PL EN


Preferencje help
Widoczny [Schowaj] Abstrakt
Liczba wyników

Czasopismo

2015 | 61 | 4 |

Tytuł artykułu

The antimicrobial and antioxidant activities of extracts obtained from some moss species in Turkey

Treść / Zawartość

Warianty tytułu

PL
Aktywność przeciwdrobnoustrojowa i przeciwutleniająca wyciagów z wybranych gatunków mchów rosnących w Turcji

Języki publikacji

EN

Abstrakty

EN
Pharmaceutical industry is forced to develop new pharmacologically active molecules. Like other plants, mosses are considered to be potential source of new biologically active compounds. The present study was designed to evaluate the The antimicrobial and antioxidant activities of extracts obtained from some moss species in Turkey antimicrobial and antioxidant activity of 8 moss species: Hypnum cupressiforme, Homalothecium sericeum, Thuidium delicatulum, Homalothecium lutescens, Homalothecium nitens, Leucodon sciuroides, Ctenidium molluscum, and Eurhynchium striatulum obtained from Turkey. Methods: The antimicrobial activity of extracts was investigated against four Gram (+) and six Gram (–) bacterial strains and three tested fungi. Total phenolic content (TPC), cupric reducing antioxidant capacity (CUPRAC), ferric reducing antioxidant power (FRAP), and DPPH radical scavenging activity assays were applied to determine the antioxidant activity. All moss extacts were found to be active against all the organisms except Homalothecium nitens. Especially, H. sericeum and E. striatulum showed the best antioxidant activity. The obtained results show that mosses may be used as possible natural antioxidant, antimicrobial agents to control various human, animal and plant diseases.
PL
Przemysł farmaceutyczny wciąż poszukuje nowych związków aktywnych. Podobnie jak inne rośliny, również mchy uważa się za potencjalne źródło nowych związków biologicznie czynnych. Przedstawione badania miały na celu określenie aktywności przeciwdrobnoustrojowej i przeciwutleniającej ośmiu gatunków mchów rosnących w Turcji: Hypnum cupressiforme, Homalothecium sericeum, Thuidium delicatulum, Homalothecium lutescens, Homalothecium nitens, Leucodon sciuroides, Ctenidium molluscum i Eurhynchium striatulum. Działanie przeciwdrobnoustrojowe wyciągów badano w stosunku do czterech szczepów bakterii Gram (+) i sześciu Gram (–) oraz w stosunku do trzech gatunków grzybów. Działanie przeciwutleniające badano oznaczając sumę zawartości związków fenolowych (TPC), zdolność redukowania miedzi (CUPRAC), zdolność redukowania jonów żelaza (FRAP) i oznaczając działanie przeciwutleniające z użyciem rodnika DPPH . Wszystkie badane wyciągi z mchów (za wyjątkiem Homalothecium nitens) wykazywały aktywność przeciwdrobnoustrojową w stosunku do testowanych mikroorganizmów. Najsilniejsze działanie przeciwutleniające wykazały wyciągi z H. sericeum i E. striatulum. Otrzymane wyniki wskazują, że można traktować mchy jako potencjalne naturalne źródła substancji antyoksydacyjnych i przeciwdrobnoustrojowych do zwalczania chorób ludzi, zwierząt i roślin.

Słowa kluczowe

Wydawca

-

Czasopismo

Rocznik

Tom

61

Numer

4

Opis fizyczny

p.52-65,fig.,ref.

Twórcy

autor
  • Department of Biology, Faculty of Arts and Sciences, Ordu University, 52200, Ordu, Turkey
autor
  • Giresun University, Espiye Vocational School, Espiye, Giresun, Turkey
autor
  • Faculty of Medicine, Ordu University, 52200, Ordu, Turkey
autor
  • Department of Chemistry, Faculty of Sciences, Karadeniz Technical University, 61080, Trabzon, Turkey
autor
  • Department of Elementary Teaching, Faculty of Education, Giresun University, 28049, Giresun, Turkey
autor
  • Department of Biology, Faculty of Arts and Sciences, Ordu University, 52200, Ordu, Turkey

Bibliografia

  • 1. Frahm JP. Recent development of commercial products from bryophytes. The Bryologist 2004; 107(3):277- 283.
  • 2. Zinsmeister HD, Mues R. Moose als Reservoir bemerkenswertersekundärer Inhaltsstoffe. GIT Fachz. Lab. 1987; 31:499-512.
  • 3. Özdemir T, Çetin B. The moss flora of Trabzon and its environs. Tur J Bot 1999; 23:391-404.
  • 4. Matsuo A, Sato A. Sterols of Mosses. Phytochemistry 1991; 30:2305-2306.
  • 5. Smith AJE. The moss flora of Britain and Ireland. Cambridge University Press, 1980.
  • 6. Nyholm E. Illustrated moss flora of Fennoscandia Fasc. 1-6. Lund. Swedish Natural Science Research Council 1981.
  • 7. Çetin B. Check list of the Mosses of Turkey. Lindbergia 1988; 14:15-23.
  • 8. Glime JM, Saxena DK. Uses of Bryophytes. Today and tomorrow’s printers and publisher New Delhi, pp. 1-100. Henderson DM (1963). Contributions to the Bryophyte Flora of Turkey VI. Notes from the Royal Botanic Garden Edinburgh 1991; 25(3):279-291.
  • 9. Basile A, Giordono S, Lopez-Saez JA, Cobianchi RC. Antibacterial activity of pure flavonoids isolated from mosses. Phytochemistry 1999; 52:1479-1482.
  • 10. Saritas Y, Sonwa MM, Iznaguen H, Konig WA, Muhle H, Mues R. Volatile constituents in mosses (Musci). Phytochemistry 2001; 57:443-457.
  • 11. Baytop T. Health treatment in Turkey using plant extracts. Publication of the Istanbul University, 1984; No. 3255.
  • 12. Ando H, Matsuo A. Applied bryology. In: Cramer J. (ed.) Advances in Bryology, Vaduz, West Germany: Schultze-Motel W, 1984;2-133.
  • 13. Asakawa Y. Biologically active substances from bryophytes. In Bryophyte Development-Physiology and Biochemistry. R. N. Chopra and S. C. Bhatla, eds. CRC Press, Boston, 1990; pp. 259.
  • 14. Ertürk Ö, Katı H, Yaylı N, Demirbag Z. Antimicrobial activity of Viscum album L. subsp. abietis (Wiesb). Turk J Biol 2003; 27:255-258.
  • 15. Holopainen M, Jabordar L, Seppanen-Laukso T, Laakso I, Kauppinen V. Antimicrobial activity of some Finnish Ericaceous plants. Acta Pharm Fenn 1988; 97: 197-20.
  • 16. Ronald MA. Microbiología Companía, Editorial Continental SA de CV, México DF, 1990; 505.
  • 17. Vanden-Berghe DA, Vlietinck AJ. Screening methods for antibacterial and antiviral agents from higher plants. In: Dey PM Harborne JB, Hostettman K (eds.) Methods in Plant Biochemistry 1991; London: Academic Press.
  • 18. Singleton VL, Rossi JL. Colorimetry of total phenolics with phosphomolybdic phosphotungstic acid reagents. Am J Enol Viticult 1965; 16:144-158.
  • 19. Apak R, Güçlü K, Özyürek M, Karademir SE. A novel total antioxidant capacity index for dietary polyphenols and vitamins C and E, using their cupric ion reducing capability in the presence of neocuproine: CUPRAC method. J Agricl Food Chem 2004; 52:7970-7981.
  • 20. Benzie IFF, Strain JJ. Ferric reducing/antioxidant power assay: direct measure of total antioxidant activity of biological fluids and modified version for simultaneous measurement of total antioxidant power and ascorbic acid concentration. Methods in Enzymology 1999; 299:15-27.
  • 21. Akyuz E, Sahin H, Islamoglu F, Kolayli S, Sandra P. Evaluation of phenolic compounds in Tilia rubra subsp. caucasica by HPLC-UV and HPLC-UV-MS/MS. Intern J Food Propert 2014; 17(2):331-343.
  • 22. Dulger B, Yayintas OT, Gonuz A. Antimicrobial activity of some mosses from Turkey. Fitoterapia 2005; 76:730-732.
  • 23. Sievers H, Burkhardt G, Becker H, Zinsmeister HD. Hypnogenols and other dihydroflavonols from the moss Hypnum cupressiforme. Phytochemistry 1992; 31(9):3233-3237.
  • 24. Sievers H, Burkhardt G, Becker H, Zinsmeister HD. Further biflavonoids and 3’-phenylflavonoids from Hypnum cupressiforme. Phytochemistry 1994; 35(3):795-798.
  • 25. Veljić M, Tarbuk M, Marin PD, Ćirić A, Soković M, Marin M. Antimicrobial activity of methanol extracts of some genuine mosses from Serbia. Pharmac Biol 2008; 46(12):871-875.
  • 26. Bodade RG, Borkar PS, Saiful Arfeen MD, Khobragade CN. In vitro screening of Bryophytes for antimicrobial activity. J Med Plants Res 2008; 7(4):2
  • 27. Üçüncü O, Cansu TB, Özdemir T, Karaoğlu ŞA, Yaylı N. Chemical composition and antimicrobial activity of the essential oils of mosses (Tortula muralis Hedw., Homalothecium lutescens (Hedw) H. Rob., Hypnum cupressiforme Hedw., and Pohlia nutans (Hedw.) Lindb.) from Turkey. Turkish J Chem 2010; 34:1-10.
  • 28. Çolak E, Kara R, Ezer T, Yuvalı Çelik G, Elibol B. Investigation of antimicrobial activity of some Turkish pleurocarpic mosses. Afr J Biotechnol 2011; 10(60):12905-12908.
  • 29. Xie CF, Lou HX. Secondary metabolites in Bryophytes: An ecological aspect. Chem Biodiv 2009; 6(3): 303-312.
  • 30. Veljić M, Đurić A, Soković M, Ćirić A, Glamočlija J, Marin PD. Antimicrobial activity of methanol extracts of Fontinalis antipyretica, Hypnum cupressiforme, and Ctenidium molluscum. Arch Biol Sci 2009; 61(2):225-229.
  • 31. Ahn MR, Kumazawa S, Usui Y, Nakamura J, Matsuka M, Zhu F et al. Antioxidant activity and constituents of propolis collected in various areas of China. Food Chem 2007; 101:1383-1392.
  • 32. Küçük M, Kolaylı S, Karaloğlu Ş, Ulusoy E, Baltacı C, Candan F. Biological activities and chemical composition of three honeys of different types from Anatolia. Food Chem 2007; 100: 526-534.
  • 33. Wilczyńska A. Phenolic content and antioxidant activity of different types of Polish honey – a short report. Pol J Food Nutr Sci 2010; 60:309-313.

Typ dokumentu

Bibliografia

Identyfikatory

Identyfikator YADDA

bwmeta1.element.agro-861f5db7-858c-4657-81ef-7cfe550eaeb4
JavaScript jest wyłączony w Twojej przeglądarce internetowej. Włącz go, a następnie odśwież stronę, aby móc w pełni z niej korzystać.