PL EN


Preferencje help
Widoczny [Schowaj] Abstrakt
Liczba wyników
2015 | 71 | 12 |
Tytuł artykułu

Ocena wpływu stresu oksydacyjnego na nasienie zwierząt

Warianty tytułu
EN
Assessment of the influence of oxidative stress on animal semen
Języki publikacji
PL
Abstrakty
EN
Oxidative stress has a significant impact on the quality of the mammalian semen. An excessive amount of reactive oxygen species (ROS) present in the environment of the spermatozoa, which rises as a result of prooxidative-antioxidative balance disorders, leads inter alia to a decrease of semen motility, changes in the conformation of the spermatozoa membrane, acrosome damage, decrease of mitochondrial activity, and appearance of the lipid peroxidation, which can become a cause of reduced fertility or infertility. For this reason the estimation of the influence of oxidative stress on semen can turn out to be a very useful tool in diagnostics of problems with fertility. Nowadays, in order to evaluate the intensity of the oxidative stress it is possible to use the direct method and indirect method that evaluate both the amount of ROS in the semen and the increase of changes in the spermatozoa caused by this compound. A precise analysis of the changes, resulting from prooxidative-antioxidative balance disorders with use of a suitable method of analysis is a base for accurate diagnosis.
Wydawca
-
Rocznik
Tom
71
Numer
12
Opis fizyczny
s.743-747,bibliogr.
Twórcy
  • Katedra Rozrodu z Kliniką Zwierząt Gospodarskich, Wydział Medycyny Weterynaryjnej, Uniwersytet Przyrodniczy we Wrocławiu, pl.Grunwaldzki 49, 50-366 Wrocław
autor
  • Katedra Rozrodu z Kliniką Zwierząt Gospodarskich, Wydział Medycyny Weterynaryjnej, Uniwersytet Przyrodniczy we Wrocławiu, pl.Grunwaldzki 49, 50-366 Wrocław
autor
  • Katedra Rozrodu z Kliniką Zwierząt Gospodarskich, Wydział Medycyny Weterynaryjnej, Uniwersytet Przyrodniczy we Wrocławiu, pl.Grunwaldzki 49, 50-366 Wrocław
autor
  • Katedra Biochemii i Biotechnologii Zwierząt, Wydział Bioinżynierii Zwierząt, Uniwersytet Warmińsko-Mazurski w Olsztynie, ul.Oczapowskiego 5, 10-719 Olsztyn
  • Katedra Biochemii i Biotechnologii Zwierząt, Wydział Bioinżynierii Zwierząt, Uniwersytet Warmińsko-Mazurski w Olsztynie, ul.Oczapowskiego 5, 10-719 Olsztyn
Bibliografia
  • 1. Aitken R. J.: Free radicals, lipid peroxidation and sperm function. Reprod. fertil. dev. 1995, 7, 659-668.
  • 2. Aitken R. J., Clarkson J. S., Fishel S.: Generation of reactive oxygen species, lipid peroxidation, and human sperm function. Biol. reprod. 1989, 40, 183-197.
  • 3. Aitken R. J., Harkiss D., Buckingham D. W.: Analysis of lipid peroxidation mechanisms in human spermatozoa. Mol. Reprod. Dev. 1993, 35, 302-315.
  • 4. Aitken R. J., Wingate J. K., De Iuliis G. N., McLaughlin A.: Analysis of lipid peroxidation in human spermatozoa using BODIPY C11. Mol. Hum. Reprod. 2007, 13, 203-211.
  • 5. Ball B. A.: Oxidative stress, osmotic stress and apoptosis: Impacts on sperm function and preservation in the horse. Anim. Reprod. Sci. 2008, 107, 257-267.
  • 6. Baumber J., Ball B. A., Gravance C. G., Medina V., Davies-Morel M. C.: The effect of reactive oxygen species on equine sperm motility, viability, acrosomal integrity, mitochondrial membrane potential, and membrane lipid peroxidation. J. Androl. 2000, 21, 895-902.
  • 7. Evenson D. P.: Sperm chromatin structure assay (SCSA®). Meth. Mol. Biol. 2013, 927, 147-164.
  • 8. Evenson D. P., Jersten K., Larson L., Jost L. K.: Sperm Chromatin Structure Assay: Its Clinical Use for Detecting Sperm DNA Fragmentation in Male Infertility and Comparison With Other Techniques. J. Androl. 2002, 23, 25-43.
  • 9. Frączek M., Kurpisz M.: System redoks w nasieniu męskim i peroksydacyjne uszkodzenia plemników. Postępy Hig. Med. Dosw. 2005, 59, 523-534.
  • 10. Garner D. L., Johnson L. A.: Viability Assessment of mammalian sperm using SYBR-14 and propidium iodide. Biol. reprod. 1995, 53, 276-284.
  • 11. Hossain M. S., Johannisson A., Wallgren M., Nagy S., Siqueira A. P., Rodriguez-Martinez H.: Flow cytometry for the assessment of animal sperm integrity and functionality: state of the art. Asian J. Androl. 2011, 13, 406-419.
  • 12. Kaur Bansal A., Bilaspuri G. S.: Impact of oxidative stress and antioxidants on semen functions. Vet. Med. Int. 2011, art ID 686137.
  • 13. Kothari S., Thompson A., Agarwall A., du Plessis S. S.: Free radicals: their beneficial and detrimental effects on sperm function. Indian J. Exp. Biol. 2010, 48, 425-435.
  • 14. Kulbacka J., Saczko J., Chwiłkowska A.: Stres oksydacyjny w procesach uszkodzenia komórek. Pol. Merk. Lek. 2009, XXVII, 157, 44-47.
  • 15. Lamirande E. de, Gagnon C.: Impact of reactive oxygen species on spermatozoa: a balancing act between beneficial and detrimental effects. Hum. Reprod. 1995, 10, 15-21.
  • 16. Mahfouz R. Z., du Plessis S. S., Aziz N., Sharma R., Sabanegh E., Agarwal A.: Sperm viability, apoptosis, and intracellular reactive oxygen species levels in human spermatozoa before and after induction of oxidative stress. Fertil Steril. 2010, 93, 814-821.
  • 17. Makker K., Agarwal A., Sharma R.: Oxiative stress&male infertility. Indian J. Med. Res. 2009, 129, 357-367.
  • 18. Niżański W., Partyka A., Rijseelaere T.: Use of fluorescent stainings and flow cytometry for canine semen assessment. Reprod. Dom. Anim. 2012, 47, 1-7.
  • 19. Niżański W., Twardoń J., Klimowicz M.: Komputerowo wspomagana analiza jakości nasienia – zasady i możliwości. Życie wet. 2006, 81, 121-125.
  • 20. Ortega-Ferrusola C., Sotillo-Galán Y., Varela-Fernández E., Gallardo-Bolaños J. M., Muriel A., Gonzáles- Fernández L., Tapia J. A., Peña F. J.: Detection of “Apoptosis-Like” Changes During the Cryopreservation Process in Equine Sperm. J Androl. 2008, 29, 213-221.
  • 21. Partyka A., Łukaszewicz E., Niżański W.: Effect of cryopreservation on sperm parameters, lipid peroxidation and antioxidant enzymes activity in fowl semen. Theriogenology 2012, 77, 1497-1504.
  • 22. Partyka A., Niżański W., Bajzert J., Łukaszewicz E., Ochota M.: The effect of cysteine and superoxide dismutase on the quality of post-thawed chicken sperm. Cryobiology 2013, 67, 2, 132-136.
  • 23. Perelman A., Wachtel C., Cohen M., Haupt S., Shapiro H., Tzur A.: JC-1: alternative excitation wavelengths facilitate mitochondrial membrane potential cytometry. Cell Death and Disease (2012) 3, e430; doi:10.1038/cddis.2012.171 Published online 22 November 2012.
  • 24. Rijseelaere T., Van Somm A., Maes D., Niżański W.: Computer Assisted Sperm Analysis in Dogs and Cats: An Uptade After 20 years. Reprod. Dom. Anim. 2012, 47, 1-4.
  • 25. Rybar R., Faldikova L., Faldyna M., Machatkova M., Robes J.: Bull and boar sperm DNA integrity evaluated by sperm chromatin structure assay in Czech Republic. Vet. Med. Czech. 2004, 49, 1-8.
  • 26. Smolewski P., Darzynkiewicz Z.: Współczesne metody badania apoptozy. Acta Haematol. Pol. 2003, 34, 35-47.
  • 27. Strzeżek R., Koziorowska-Gilun M., Kowalówka M., Strzeżek J.: Characteristic of antioxidant system in a dog semen. Pol. J. Vet. Sci. 2009, 12, 55-60.
  • 28. Ścibior D., Czeczot H.: Katalaza – budowa, właściwości, funkcje. Postepy Hig. Med. Dośw. 2006, 60, 170-180.
  • 29. Tejada R. I., Mitchell J. C., Norman A., Marik J. J., Friedman S.: A test for the practical evaluation of male fertility by acridine orange (AO) fluorescence. Fertil Steril. 1984, 42, 87-91.
  • 30. Truscott T. G.: Pulse radiolysis. Photosensitisation NATO ASI Series 1988, 15, 39-51.
  • 31. Zawada K.: Zastosowanie spektroskopii EPR w farmacji i medycynie. Farm. Pol. 2009, 65, 224-228.
Typ dokumentu
Bibliografia
Identyfikatory
Identyfikator YADDA
bwmeta1.element.agro-a79126b2-4c95-4252-a843-a1d204f4dcee
JavaScript jest wyłączony w Twojej przeglądarce internetowej. Włącz go, a następnie odśwież stronę, aby móc w pełni z niej korzystać.