8):640-642.
  • 10. Ning W, Cao RQ, Onosma paniculatum: in vitro culture and the production of purple-red pigment. In: Bajaj Y. P. S. Ed. Biotechnology in Agriculture and Forestry, vol. 37, Medicinal and Aromatic Plants IX, Springer-Verlag Berlin Heidelberg 1996: 226-241.
  • 11. Papageorgiou VP, Assimopoulou AN, Couladouros EA et al, The chemistry and biology of alkanin, shikonin and elated naphthazarin natural products. Angewandte Chemie International Edition, 1999: 38:270-300.
  • 12. Vereecke D, Burssens S, Simón-Mateo C et al., The Rhodococcus fascians-plant interaction: morphological traits and biotechnological applications. Planta 2000; 210:241-251.
  • 13. Murashige T, Skoog F, A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum 1962; 15:473-497.
  • 14. Gamborg OL, Miller RA, Ojima K, Nutrient requirements of suspension cultures of soybean root cells. Experimental Cell Research 1968; 50: 151-158.
  • 15. Linsmaier EM, Skoog F, Organic growth factor requirement of tobacco tissue cultures. Physiologia 63
  • PI anta rum 1965: 18 (1):100-127.
  • 16. Zhou R, Zhang Z, Organogenesis and pigmentation in cultures of Lithospermum erythrorhizon. Journal of Herbs, Spices & Medicinal Plants 1993; 1:57-63.
  • 17. Schenk RU, Hildebrandt AC, Medium and techniques for induction and growth of monocoty- ledonous and dicotyledonous plant cell cultures. Canadian Journal of Botany 1972; 50: 199-204.
  • 18. Nitsch JP, Nitsch C, Haploid plants from pollen grains. Science 1969; 163:85- 87.
  • 19. Olszowska O, Furmanowa M, Micropropagation of Coluria geoides by axillary shoots. Planta Medica 1986; 52:521.
  • 20. Hussey G, In vitro propagation of horticultural and agricultural crops. In: Mantel SH, Smith H. Cambridge University Press, Cambridge, London, New York, New Rochelle, Melbourne, Sydney, Plant Biotechnology, 1984:111-138.
  • 21. Bajaj YPS, Furmanowa M, Olszowska O, Biotechnology of the micropropagation of medicinal and aromatic plants. In: Bajaj YPS, Biotechnology in Agriculture and Forestry, Medicinal and Aromatic Plants 1, Springer-Verlag, Berlin, Heidelberg, New York, London, Paris, Tokyo, 1988:60- 103.
  • 22. Furmanowa M, Gajdzis-Kuls D, Ruszkowska J et al, In vitro propagation of Withania somnifera and isolation of withanolides with immunosuppressive activity. Planta Medica 2001; 67:146-14.

Typ dokumentu

Bibliografia

Identyfikatory

Identyfikator YADDA

bwmeta1.element.agro-article-0ee15ce9-41f4-4a9d-9689-4a5b4a9d5cfb
JavaScript jest wyłączony w Twojej przeglądarce internetowej. Włącz go, a następnie odśwież stronę, aby móc w pełni z niej korzystać.