Plant extract on seed-borne pathogenic fungi from seeds of paddy grown in Southern India

• Autorzy: Mohana D.C. , Prasad P. , Vijaykumar V. , Raveesha K. A.

Warianty tytułu

PL

Wpływ wyciągów roślinnych na patogeniczne grzyby przenoszone z nasionami ryżu uprawianego na południu Indii

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

A total of 40 seed samples of different cultivars of paddy, collected from southern part of India, were mycologicaly analyzed by agar plating method on Czapek's-Dox-Agar (CzA) medium and Standard Blotter Method (SBM), revealed the occurrence of 33 diverse fungal species belonging to 16 genera. The species of Drechslera oryzae (RP 82.5%) was recorded with the incidence and relative preponderance (RP), followed by Curvularia lunata (RP 67.5%) and Aspergillus niger (RP 65.0%) respectively. The data on the diversity and incidence of fungal species would be a great importance in the region for predicting the extent of pre-and post-infections. In vitro antifungal activity assay of methanol extract of 12 plants belonging to different families were tested against eight pathogenic fungal species viz., Alternaria alternata, Aspergillus flavus, Curvularia lunata, Drechslera oryzae, D. halodes, Fusarium moniliforme, Pyricularia oryzae and Trichoconis padwickii by poisoned food technique. The results revealed that, methanol extract of Acacia nilotica, Caesalpinia coriaria, Decalepis hamiltonii, Emblica officinalis, Lawsonia inermis and Mimosops elengi showed significant antifungal activity at 3500 μg/ml concentration. Comparative evaluation of the extracts with the synthetic fungicides viz., bavistin, blitox, captan, dithane M-45 and thiram at the recommended dosage revealed that, antifungal activity of methanol extract of D. hamiltonii, L. inermis and M. elengi was almost equivalent. These plants can possibly be exploited in the management of seed-borne pathogenic fungi and prevention of biodeterioration of paddy in an eco-friendly way.

PL

Analizie mikologicznej poddano próby nasion 40 odmian ryżu uprawianych w południowych regionach Indii. Zastosowano standardową metodę wykładania nasion na wilgotną bibułę oraz wykładanie nasion na pożywkę agarową Czapek-Dox. Wyniki analizy mikologicznej nasion ryżu wykazały obecność 33 różnych gatunków grzybów należących do 16 rodzajów. Spośród wyizolowanych patogenów dominował gatunek Drechslera oryzae, a jego procentowy udział wynosił 82,5%. W dalszej kolejności występowały gatunki Culvularia lunata i Aspergillus Niger, a ich częstotliwość wynosiła odpowiednio 67,5 i 65,0%. Dane dotyczące zróżnicowania i częstotliwości występowania poszczególnych gatunków grzybów stanowią niewątpliwie, cenną pomoc podczas prognozowania pojawiania się chorób, a także zasięgu ich występowania. W testach in vitro oceniano grzybobójcze działanie metanolowych wyciągów z 12 gatunków roślin należących do różnych rodzin przeciwko 8 patogenicznym grzybom: Alternaria alternata, Dreschlera oryzae, D. halodes, Fusarium moniliforme, Pyricularia oryzae, i Trichoconis padwickii, przy użyciu powszechnie stosowanych metod. Wyniki przeprowadzonych testów wykazały, że metanolowe wyciągi z roślin: Acacia nilotica, Ceasalpinia coriaria, Decalepis hamiltonii, Emblica officinalis, Lawsonia inermis i Mimosops elengi wykazały działanie grzybobójcze, w koncentracji 3 500 μg/ml. Porównawcza analiza badanych wyciągów roślin z takimi syntetycznymi fungicydami, jak: bavistin, blitox, kaptan, Dithane M-45 i thiram zastosowanych w zalecanych dawkach, wykazała podobne grzybobójcze działanie metanolowych wyciągów roślinnych z następujących gatunków: D. hamiltonii, L. inermis i M. elengi. Wyciągi z tych roślin można by polecić do zwalczania patogenicznych grzybów przenoszonych z nasionami, a także do zapobiegania biologicznemu rozkładowi nasion w ekologicznych uprawach ryżu.

• Wydawca: -
• Czasopismo: Journal of Plant Protection Research
• Rocznik: 2011
• Tom: 51
• Numer: 2
• Opis fizyczny: p.101-106,ref.

Twórcy

autor

Mohana D.C.

• Agricultural Microbiology Laboratory, Department of Microbiology and Biotechnology, Bangalore University Jnana Bharathi Campus, Bangalore-560 056, India

autor

Prasad P.

autor

Vijaykumar V.

autor

Raveesha K. A.

Bibliografia

• Agrawal R. L. 1999. Seed Technology. 2nd ed. Oxford and IBH Publishing Co., New Delhi: 87-97.
• Agrios G. N. 1997. Plant Pathology. 4th ed. Academic Press, California: 245-269.
• Aliero A. A., Afolayan A. J. 2006. Antimicrobial activity of Solanum tomentosum. Afr. J. Biotechnol. 5 (4): 369-372.
• Anon. 2005. Pest control background. Int. J. Pest Control 45 (2): 232-233.
• Bagga P. S., Sharma V. K. 2006. Evaluation of fungicides as seedling treatment for controlling bakanae/foot-rot (Fusarium moniliforme) disease in basmati rice. J. Mycol. Plant Pathol. 59: 305-308.
• Booth C. 1977. Fusarium: Laboratory Guide to the Identification of Major Species. Commonwealth Mycological Institute. Ferry Lane. Kew, Surrey, England: 6-133.
• Buwa L. V., Staden J. V. 2006. Antibacterial and antifungal activity of traditional medicinal plants used against venereal diseases in South Africa. J. Ethnopharmacol. 103 (1): 139-142.
• Chandler J. 2005. Cost reduction in SIT programmes using exosect auto-dissemination as part of area wide integrated pest management. Int. J. Pest Control 42 (2): 257-260.
• Desjardins A. E., Manandhar G., Plattner R. D., Maragos C. M., Shrestha K., McCormick S. P. 2000. Occurrence of Fusarium species and mycotoxins in Nepalese maize and wheat and the effect traditional processing method on mycotoxin levels. J. Agric. Food Chem. 48 (4): 1377-1383.
• Domijan A., Feraica M., Jurjevic Z., Ivil D., Cvjetkovic B. 2005. Fumonisin B1, fumonisin B2, zearalenone and ochratoxin A contamination of maize in Croatia. Food Additiv. Contam. 22 (7): 677-680.
• Ergene A., Guler P., Tan S., Mirici S., Hamzaoglu E., Duran A. 2006. Antibacterial and antifungal activity of Heracleum sphondylium subsp. artvinense. Afr. J. Biotechnol. 5 (11): 1087-1089.
• Galvano F., Piva A., Ritieni A., Galvano G. 2001. Dietary strategies to counteract the effect of mycotoxins: A review. J. Food Protect. 64 (1): 120-131.
• Gottlieb O. R., Borin M. R., Brito N. R. 2002. Integration of ethnobotany and phytochemistry: dream or reality? Phytochemistry 60 (2): 145-152.
• Harborne J. B. 1998. Phytochemical methods: A guide to modern techniques of plant analysis. 3rd ed. Chapman & Hall Pub., London, UK: 7-8.
• Harris C. A., Renfrew M. J., Woolridge M. W. 2001. Assessing the risk of pesticide residues to consumers: recent and future developments. Food Additiv. Contam. 18 (12): 1124-1129.
• ISTA. 1996. International rules for seed testing. Seed Sci. Technol. 21 (1): 25-30.
• Janardhana G. R., Raveesha K. A., Shetty H. S. 1998. Modified atmosphere storage to prevent mould-induced nutritional loss in maize. J. Sci. Food Agric. 76 (4): 573-578.
• Janardhana G. R., Raveesha K. A., Shetty H. S. 1999. Mycotoxin contamination of maize grains grown in Karnataka (India). Food Chem. Toxicol. 37 (8): 863-868.
• Kavitha R., Umesha S., Shetty H. S. 2005. Dose dependent impact of dominant seed-borne fungi on seed germination and seedling vigour of cotton seeds. Seed Res. 33 (2): 187-194.
• Koirala P., Kumar S., Yadar B. K., Premarajan K. C. 2005. Occurrence of Aflatoxin in some of the food and feed in Nepal. Indian J. Medical Sci. 59 (8): 331-336.
• Krishnamurthy C. D., Lokesh S., Shetty H. S. 2005. Occurrence, transmission and remedial aspects of Drechslera oryzae in paddy (Oryza sativa L.). Seed Res. 33 (2): 195-200.
• Leslie J. F., Summerell B. A. 2006. The Fusarium Laboratory Manual. 1st ed. Blackwell Publishing Professional, USA: 1-180.
• Lienard V., Seck D., Lognay G., Gaspar C., Severin M. 1993. Biological activity of Cassia occidentalis L. against Callosobruchus maculatus (F.) (Coleoptera: Bruchidae). J. Stored Products Res. 29 (4): 311-318.
• Miller J. D. 1995. Fungi and mycotoxins in grain implications for stored product research. J. Stored Product Res. 31 (1): 1-16.
• Mohana D. C., Raveesha K. A., Lokanath R. 2008. Herbal remedies for the management of seed-borne fungal pathogens by an edible plant Decalepis hamiltonii (Wight & Arn). Arch. Phytopathol. Plant Protect. 41 (1): 38-49.
• Nagamani A., Kunwar I. K., Manoharachary C. 2006. Handbook of Soil Fungi. 1ed. I.K International Pvt. Ltd., New Delhi, 436 pp.
• Parekh J., Karathia N., Chanda S. 2006. Evaluation of antibacterial activity and phytochemical analysis of Bauhinia variegata L. bark. Afr. J. Biomed. Res. 9: 53-56.
• Roberts R. M., Gilbert J. C., Rodewald L. B., Wingrove A. S. 1981. Modern Experimental Organic Chemistry. 3rd ed. Saunders Golden Sunbrust Series, Philadelphia, Holt-Saunders, Japan, Tokyo: 495-506.
• Singh J., Tripathi N. N. 1999. Inhibition of storage fungi of blackgram (Vigna mungo L.) by some essential oils. Flavour Fragrance J. 14 (1): 1-4.
• Varma J., Dubey N. K. 1999. Prospectives of botanical and microbial products as pesticides of tomorrow. Curr. Sci. 76 (2): 172-179.
• Wodageneh A., Wulp H. V. D. 1997. Obsolute pesticides in developing countries. Pestic. Information 23 (1): 33-36.

Uwagi

Rekord w opracowaniu