Application of PCR and culture filtrate toxicity assay to determine potential insecticide activity of Bacillus thuringiensis Vip-proteins

• Autorzy: Baranek J. , Konecka E. , Kaznowski A.

Warianty tytułu

PL

Zastosowanie techniki PCR oraz testów aktywności owadobójczej przesączy pohodowlanych do określenia potencjalnej toksyczności białek Vip Bacillus thuringiensis

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Techniką PCR określono występowanie genu vip3A w genomach 10 szczepów Bacillus thuringiensis. Aktywność toksyn Vip oznaczono w przesączach pohodowlanych, które dodawano do pożywki dla larw Spodoptera exigua. Dziewięć na dziesięć filtratów wykazało aktywność insektycydową, a odsetek martwych larw owadów wynosił 12–100%. Zastosowana metoda pozwala szybko określić, które szczepy bakteryjne wytwarzają białka Vip oraz wstępnie ocenić ich aktywność owadobójczą.

EN

By using PCR reactions we assessed the abundance of vip3A gene in the genomes of 10 Bacillus thuringiensis strains. We estimated Vip toxin activity by adding bacterial culture filtrates into the diet given to Spodoptera exigua caterpillars. Nine of ten filtrates caused death among larvae, and the mortality varied between 12 and 100%. The method used in this study allows fast identification of strains producing Vip-proteins and preliminary evaluation of their insecticidal activity.

• Wydawca: -
• Czasopismo: Progress in Plant Protection
• Rocznik: 2012
• Tom: 52
• Numer: 4
• Opis fizyczny: s.777-780,rys.,tab.,bibliogr.

Twórcy

autor

Baranek J.

• Zakład Mikrobiologii, Wydział Biologii, Uniwersytet im.Adama Mickiewicza w Poznaniu, ul.Umultowska 89, 61-614 Poznań

autor

Konecka E.

• Zakład Mikrobiologii, Wydział Biologii, Uniwersytet im.Adama Mickiewicza w Poznaniu, ul.Umultowska 89, 61-614 Poznań

autor

Kaznowski A.

• Zakład Mikrobiologii, Wydział Biologii, Uniwersytet im.Adama Mickiewicza w Poznaniu, ul.Umultowska 89, 61-614 Poznań

Bibliografia

• Betz F., Hammond B., Fuchs R. 2000. Safety advantages of Bacillus thuringiensis-protected plants to control insect pests. Regul. Toxicol Pharmacol. 32 (2): 156–173.
• Bonilla E., Hernández F., Cortés L., Mendoza M., Mejía J., Carrillo E., Casas E., Betancourt M. 2008. Effects of the insecticides malathion and diazinon on the early oogenesis in mice in vitro. Wiley Periodicals, Inc. Environ. Toxicol. 23 (2): 240–245.
• Brousseau R., Saint-Onge A., Prefontaine G., Masson L., Cabana J. 1993. Arbitrary primer Polymerase Chain Reaction, a powerful method to identify Bacillus thuringiensis serovars and strain. Appl. Environ. Microbiol. 59 (1): 114–119.
• Crickmore N., Zeigler D., Schnepf E., van Rie J., Lereclus D., Baum J., Bravo A., Dean D. 2012. Bacillus thuringiensis Toxin Nomenclature. www.lifesci.sussex.ac.uk/home/Neil_Crickmore/Bt/, dostęp: 30.03.2012.
• Donovan W., Donovan J., Engleman J. 2001. Gene knockout demonstrates that vip3A contributes to the pathogenesis of Bacillus thuringiensis toward Agrotis ipsilon and Spodoptera exigua. J. Invertebr. Pathol. 78 (1): 45–51.
• Fang J., Xu X., Wang P., Zhao J.-Z., Shelton A., Cheng J., Feng M., Shen Z. 2007. Characterization of chimeric Bacillus thuringiensis Vip3 toxins. Appl. Environ. Microbiol. 73 (3): 956–961.
• Konecka E., Kaznowski A., Baranek J. 2011. Wykorzystanie bakterii Bacillus thuringiensis do produkcji bioinsektycydów. Post. Mikrobiol. 50 (4): 303–311.
• Lee M., Walters F., Hart H., Palekar N., Chen J.-S. 2003. The mode of action of the Bacillus thuringiensis vegetative insecticidal protein Vip3A differs from that of Cry1Ab δ-endotoxin. Appl. Environ. Microbiol. 69 (8): 4648–4657.
• Milne R., Liu Y., Gauthier D., van Frankenhuyzen K. 2008. Purification of Vip3Aa from Bacillus thuringiensis HD-1 and its contribution to toxicity of HD-1 to spruce budworm (Choristoneura fumiferana) and gypsy moth (Lymantria dispar) (Lepidoptera). J. Invertebr. Pathol. 99 (2): 166–172.
• Poitout S., Bues R. 1970. Élevage de plusieurs espèces de Lépidoptères Noctuidae sur milieu artificiel riche et sur milieu artificiel simplifié. Ann. Zool. Écol. Anim. 1: 79–95.
• Proskocil B., Bruun D., Lorton J., Blensly K., Jacoby D., Lein P., Fryer A. 2008. Antigen sensitization influences organophosphorus pesticide – induced airway hyperreactivity. Environ. Health Persp. 116 (3): 381–388.
• Schnepf E., Crickmore N., Van Rie J., Lereclus D., Baum J., Feitelson J., Zeigler D., Dean D. 1998. Bacillus thuringiensis and its pesticidal crystal proteins. Microbiol. Mol. Biol. Rev. 62 (3): 775–806.
• Sierpińska A. 1997. Bacillus thuringiensis – stan obecny i perspektywy wykorzystania w ograniczeniu liczebności owadów liściożernych. Sylwan 141 (9): 63–70.
• Sierpińska A. 2000. Bacillus thuringiensis w ochronie lasu – alternatywa dla insektycydów chemicznych. Prac. Inst. Bad. Leś. A, 2 (899): 71–99.
• Singh P.B., Singh V. 2008. Pesticide bioaccumulation and plasma sex steroids in fishes during breeding phase from north India. Environ. Toxicol. Pharmacol. 25 (3): 342–350.
• Wang G., Zhang J., Song F., Gu A., Uwais A., Shao T., Huang D. 2008. Recombinant Bacillus thuringiensis strain shows high insecticidal activity against Plutella xylostella and Leptinotarsa decemlineata without affecting nontarget species in the field. J. Appl. Microbiol. 105 (5): 1536–1543.

Uwagi

PL

Rekord w opracowaniu