Działanie różnych form chitosanu na grzybnię Aspergillus giganteus mut. alba ZURZ.

• Autorzy: Fiema J. , Piskorz-Binczycka B.
• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Sprawdzono efekt działania trzech form chitosanu o różnym stopniu deacetylacji (67%, 74%, 93%) na wzrost grzybni Aspergillus giganteus mut. alba ZURZ. na pożywce płynnej i na pożywce zestalonej agarem. Na pożywce płynnej najsilniejsze grzybostatyczne działanie wykazuje chitosan o 93% deacetylacji wstrzymując wzrost grzybni w 85% w porównaniu do kontroli, chitosan o 74% deacetylacji - w 43%, podczas gdy chitosan o 67% deacetylacji nawet podnosi masę grzybni o około 40%. Podobne efekty obserwuje się przy rozwoju krążka grzybni na pożywce zestalonej powleczonej wcześniej różnymi formami chitosanu. Chitosan 93 całkowicie hamuje jego wzrost przez 10-dniowy okres hodowli.

EN

The effect of the action of three chitosan forms of various degree of deacetylation (67%, 74%, 93%) on the growth of the mycelium of Aspergillus giganteus mut. alba ZURZ. on a liquid nutrient solidified with agar, was tested. The strongest fungistatic action has been demonstrated by chitosan with 93% deacetylation, inhibiting the growth of mycelium in 85% in comparison with the control; chitosan 74% deacetylation inhibits it in 43%; chitosan with 67% deacetylation causes the increase of the mass of mycelium by about 40%. Similar effects were observed in the development of the mycelium disc on a solidified nutrient, covered earlier with various forms of chitosan. Chitosan with 93% deacetylation inhibits the disc growth completely during 10 days of culture.

• Wydawca: -
• Czasopismo: Zeszyty Problemowe Postępów Nauk Rolniczych
• Rocznik: 2002
• Tom: 481
• Numer: 2
• Opis fizyczny: s.633-639,rys.,fot.,bibliogr.

Twórcy

autor

Fiema J.

autor

Piskorz-Binczycka B.

Bibliografia

• ALLAN C.R., HADWIGER L.A. 1979. The fungicidal effect of chitosan on fungi of varying cell wall composition. Experimental Mycol. 3: 285-287.
• BARTNICKI-GARCIA S. 1970. Cell wall composition and other biochemical markers in fungal phytogeny, w: Phytochemical phytogeny. Harborn J.B. (red.). Academic Press. London: 81-101.
• BRUNETEAU M., FABRE J., PERRET J., MICHEL G. 1988. Antitumor active β-D-glucans from Phytophthora parasitica. Carboh. Res. 175: 137-143.
• FIEMA J. 1983. Some aspects of nitrogen metabolism in Aspergillus giganteus mut. alba. Chitin content in the cell walls. Acta Physiol. Plant. 5: 113-121.
• FIEMA J. 1987. Autolysis of the mycelium of Aspergillus giganteus Wehm. mut. alba Zurz. Acta Bot. Cracov. Ser. Bot. 30: 25-32.
• HADWIGER L.A., BECKMAN J.M. 1980. Chitosan as a component of pea-fusarium solani interactions. Plant Physiol. 66: 205-211.
• IGNACAK J., GUMIŃSKA M., KĘDRYNA T., STRUSZCZYK H. 1998. Hamowanie metabolizmu komórki nowotworowej raka wysiękowego Ehrlicha (EAT) in vitro przez chitosan. Multidyscyplinarna konferencja Nauki o leku: S.V.K - 3. Muszyna. Instytut Farmaceutyczny, Warszawa.
• KOPP M., ROUSTER J., FRITIG B., DARVILL A., ABERSHEIM P. 1989. Host pathogen interactions. Plant Physiol. 90: 208-216.
• PISKORZ-BIŃCZYCKA B. 1995. Badania nad funkcjonowaniem zegara biologicznego u przedstawicieli Penicillium clavigerum. ZFR PAN (wyd.). Praca hab.
• POSPIESZNY H., CHIRKOV S., ATABEKOV J. 1991. Induction of antiviral resistance in plants by chitosan. Plant Sci. 79: 63-68.
• ROUTHIER P., BRUNETEAU M., MICHEL G., FIEMA J., ZURZYCKA A. 1994. Structural characterization of alkali-soluble glucans from the mycelium of Aspergillus giganteus mut. alba. Carboh. Res. 262: 155-159.
• YOUNG D.H., KÖHLE H., KAUS H. 1982. Effect of chitosan on membrane permeability of suspension-cultured Glycine max and Phaseolus vulgaris cells. Plant Physiol. 70: 1449-1454.
• ZURZYCKA A. 1963. Aspergillus giganteus Wehm. mut. alba Zurz. Acta Soc. Bot. Pol. 32: 715-718.