PL
Celem przeprowadzonych badań było określenie wpływu dodatku butylowanego hydroksytoluenu (BHT) do rozcieńczalnika mrożeniowego na jakość plemników knura oraz ich zdolność zapładniającą po procedurze zamrażania-rozmrażania. Nasienie pochodzące od 5 knurów (36 ejakulaty) kriokonserwowano w rozcieńczalniku żółtkowo-laktozowo-glicerolowym uzupełnionym różnymi stężeniami BHT: 0 mM (kontrola); 1,0 mM (R1); 1,5 mM (R2); 2,0 mM (R3). Jakość nasienia po rozmrożeniu oceniano na podstawie: ruchliwości plemników (CASA; ruch całkowity – TM, ruch postępowy – PM), translokacji fosfatydyloseryny (Annexin-V-FLuos Staining Kit) oraz stopnia fragmentacji DNA (TUNEL Assay). Jednocześnie kriokonserwowane nasienie użyto do inseminacji loszek, a zdolność zapładniającą plemników określano na podstawie skuteczności inseminacji oraz liczby prawidłowych morfologicznie zarodków ocenianych na podstawie stopnia fragmentacji DNA. Najwyższy odsetek plemników o ruchu postępowym oraz plemników żywych stwierdzono w rozcieńczalniku R3 (74,8 ±4,4% oraz 63,7 ±5,8%) w porównaniu z rozcieńczalnikiem kontrolnym (38,3 ±2,8% oraz 36,1 ±2,6%). Jednocześnie stwierdzono, że dodatek BHT do rozcieńczalnika mrożeniowego nie indukuje wzrostu odsetka plemników wczesnoapoptotycznych po rozmrożeniu, w porównaniu z rozcieńczalnikiem kontrolnym. Niezależnie od zastosowanego rozcieńczalnika mrożeniowego, procedura zamrażania-rozmrażania nie indukuje fragmentacji DNA w plemnikach knura. Najwyższą liczbę zarodków prawidłowych morfologicznie uzyskano od loszek inseminowanych nasieniem kriokonserwowanym w rozcieńczalniku z dodatkiem 1,5 mM BHT. Nie wykazano różnic w jakości zarodków, ocenianych na podstawie stopnia fragmentacji DNA, uzyskanych od loszek inseminowanych nasieniem mrożonym w badanych rozcieńczalnikach.
EN
The objective of the study was to determine the effect of butylated hydroxytoluene (BHT) on the quality and fertilizing capacity of frozen-thawed (FT) boar semen. Semen from five boars (36 ejaculates) was resuspended in lactose-egg yolk-glycerol extender supplemented with 0 (control), 1.0 (R1), 1.5 (R2) or 2.0 mM BHT (R3). Sperm quality was assessed based on motility (CASA; TM: total motility; PM: progressive motility), phosphatidylserine (PS) translocation across the plasma membrane (Annexin-V-FLuos Staining Kit) and DNA fragmentation (TUNEL Assay). The FT semen was also used for intrauterine artificial insemination (AI) of synchronized gilts. The fertilizing capacity of the FT semen was assessed on the basis of the gilt insemination rate and the number of morphologically normal embryos. The quality of the preimplantation embryos was determined by observing a TUNEL-positive reaction. The highest percentage of progressive motile and viable spermatozoa was noted in extender R3 (74.8 ±4.4% and 63.7 ±5.8%), as compared with the control (38.3 ±2.8% and 36.1 ±2.6%). The addition of BHT to the extender did not increase early apoptotic changes in the frozen-thawed spermatozoa with respect to the control. Irrespective of the variant of the extender, cryopreservation and thawing did not induce fragmentation in the boar spermatozoa. The highest number of morphologically normal embryos from inseminated gilts was observed in the case of semen cryopreserved in extender supplemented with 1.5 mM BHT. No significant differences were observed in DNA fragmentation in the expanded blastocysts from gilts inseminated with FT semen cryopreserved in the extenders analysed.