Development of novel plant-based adjuvant formulation against rubella and hepatitis B vaccine antigen

• Autorzy: Gupta A. , Chaphalkar S.R.

Warianty tytułu

PL

Opracowanie nowego adiuwantu roślinnego przeciwko antygenom szczepionki przeciw różyczce i wirusowemu zapaleniu wątroby typu B

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

Introduction: Numerous metabolites present in the aqueous extract from plants are responsible for inducing adjuvant activity against rubella and hepatitis B vaccine antigen (HBsAg). One of the medicinal plants, Adhatoda vasica has been pointed out with great potential of vaccine adjuvant property. Objective: The objective of our study is to evaluate the adjuvant potential of aqueous leaves extract of Adhatoda vasica against rubella and hepatitis B vaccine antigen (HBsAg). Methods: For these studies, our group evaluated the antibody (IgG) titre of HBsAg and rubella vaccine antigen using variable doses (0.625–5 mg) of aqueous leaves extract of Adhatoda vasica and also determined the lymphocyte (splenocyte) proliferation assay (0.625–5 mg; 50 µl) in mice model studies ex vivo (i.e. immunized with HBsAg subcutaneously). Results: The results showed that aqueous leaves extract showed anti-HBsAg and anti-rubella titre and also enhanced the lymphocyte proliferation assay at higher doses (5 mg) as compared to control. Conclusion: Aqueous leaves extract of Adhatoda vasica showed adjuvant activity against HBsAg and rubella vaccine antigen.

PL

Wstęp: Wiele metabolitów obecnych w wyciągach wodnych z roślin jest odpowiedzialnych za indukcję adiuwantowej aktywności przeciwko antygenom szczepionek przeciw różyczce i wirusowemu zapaleniu wątroby typu B (HBsAg). Jedna z roślin leczniczych, Adhatoda vasica ma duży potencjał adiuwacyjny w szczepionce. Cel: Celem naszej pracy była ocena możliwości adiuwacyjnych wyciągu wodnego z liści Adhatoda vasica przeciwko antygenowi szczepionki przeciwko różyczce i wirusowemu zapaleniu wątroby typu B (HBsAg). Metody: Na użytek badań nasza grupa oceniła miano przeciwciała (IgG) HBsAg i antygenu szczepionki przeciwko różyczce przy pomocy różnych dawek (0,625–5 mg) wyciągu wodnego z liści Adhatoda vasica, a także określiła proliferację limfocytów (splenocytów) (0,625–5 mg; 50 µl) w modelu mysim ex vivo (tj. immunizowanych przez podawanie podskórne HBsAg). Wyniki: Na podstawie otrzymanych wyników wykazano, że wyciąg wodny z liści wpływał na miano przeciw HBsAg i przeciwróżyczkowe, a także w wyższych dawkach (5 mg) wzmacniał proliferację limfocytów w porównaniu do grupy kontrolnej. Wniosek: Wyciąg wodny z liści Adhatoda vasica wykazał działanie adiuwacyjne przeciwko antygenowi HBsAg i antygenowi szczepionki przeciwko różyczce.

• Wydawca: -
• Czasopismo: Herba Polonica
• Rocznik: 2016
• Tom: 62
• Numer: 3
• Opis fizyczny: p.40-48,fig.,ref.

Twórcy

autor

Gupta A.

• Department of Immunology and Virology, Vidya Pratishthan's School of Biotechnology, Baramati-413133, Maharashtra, India

autor

Chaphalkar S.R.

• Department of Immunology and Virology, Vidya Pratishthan's School of Biotechnology, Baramati-413133, Maharashtra, India

Bibliografia

• 1. Olesen OF, Lonnroth A, Mulligan B. Human vaccine research in the European Union. Vaccine 2009; 27 (5): 640-645. doi: http://dx.doi.org/10.1016/j.vaccine.2008.11.064
• 2. Patel JR, Heldens, JG. Immunoprophylaxis against important virus disease of horses, farm animals and birds. Vaccine 2009; 27(12):1797-1810. doi: http://dx.doi.org/10.1016/j.vaccine.2008.12.063
• 3. Butler NS, Harris TH, Blader IJ. Regulation of immunopathogenesis during Plasmodium and Toxoplasma infections: more parallels than distinctions? Trends Parasitol 2013; 29(12):593-602. doi: http://dx.doi.org/10.1016/j.pt.2013.10.002
• 4. Murphy K, Travers P, Walport M, Janeway C. Janeway’s immunobiology. New York: Garland Science 2012. doi: worldcat.org/title/janeways-immunobiology/oclc/733935898
• 5. Lalvani A, Hil AVS. Cytotoxic T-lymphocytes against malaria and tuberculosis: from natural immunity to vaccine design. Clinical Science Nov 1998; 95(5):531-538. doi: http://dx.doi.org/10.1042/cs0950531
• 6. Waldmann TA. Effective cancer therapy through immunomodulation. Ann Rev Med 2006; 57:65-81. doi: http://dx.doi.org/10.1146/annurev.med.56.082103.104549
• 7. Gupta A, Chaphalkar SR. Flow cytometric analysis of immunoadjuvant activity of Emblica officinalis on human whole blood. World J Pharm Res 2015; 4(2):1063-1071. doi: http://dx.doi.org/wjpr.net/download/article/1422704752
• 8. Gupta A, Chopade D, Chaphalkar SR. Flow cytometric analysis of saponins for immunoadjuvant potential extracted from Azadirachta indica and Ficus religiosa against hepatitis B vaccine antigen.ijddhr 2015; 5 (1): 818–825.
• 9. Gupta A, Chaphalkar SR. Immunoadjuvant potential of Azadirachta indica against rabies, hepatitis and DPT vaccine antigen. Int J Med Pharm Sci 2015; 5(7):1-5. doi: http://dx.doi.org/scopemed.org/mno=184475
• 10. Roland KL, Tinge SA, Killeen KP, Kochi SK. Recent advances in the development of live, attenuated bacterial vectors. Curr Opin Mol Ther 2005; 7:62-72. doi: http://dx.doi.org/ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/15732531
• 11. Lim EM, Lagranderie M, Le Grand R, Rauzier J, Gheorghiu M, Gicquel B, et al. Recombinant Mycobacterium bovis BCG producing the N-terminal half of SIVmac251 Env antigen induces neutralizing antibodies and cytotoxic T lymphocyte responses in mice and guinea pigs. AIDS Res Hum Retroviruses1997; 13:1573-1581. doi: http://dx.doi.org/10.1089/aid.1997.13.1573
• 12. Gupta A, Chaphalkar SR. Immunosuppressive activity of saponin from the leaves of Adhatoda vasica using flow cytometry. Intern J Inst Pharm Life Sci 2015; 5(1):137-145. doi: http://dx.doi.org/ijipls.com/uploaded/journal_files/150217020254
• 13. Kumar M, Kumar A, Dandapat S, Sinha, MP. Phytochemical screening and antioxidant potency of Adhatoda vasica and Vitex negundo. Bioscan 2013; 8(2):727-730.
• 14. Kumar M, Dandapat S, Kumar A, Sinha MP. Anti-typhoid activity of Adhatoda vasica and Vitex negundo. Persian Gulf Crop Protection 2013; 2(3):64-75.
• 15. CDC. Measles, mumps, and rubella-vaccine use and strategies for elimination of measles, rubella, and congenital rubella syndrome and control of mumps. Recommendations of the Advisory Committee on Immunization Practices (ACIP). MMWR 1998; 47(No. RR-8):1–57. doi: http://dx.doi.org/ cdc.gov/mmwr/PDF/rr/rr4708
• 16. Sorrell MF, Belongia EA, Costa J, et al. National Institutes of Health Consensus Development Conference Statement: Management of hepatitis B. Ann Intern Med 2009;150:104-10. doi: http://dx.doi.org/ 10.7326/0003-4819-150-2-200901200-00100
• 17. Gupta A, Chaphalkar SR. Anti-inflammatory activity of aqueous extract of leaves of Prosopis spicigera. Intern J Res Pharm Life Sci 2015; 3(1):829-834. doi: http://dx.doi.org/pharmaresearchlibrary.com/wpcontent/uploads/2015/07/IJRPLS2339
• 18. Gupta A, Khajuria A, Singh S, Singh J, Suri KA, Satti NK, et al. RLJ-NE-299A: A new plant based vaccine adjuvant. Vaccine 2007; 25(14): 2706-2715. doi: http://dx.doi.org/10.1016/j.vaccine.2006.06.036
• 19. Khajuria A, Gupta A, Malik F, Singh S, Singh J, Gupta BD, et al. A new vaccine adjuvant (BOS 2000) a potent enhancer mixed Th1/Th2 immune responses in mice immunized with HBsAg. Vaccine 2007; 25 (23): 4586-4594. doi: http://dx.doi.org/10.1016/j.vaccine.2007.03.051
• 20. Gupta A, Khajuria A, Singh J, Singh S, Suri KA, Qazi GN. Immunological adjuvant effect of Boswellia serrata (BOS 2000) on specific antibody and cellular response to ovalbumin in mice. Intern Immunopharm 2011;11(8): 968-975. doi: http://dx.doi.org/10.1016/j.intimp.2011.02.011

Identyfikatory

DOI

10.1515/hepo-2016-0016