Wykorzystanie kwasów fenolowych jako jedynego źródła węgla przez bakterie z rodzaju Azospirillum wiążące azot

• Autorzy: Galazka A. , Krol M. , Pezrynski A.

Warianty tytułu

EN

Utilisation of phenolic acids as the sole carbon source in fixation of nitrogen-free by Azospirillum spp. strains of bacteria

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

EN

• Wydawca: -
• Czasopismo: Nauka Przyroda Technologie. Uniwersytet Przyrodniczy w Poznaniu
• Rocznik: 2010
• Tom: 04
• Numer: 6
• Opis fizyczny: http://www.npt.up-poznan.net/pub/art_4_78.pdf

Twórcy

autor

Galazka A.

• Zakład Mikrobiologii Rolniczej, Instytut Uprawy, Nawożenia i Gleboznawstwa – Państwowy Instytut Badawczy w Puławach, ul.Czartoryskich 8, 24-100 Puławy

autor

Krol M.

autor

Pezrynski A.

Bibliografia

• Agrios G.N., 1997. Plant diseases caused by Mollicutes: phytoplasmas and spiroplasmas. W: Plant pathology. Red. G.N. Agrios. Academic Press, New York: 457-470.
• Beck S.N., Gilmour C.M., 1982. Role of wheat root exudates in associative nitrogen fixation. Soil Biol. Biochem. 15: 33-42.
• Bloemberg G.V., Lugtenberg B.J.J., 2001. Molecular basis of plant growth promotion and biocontrol by rhizobacteria. Curr. Opin. Plant Biol. 4, 4: 343-350.
• Bothe H., Kronenberg A., Stephan U.P., Timmer W., Neuer G., 1983. Nitrogen fixation and denitrification by a wheat - Azospirillum associated. W: Azospirillum II. Red. W. Klingmuller. Birkhauser, Basel: 28-35.
• Butland S.L., Chow M.L., Ellis B.L., 1998. A diverse family of phenylalanine ammonialyase genes expressed in pine trees and cell cultures. Plant Mol. Biol. 37: 15-24.
• Dobereiner J., 1988. Isolation and identification of root associated diazotrophs. Plant Soil 110: 202-212.
• Dobereiner J., Marriel J.E., Nery M., 1979. Ecological distribution of Spirillum lipoferum Beijerinck. Can. J. Microbiol. 22: 1464-1474.
• El-Naas M.H., Al-Muhtaseb S.A., Makhlouf S., 2009. Biodegradation of phenol by Pseudomonas putida immobilized in polyvinyl alcohol (PVA) gel. J. Hazard. Mater. 164: 720-725.
• Gillis M., Reinhold-Hurek B., 1994. Taxonomy of Azospirillum. W: Azospirillum/plant association. Red. Y. Okon. CRC Press, Boca Raton, FL: 1-15.
• Hung P.V., Morita M., 2008. Distribution of phenolic compounds in the graded flours milled from whole buckwheat grains and their antioxidant capacities. Food Chem. 109: 325-331.
• Ju H.K., Cho E.J., Jang M.H., Lee Y.Y., Hong S.S., Park J.H., Kwon S.W., 2009. Characterization of increased phenolic compounds from fermented Bokbunja (Rubus coreanus Miq.) and related antioxidant activity. J. Pharm. Biomed. Anal. 49: 820-827.
• KAhkonen M.P., Hopia A.I., Vourela H.J., Rauha J.P., Pihlaja K., Kujala T.S., Heinonen M., 1999. Antioxidant activity of plant extracts containing phenolic compounds. J. Agric. Food Chem. 47: 3954-3962.
• Kobayashi A., Myong J.K., Kawazu K., 1996. Uptake and exudation of phenolic compounds by wheat and antimicrobial components of the root exudate. Z. Naturforsch. 51: 527-533.
• Krotzky A., Berggold R., Werner D., 1986. Analysis of factors limiting associative N2 fixation with two cultivars of sorghum mutants. Soil Biol. Biochem. 18: 201-211.
• Król M.J., 1997. Występowanie bakterii z rodzaju Azospirillum w ryzosferze traw. Zesz. Nauk. AR Szczec. 181, Roln. 68: 133-140.
• Król M.J., Kobus J., 1997. Występowanie bakterii z rodzaju Azospirillum w ryzosferze kukurydzy i jęczmienia uprawianych na różnych glebach. Zesz. Nauk. AR Szczec. 181, Roln. 68: 141-151.
• Król M.J., Perzyński A., 2002. Wykorzystanie wielopierścieniowych węglowodorów aromatycznych (WWA) jako jedynego źródła węgla w wiązaniu wolnego azotu przez bakterie z rodzaju Azospirillum. Pam. Puław. 131: 69-80.
• Król M.J., Perzyński A., 2004 a. Wykorzystanie antracenu w wiązaniu wolnego azotu przez bakterie diazotroficzne. Acta Agr. Silv. Ser. Agr. 42: 229-237.
• Król M.J., Perzyński A., 2004 b. Wykorzystanie chryzenu jako jedynego źródła węgla w wiązaniu wolnego azotu przez bakterie z rodzaju Azospirillum. Pam. Puław. 137: 77-94.
• Król M.J., Perzyński A., 2004 c. Wykorzystanie pirenu jako jedynego źródła węgla w wiązaniu wolnego azotu przez bakterie z rodzaju Azospirillum. Pam. Puław. 137: 95-105.
• Kurek E., Kobus J., 1990. Korzystne i szkodliwe oddziaływanie mikroflory ryzosferowej na wzrost i rozwój roślin. Post. Mikrobiol. 29: 103-123.
• Lam S.T., Gaffney T.D., 1993. Biological activities of bacteria used in plant pathogen control. W: Biotechnology in plant disease control. Red. i. Ched. Wiley, New York: 291-320.
• Lika K., Papadakis I.A., 2009. Modeling the biodegradation of phenolic compounds by microalgae. J. Sea Res. 62: 135-146.
• Lu Y., Yan L., Wang Y., Zhou S., Fu J., Zhang J., 2009. Biodegradation of phenolic compounds from cooking wastewater by immobilized white rot fungus Phanerochaete chrysosporium. J. Hazard. Mater. 165: 1091-1097.
• Morsen A., Rehm H.J., 1987. Degradation of phenol by mixed culture of Pseudomonas putida and Cryptococcus elinoii adsorbed on activated carbon. Appl. Microbiol. Biotechnol. 26: 283-288.
• Oh J.S., Han Y.H., 1997. Isolation and characterization of phenol degrading Phodococcus sp. DGUM 2011. Korean J. Appl. Microbiol. Biotechnol. 25: 459-463.
• Orczyk W., Hipskind J., de Neergaard E., Goldsbrough P., Nicholson R.L., 1996. Stimulation of phenylalanine ammonia-lyase in sorghum in response to inoculation with Bipolaris maydis. Physiol. Mol. Plant Pathol. 48: 55-64.
• Peterson D.M., Emmons C.L., Hibbs A.H., 2001. Phenolic antioxidant and antioxidant activity in pearling fractions of oat groats. J. Cereal Sci. 33: 97-103.
• de Polli H., Boyer C.D., Neyra C.A., 1982. Nitrogenase activity associated with roots and stems of field grown corn plants. Plant Physiol. 70: 1609-1615.
• Rodriguez H., Curiel J.A., Landete J.M., de las Rivas B., de Felipe F.L., Gómez-Cordoves C., Mancheno J.M., Muńoz R., 2009. Food phenolics and lactic acid bacteria. Int. J. Food Microbiol. 132: 79-90.
• Shah N.W., Thornton S.F., Bottrell S.H., Spence M.J., 2009. Biodegradation potential of MTBE in a fractured chalk aquifer under aerobic conditions in long-term uncontaminated and contaminated aquifer microcosms. J. Contam. Hydrol. 103: 119-133.
• Sreelakshmi Y., Sharma R., 2008. Differential regulation of phenylalanine ammonia lyase activity and protein level by light in tomato seedlings. Plant Physiol. Biochem. 46: 444-451.
• Valenzuela J., Bumann U., Cespedes R., Padila L., Gonzalez B., 1997. Degradation of chlorophenols by Alcaligenes eutrophus JMP134 (pJP4) in bleached kraft mill effluent. Appl. Environ. Microbiol. 63: 227-232.
• Vereecke D., Messens E., Klarskor K., de Bruyn A., van Montagu M., Goethals K., 1997. Patterns of phenolic compounds in leafy galls of tobacco. Planta 201: 342-348.
• Watanabe J., Lin C., 1984. Respons of wetland rice to inoculation with Azospirillum lipoferum and Pseudomonas sp. Soil Sci. Nutr. 30: 117-123.
• Wieser M., EberspAcher J., Vogler B., Lingens F., 1994. Metabolism of 4-chlorophenol by Azotobacter sp. GP1: structure of the metacleavage product of 4-chlorocatechol. FEMS Microbiol. Lett. 166: 73-78.
• Wojtaszek P., 1993. Fenolowe metabolity wtórne jako sygnały roślin w oddziaływaniach międzygatunkowych. Post. Biochem. 39: 139-146.
• Yao R.-S., Sun M., Wang Ch.-L., Deng S.-S., 2006. Degradation of phenolic compounds with hydrogen peroxide catalyzed by enzyme from Serratia marcescens AB 90027. Water Res. 40: 3091-3098.
• Zupfer J.M., Churchill K.E., Rasmusson D.C., Fulcher R.G., 1998. Variation in ferulic acid concentration among diverse barley cultivars measured by HPLC and microspectrophotometry. J. Agric. Food Chem. 46: 1350-1354.

Uwagi

PL

Rekord w opracowaniu