PL EN


Preferencje help
Widoczny [Schowaj] Abstrakt
Liczba wyników
2011 | 66 | 2 |

Tytuł artykułu

Dynamika tworzenia biofilmów bakteryjnych na materiałach konstrukcyjnych linii technologicznych w przemyśle spożywczym

Warianty tytułu

EN
The dynamics of biofilm formation on structural materials of processing lines in food industry

Języki publikacji

PL

Abstrakty

PL
Celem badań było określenie wpływu rodzaju i chropowatości powierzchni materiałów, stosowanych do konstrukcji urządzeń produkcyjnych w przemyśle spożywczym na szybkość tworzenia biofilmu. Materiał biologiczny stanowiły bakterie saprofityczne: Micrococcus luteus, Pseudomonas putida, Staphylococcus hominis, Listeria innocua i Enterobacter cloacae wyizolowane z powierzchni użytkowych kontaktujących się z żywnością, po procesach mycia i dezynfekcji. W badaniach wykorzystano dwa rodzaje tworzyw: polipropylen oraz stal nierdzewną typu 304, o współczynnikach chropowatości: Rz = 1,2 μm i Rz = 7,4 μm. Proces tworzenia biofilmu prowadzono w warunkach hodowli modelowej, symulującej środowisko, panujące na powierzchniach produkcyjnych, po procesach mycia i dezynfekcji. Liczbę komórek na powierzchniach abiotycznych oceniano techniką wymazu. Obraz utworzonego biofilmu zarejestrowano w mikroskopie elektronowym skaningowym 3000 N Hitachi. Cztery bakterie (Micrococcus luteus, Pseudomonas putida, Staphylococcus hominis, Listeria innocua) wykazywały zdolność do tworzenia biofilmów na powierzchniach stali nierdzewnej i polipropylenu. Najefektywniej zasiedlaną płaszczyzną był polipropylen, najsłabiej zaś, stal nierdzewna, o niskim współczynniku chropowatości (Rz = 1,2 μm). Przeprowadzone badania wykazały, że większa chropowatość powierzchni stali (Rz = 7,4 μm) sprzyjała adhezji drobnoustrojów.
EN
The aim of this study was to determine the effect of surface roughness and type of materials used for construction of production facilities in the food industry on the dynamics of biofilm formation. Biological material were saprophytic bacteria: Micrococcus luteus, Pseudomonas putida, Staphylococcus hominis, Listeria innocua and Enterobacter cloacae isolated from food contact surfaces, after clearing and disinfection. Two types of materials were used: polypropylene and stainless steel type 304, with coefficients of roughness: Rz = 1.2 μm and Rz = 7.4 μm. The process of biofilm formation was conducted in a model culture conditions simulating the environment prevailing in the areas of production, after cleaning and disinfecting processes. The number of cells adhered to abiotic surfaces was assessed by swabbing technique. Images of biofilm were registered in a scanning electron microscope Hitachi 3000 N. Four bacteria (Micrococcus luteus, Pseudomonas putida, Staphylococcus hominis, Listeria innocua) showed the ability to form biofilms on surfaces of stainless steel and polypropylene. Efficiently colonized surface was polypropylene, while the least, stainless steel, with low roughness (Rz = 1.2 μm). The study showed that the greater roughness of steel surface (Rz = 7.4 μm), favored microbial adhesion.

Słowa kluczowe

Wydawca

-

Rocznik

Tom

66

Numer

2

Opis fizyczny

s.74-85,rys.,fot.,bibliogr.

Twórcy

autor
  • Oddział Chłodnictwa i Jakości Żywności, Instytut Biotechnologii Przemysłu Rolno-Spożywczego, al.Piłsudskiego 84, 92-202 Łódź
autor
autor
autor

Bibliografia

  • 1 Bagge D., Hjelm M., Johansen C., Huber I., Gram L. (2001). Shewanella putrefaciens adhesion and biofilm formation on food processing surfaces. Appl. Environ, Microbiol., 67 (5), 2319-2325
  • 2 Barnes L.M., Lo M.F., Adams M.R., Chamberlain A.H.L. (1999). Effect of milk proteins on adhesion of bacteria to stainless steel surfaces. Appl. Environ. Microbiol., 65 (10), 4543-4548
  • 3 Carpentier B., Cerf O. (1993). Biofilm and their consequences with particular reference to hygiene in the food industry. J. Appl. Bacteriol., 75, 499-511
  • 4 Cunliffe D., Smart C.A., Alexander R.C., Vulfson E.N. (1999). Bacterial adhesion of synthetic surface. Appl. Environ. Microbiol., 11, 4995-5002
  • 5 Czaczyk K. (2004). Czynniki warunkujące adhezję drobnoustrojów do powierzchni abiotycznych. Post. Mikrobiol., 43, 267-283
  • 6 Czaczyk K. (2005). Adhezja mikroorganizmów do powierzchni stykających się z żywnością. Przem. Spoż., 2, 28-31
  • 7 Flint S.H., Brooks J.D., Bremer P.J. (2000). Properties of the stainless steel substrate influencing the adhesion of thermo-resistant streptococci. J. Food Eng., 43, 235-242
  • 8 Frank J.F., Chmielewski R., (2001). Influence of surface finish on the cleanability of stainless steel. J. Food. Prot., 64 (8), 1178-1182
  • 9 Han Y., Sherman D.M., Linton R.H., Nielsen S.S., Nelson P.E. (2000). The effect of washing and chlorine dioxide gas on survival and attachement of Escherichia coli O157:H7 to green paper surfaces. Food Microbiol., 17, 521-533
  • 10 Ingham S.C., Wadhera R.K., Chun-Him Chu, DeVitta M. (2006). Survival of Streptococcus pyogenes on foods and food contact surfaces. J. Food Prot., 69 (5), 1159-1163
  • 11 Joseph B., Otta S.K., Karumasagar I. (2001). Biofilm formation by Salmonella spp. on food contact surfaces and their sensitivity to sanitizers. Int. J. Food Microbiol., 64, 367-372
  • 12 Krysiński E.P., Brown L.J., Marchisello T.J. (1992). Effect of cleaners and sanitizers on Listeria monocytogenes attached to product contact surfaces. J. Food Prot., 55, 246-251
  • 13 appin-Scott H.M., Bass C. (2001) Biofilm formation: Attachment, growth and detachment of microbes from surfaces. Am. J. Infect. Control., 29(4), 250-251
  • 14 Lewicki P.P. (2005). Mycie maszyn i urządzeń w przemyśle spożywczym. Przem. Spoż., 2, 24-34
  • 15 Lewicki P.P. 2006. Skuteczność procesów mycia w przemyśle spożywczym. Przem. Spoż., 2, 26
  • 16 Mafu A.A., Roy D., Goulet J., Magny P. (1990). Attachment of Listeria monocytogenes to stainless steel, glass, polypropylene and rubber surfaces after short contact times. J. Food. Prot., 53, 742-746
  • 17 Martinez L.R., Casadevall A. (2007). Cryptococcus neoformans biofilm formation depends on surface support and carbon source and reduces fungal cell susceptibility to heat, cold and UV light. Appl. Environ. Microbiol., 73 (14), 4592-4601
  • 18 Nikolaev Y.A., Plakunov V.K. (2007). Biofilm-“city of microbes” or an analogue of multicellular organisms? Microbiology., 76 (2), 125-138
  • 19 Nowak A., Piątkiewicz A. (2008). Mikrobiologiczne psucie żywności. W: Mikrobiologia techniczna. Warszawa: PWN Press
  • 20 Olsson J., Krasse B. (1996). A method for studying adherence of oral streptococci to solid surfaces. Scand. J. Dent. Res., 84, 20-28
  • 21 Pontefract R.D. (1991). Bacterial adherence: its consequences in food processing. Can. Inst. Food Sci. Technol., 24, 113-117
  • 22 Poulsen L.V. (1999). Microbial biofilm in food processing. Lebensm.-Wiss.-Technol., 32, 321-326
  • 23 Pyć K.W. (2008). Elementy urządzeń jako źródło zanieczyszczeń mikrobiologicznych w przemyśle. W: Mikrobiologia techniczna. Warszawa: PWN Press

Uwagi

Rekord w opracowaniu

Typ dokumentu

Bibliografia

Identyfikatory

Identyfikator YADDA

bwmeta1.element.agro-6f3583bc-b3f2-4348-b639-53a61bd58744
JavaScript jest wyłączony w Twojej przeglądarce internetowej. Włącz go, a następnie odśwież stronę, aby móc w pełni z niej korzystać.