PL EN


Preferencje help
Widoczny [Schowaj] Abstrakt
Liczba wyników
2011 | 26 | 4 |

Tytuł artykułu

Rearing of Black Molly Poecilia hybrids (Valenciennes, 1846) in water of different salinity

Autorzy

Warianty tytułu

PL
Podchów molinezji czarnej "Black Molly" Poecilia hybrids (Valenciennes, 1846) w wodzie o różnym zasoleniu

Języki publikacji

EN

Abstrakty

EN
This study analysed the rearing of Black Molly Poecilia hybrids. It is a crossbreed of sailfin molly Poecilia latipinna and short-finned molly Poecilia sphenops. Black mollies are very popular aquarium fish which are frequently put into marine aquaria to speed up the maturation of such aquaria. Without being acclimatised to high salinity, the fish are put into water with a salinity of SG 1.025 or 33 ‰. The results indicate that fish which are shorter than 20 mm die in water whose salinity is higher than SG 1.020. However, fish longer than 25 mm can adapt to higher salinity. The results indicate that fish which have been reared in water of higher salinity grow faster.
PL
Przeprowadzono badania nad podchowem molinezji czarnej “Black Molly” Poecilia hybrids. Jest ona krzyżówką molinezji szerokopłetwej Poecilia latipinna oraz molinezji ostroustej Poecilia sphenops. Molinezja “Black molly” jest bardzo popularną rybą akwariową, którą często umieszcza się w akwariach morskich, aby przyspieszyć proces dojrzewania tych zbiorników. Molinezje czarne bez wcześniejszej aklimatyzacji do dużego zasolenia, od razu umieszczane są w akwariach o zasoleniu SG 1,025, czyli 33‰. Uzyskane wyniki wskazują, iż ryby o długości poniżej 20 mm sną w wodzie o zasoleniu wyższym niż SG 1,020. Osobniki o długości powyżej 25 mm są natomiast w stanie przystosować się do wyższego zasolenia. Uzyskane wyniki wskazują, że ryby podchowywane w wodzie o wyższym zasoleniu szybciej przyrastają.

Wydawca

-

Rocznik

Tom

26

Numer

4

Opis fizyczny

p.333-344,fig.,ref.

Twórcy

autor
  • National Research Institute of Animal Production in Balice, Balice n.Krakow, Poland
autor
  • University of Warmia and Mazury in Olsztyn, Michala Oczapowskiego 5, 10-719 Olsztyn, Poland

Bibliografia

  • APPELBAUM S., JESUAROCKIARAJ A. 2009. Salt incorporated diets for enhancing growth performance and survival in gilthead sea bream Sparus aurata L. juveniles reared in low saline brackish water. Scientia Marina, 73: 213–217.
  • CEJKO B.I., KOWALSKI R.K., KUCHARCZYK D., TARGOŃSKA K., KREJSZEFF S., ŻARSKI D., GLOGOWSKI J. 2010. Influence of the length of time after hormonal stimulation on selected parameters of milt of ide Leuciscus idus L. Aquacult. Res., 41: 804–813.
  • COSTA G.C., SCHLUPP I. 2010. Biogeography of the amazon Molly: Ecological niche and range limits of an asexual hybrid species. Global Ecology and Biogeography, 19(4): 442–451.
  • DIMITROGLOU A., DAVIES S.J., SWEETMAN J., DIVANACH P., CHATZIFOTIS S. 2010. Dietary supplementation of mannan oligosaccharide on white sea bream (Diplodus sargus L.) larvae: Effects on development, gut morphology and salinity tolerance. Aquacult. Res., 41: 245–251.
  • GAVLIK S., SPECKER J.L. 2004. Metamorphosis in summer flounder: Manipulation of rearing salinity to synchronize settling behavior, growth and development. Aquaculture, 240: 543–559.
  • GLOGOWSKI J., BABIAK I., KUCHARCZYK D., ŁUCZYŃSKI M., PIROS B. 1999. Some properties of bream Abramis brama L. sperm and its cryopreservation. Aquacult. Res., 30: 765–772.
  • HAKUĆ-BŁAŻOWSKA A., KUPREN K., TURKOWSKI K., TARGOŃSKA K., JAMRÓZ M., KREJSZEFF S., KWIATKOWSKI M., ŻARSKI D., KUCHARCZYK D. 2009. Comparison of economic effectiveness of applying different hormonal agents in asp Aspius aspius (L.) and ide Leuciscus idus (L.). Pol. J. Nat. Sci., 24(4): 224–234.
  • HAKUĆ-BŁAŻOWSKA A., KUPREN K., TURKOWSKI K., TARGOŃSKA K., ŻARSKI D., KUCHARCZYK D. 2010. A comparison of the economic effectiveness of various spawning agents for stimulating the reproduction of the cultured and wild forms of the common barbel Barbus barbus (L..) Pol. J. Nat. Sci., 25: 272–286.
  • IMSLAND A.K., GUNNARSSON S., Á , KRISTJÁNSSON B., ÁHRNASON J., JÓNSSON A.F., SMÁRADÓTTIR H., THORARENSEN H. 2010. Long-term rearing of atlantic halibut at intermediate salinity. Effect on growth, feed conversion efficiency, and blood physiology. J. World Aquacult. Soc., 41: 115–123.
  • KEARNEY M., JEFFS A., LEE P. 2008. Effects of salinity and temperature on the growth and survival of New Zealand shortfin, Anguilla australis, and longfin, A. dieffenbachii, glass eels. Aquacult. Res., 39: 1769–1777.
  • KREJSZEFF S., KUCHARCZYK D., KUPREN K., TARGOŃSKA K., MAMCARZ A., KUJAWA R., KACZKOWSKI Z., RATAJSKI S. 2008. Reproduction of chub, Leuciscus cephalus L., under controlled conditions. Aquacult. Res., 39: 907–912.
  • KREJSZEFF S., TARGOŃSKA K., ŻARSKI D., KUCHARCZYK D. 2009. Domestication affects spawning of the ide (Leuciscus idus) – preliminary study. Aquaculture, 295: 145–147.
  • KREJSZEFF S., TARGOŃSKA K., ŻARSKI D., KUCHARCZYK D. 2010a. Comparison of artificial reproduction of two different spawn-forms of the chub. Reprod. Biol., 10: 66–74.
  • KREJSZEFF S., ŻARSKI D., KUCHARCZYK D., KUPREN K., TARGOŃSKA K., MAMCARZ A. 2010b. An experimental device for eggs incubation and Fish larvae rearing under laboratory conditions. Pol. J. Nat. Sci., 25: 190–199.
  • KUCHARCZYK D., KUJAWA R., MAMCARZ A., SKRZYPCZAK A., WYSZOMIRSKA E. 1996. Induced spawning in perch, Perca fluviatilis L. using carp pituitary extract and HCG. Aquacult. Res., 27: 847–852.
  • KUCHARCZYK D., KUJAWA R., LUCZYNSKI M., GLOGOWSKI J., BABIAK I., WYSZOMIRSKA E. 1997. Induced spawning in bream, Abramis brama (L.), using carp and bream pituitary extract and hCG. Aquacult. Res., 28: 139–144.
  • KUCHARCZYK D., KUJAWA R., MAMCARZ A., SKRZYPCZAK A., WYSZOMIRSKA E. 1998. Induced spawning in perch, Perca fluviatilis L., using FSH + LH with pimozide or metoclopramide. Aquacul. Res., 29: 131–136.
  • KUCHARCZYK D., KUJAWA R., MAMCARZ A., TARGOŃSKA-DIETRICH K., WYSZOMIRSKA E., GLOGOWSKI J., BABIAK I., SZABÓ T. 2005. Induced spawning in bream (Abramis brama L.) using pellets containing GnRH. Czech J. Anim. Sci., 50(3): 89–95.
  • KUCHARCZYK D., TARGOŃSKA K., HLIWA P., GOMUŁKA P., KWIATKOWSKI M., KREJSZEFF S., PERKOWSKI J. 2008a. Reproductive parameters of common carp (Cyprinus carpio L.) spawners during natural season and out-of-season spawning. Reprod. Biol., 8(3): 285–289.
  • KUCHARCZYK D., TARGOŃSKA K., PRUSIŃSKA M., KREJSZEFF S., KUPREN K., KUJAWA R., MAMCARZ A. 2008b. Reproduction of Buenos Aires tetra (Hemigrammus caudovittatus) under controlled conditions. Pol. J. Nat. Sci., 23(4): 858–865.
  • KUCHARCZYK D., TARGOŃSKA K., ŻARSKI D., KREJSZEFF S., KUPREN K., ŁUCZYŃSKI M.J., SZCZERBOWSKI A. 2010a. The reproduction of neon tetra, Paracheirodon innesi (Myers, 1936), under controlled conditions. Pol. J. Nat. Sci., 25(1): 81–92.
  • KUCHARCZYK D., GOMUŁKA P., KREJSZEFF S., ŻARSKI D., TARGOŃSKA K. 2010b. The effect of prepared activating liquid on the survivability of ide Leuciscus idus (L.) embryos. Pol. J. Nat. Sci., 25(2): 200–208.
  • KUJAWA R., MAMCARZ A., KUCHARCZYK D. 1997. Effect of temperature on embryonic development of asp (Aspius aspius L.). Pol Arch. Hydrobiol., 44: 139–143.
  • KUJAWA R., KUCHARCZYK D., MAMCARZ A. 1999. A model system for keeping spawners of wild and domestic fish before artificial spawning. Aquacult. Eng., 20: 85–89.
  • KUJAWA R., MAMCARZ A., KUCHARCZYK D., SKRZYPCZAK A. 2000. An experimental unit for rearing of larval freshwater fish. Folia Univ. Agric. Stetin., Piscaria, 205: 103–108.
  • KUJAWA R., KUCHARCZYK D., MAMCARZ A. 2010. The effect of tannin concentration and egg unsticking time on the hatching success of tench Tinca tinca (L.) larvae. Rev. Fish Biol. Fish., 20: 339–343.
  • KUPREN K., KUCHARCZYK D., PRUSIŃSKA M., KREJSZEFF S., TARGOŃSKA K., MAMCARZ A. 2008. The influence of shocking density on survival and growth of Buenos Aires tetra (Hemigrammus caudovittatus) larvae reared under controlled conditions. Pol. J. Nat. Sci., 23(4): 881–887.
  • LIM L.C., DHERT P., SORGELOOS P., 2003. Recent developments in the application of live feeds in the freshwater ornamental fish culture. Aquaculture, 227: 319–331.
  • LIN C.H., TSAI R.S., LEE T.H. 2004. Expression and distribution of Na, K-ATPase in gill and kidney of the spotted green pufferfish, Tetraodon nigroviridis, in response to salinity challenge. Comparative Biochemistry and Physiology – A Molecular and Integrative Physiology, 138: 287–295.
  • MURUGAN A., DHANYA S., SREEPADA R.A., RAJAGOPAL S., BALASUBRAMANIAN T. 2009. Breeding and mass-scale rearing of three spotted seahorse, Hippocampus trimaculatus Leach under captive conditions. Aquaculture ,290: 87–96.
  • OPUSZYŃSKI K., 1983. Podstawy biologii ryb, PWRiL, Warszawa.
  • RILEY L.G., RICHMAN III N.H., HIRANO T., GORDON GRAU E. 2002. Activation of the growth hormone/insulin-like growth factor axis by treatment with 17α -methyltestosterone and seawater rearing in the tilapia, Oreochromis mossambicus. General and Comparative Endocrinology, 127: 285–292.
  • SALES J., JANSSENS G.P.J., 2003. Nutrient requirements of ornamental fish. Aquat. Liv. Res., 16: 533–540.
  • SZCZERBOWSKI A., KUCHARCZYK D., MAMCARZ A., ŁUCZYŃSKI M.J., TARGOŃSKA K., KUJAWA R. 2009. Artificial off-season spawning of Eurasian perch Perca fluviatilis L. Arch. Pol. Fish., 17: 95–98.
  • SMITH T.I.J., DENSON M.R., HEYWARD SR. L.D., JENKINS W.E., CARTER L.M. 1999. Salinity effects on early life stages of southern flounder Paralichthys lethostigma. J. World Aquacult. Soc., 30: 236–244.
  • TARGOŃSKA K. 2007. Application of Chironomus larvae in culture of chosen fish species. PhD thesis.
  • TARGOŃSKA K., KUCHARCZYK D., KUJAWA R., MAMCARZ A., ŻARSKI D. 2010. Controlled reproduction of asp, Aspius aspius (L.) using luteinizing hormone releasing hormone (LHRH) analogues with dopamine inhibitors. Aquaculture, 306: 407–410.
  • TARGOŃSKA K., KUCHARCZYK D. 2011. The application of hCG, CPH and Ovopel in successful artificial reproduction of goldfish (Carassius auratus auratus) under controlled conditions. Reprod. Dom. Anim., 46: 651–655.
  • TLUSTY M. 2002. The benefits and risks of aquacultural production for the aquarium trade. Aquaculture, 205: 203–219.
  • WANG W., HOU L., ZOU X., YAO F., YIn B., CHEN L. 2007. Effects of n-3 PUFA levels in live foods on albinism, growth, survival, and salinity tolerance of flounder (Paralichthys olivaceus) larvae in large-scale artificial rearing. Isr. J. Aquacult.- Bamidgeh, 59: 137–145.
  • ŻARSKI D., KUCHARCZYK D., TARGOŃSKA K., JAMRÓZ M., KREJSZEFF S., MAMCARZ A. 2009. Application of Ovopel, Ovaprim and their combination in artificial reproduction of two rheophilic cyprinid fishes. Pol. J. Nat. Sc., 24(4): 235–244.
  • ŻARSKI D., KUCHARCZYK D., SASINOWSKI W., TARGOŃSKA K., MAMCARZ A. 2010. The influence of temperature on successful reproduction of burbot Lota lota L. under the hatchery conditions. Pol. J. Nat. Sci., 25: 93–105.

Typ dokumentu

Bibliografia

Identyfikatory

Identyfikator YADDA

bwmeta1.element.agro-649a04db-44e5-43c1-9292-6ead3d340fec
JavaScript jest wyłączony w Twojej przeglądarce internetowej. Włącz go, a następnie odśwież stronę, aby móc w pełni z niej korzystać.