Wpływ preparatów poprawiających właściwości biologiczne gleby, stosowanych w uprawie życicy trwałej, na wielkość populacji wybranych grup mikroorganizmów glebowych

• Autorzy: Swedrzynska D. , Zielewicz W. , Swedrzynski A. , Niewiadomska A.

Warianty tytułu

EN

Effect preparations improving biological properties of soil used for the cultivation of perennial ryegrass on the population of selected groups of microorganisms

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Określono wpływ preparatów poprawiających właściwości biologiczne gleby na dynamikę zmian populacji wybranych grup drobnoustrojów glebowych w darni życicowej na przestrzeni okresu wegetacji. Badania przeprowadzono w 2007 roku w oparciu o dwuczynnikowe doś­wiadczenie polowe. Dwuletnia plantacja życicy trwalej nawożona była preparata­mi biologicznie aktywnymi (Physio-Mescal G18, PRP-Sol, EM-1, EM-l+Ca oraz stosowano tradycyjne nawożenie P, K i Ca superfosfatem potrójnym z solą pota­sową i wapnem nawozowym węglanowym) i nawozem azotowym (saletra amono­wa). Wpływ zastosowanych preparatów na liczebność drobnoustrojów glebowych okazał się stosunkowo nieduży i bardzo zmienny w poszczególnych odrostach, co wprowadza pewne problemy przy interpretacji wyników. Tym niemniej udało się wyeksponować pewne zależności. Większość z zastosowanych preparatów przyczy­niało się do zwiększenia liczebności oligotrofów i promieniowców (zwłaszcza przy jednoczesnym stosowaniu nawożenia azotowego), a zmniejszenia liczebności grzy­bów. Najbardziej efektywnymi pod tym względem preparatami wydają się być Phvsio-Mescal G18 i PRP-So jednak różnice pomiędzy nimi a pozostałymi prepa­ratami mikrobiologicznymi, nie są duże, a wyciągnięcie jednoznacznych wniosków będzie zapewne możliwe dopiero po kilku latach ich stosowania.

EN

The aim of this study was to determine the effect of preparations improvine the biological properties of soil on the dynamics of population changes of selected froups of soil microorganisms in the perennial ryegrass turf during the vegetation period. The study was conducted in 2007 on the basis of two factor field experiment. A two-year plantation was fertilized with biologically active preparations (Physio-Mescal G18, PRP-Sol, EM-1, EM-l+Ca) and traditionally with P, K and Ca triple superphosphate with potassium salt and soil carbonate lime) and nitrogen fertilizer (ammonium nitrate). The effect of the applied preparations on the number of soil microorganisms was relatively small and highly variable in individual shoots which creates some problems in the interpretation of results. However, it was possible to demonstrate some dependencies. Most of the applied preparations contributed to the increase of the number of oligotrophic bacteria and actinomycetes (particularly with the concomitant use of nitrogen fertilizer) and reduced the number of fungi. In this respect, the most effective preparations seem to be Physio-Mescal G18 and PRP- Sol, however the differences between them and the remaining microbiological preparations are not large and drawing explicit conclusions will probably be possible only after several years of their application.

• Wydawca: -
• Czasopismo: Zeszyty Problemowe Postępów Nauk Rolniczych
• Rocznik: 2011
• Tom: 564
• Opis fizyczny: s.247-262,rys.,tab.,bibliogr.

Twórcy

autor

Swedrzynska D.

autor

Zielewicz W.

autor

Swedrzynski A.

autor

Niewiadomska A.

Bibliografia

• Badura L. 2004. Czy znamy wszystkie uwarunkowania funkcji mikroorganizmów w ekosystemach łąkowych? Kosmos. Problemy Nauk Biologicznych 53 : 264-265; 373-379.
• Bajwa R. 2005. Effects of arbuscular mycrorrhizae (AM) and effective microorganisms (EM) on various plants under allelopalhic stress. Allelopathy J. 16: 261-271.
• Czajka W., Damszel M. 2005. Nawożenie mineralne jako czynnik kształtujący zbioro­wiska grzybów w środowisku uprawnym ziemniaka. Zesz. Probl. Post. Nauk Roln. 507: 81-87.
• Frey S.D., Elliott E.T., Paustian K. 1999. Bacterial and fungal abundance and biomass in conventional and no-tillage agroecosystems along two climatic gradients. Soil Biology and Biochemistry 31: 573-585.
• Grabińska-Łoniewska A. 1999. Ćwiczenia laboratoryjne z mikrobiologii ogólnej. Ofi­cyna Wydawnicza Politechniki Warszawskiej, Warszawa: 240 ss.
• Hattori R., Hattori T. 1980. Sensitivity to salts and organie coumpounds of soil bacteria isolated on diluted media. J. Gen. Appl. Microbial. 26: 1-14.
• Higa Т., Parr J. 1995. Beneficial and effective microorganisms in a sustainable agriculture and environment. Technology Trends 9: 1-5.
• Janas R. 2009. Możliwości wykorzystania efektywnych mikroorganizmów w ekologi­cznych systemach produkcji roślin uprawnych. Problemy Inżynierii Rolniczej 3: 111-119.
• Kaczmarek Z., Wolna-Maruwka A., Jakubus M. 2008. Zmiany liczebności wybranych grup drobnoustrojów glebowych oraz aktywności enzymatycznej w glebie inokulowunej Efektywnymi Mikroorganizmami (EM). J. of Research and Applications in Agricultural Engineering 53(3): 122-127.
• Kaszubiak H. Muszyńska M. 1996. Quantitative and qualitative changes in the soil bacteria community at reduction of fungal numbers by methiram. Polish J. of Soil Science 29(2): 99-106.
• Khaliq A., Abbasi M.K., Hussain T. 2006. Effects of integrated use of organic and inorganic nutrient sources with effective microorganisms (EM) on seed cotton yield in Pakistan. Bioresource Technology 97: 967-972.
• Krzywy E. 2007. Ocena wpływu substancji czynnej PRP-Sol na kształtowanie żywno­ści i urodzajności gleb. Materiały informacyjne PRP Polska Sp. zo.o.: 9 ss.
• Kucharski J., Jastrzębska E. 2005. Rola mikroorganizmem efektywnych (EM) i gle­bowych w kształtowaniu właściwości mikrobiologicznych gleby. Zesz. Probl. Post. Nauk Roln. 507: 315-322.
• Martin J.P. 1950. Use of acid, rose bengal and streptomycin in the plate method for estimating soil fungi. Soil Science 69: 215-230.
• Mayer J., Susanne Scheid S., Widmer F., Fliessbach A., Oberholzer H.R. 2010. How effective are 'Effective microorganisms® (EM)? Results from a field study in temperate climate. Applied Soil Ecology 46: 230-239.
• Okorski A., Olszewski J., Pszczokowska A., Kulik T. 2008. Effect of fungal infection and the application of the biological agent EM 1 on the rate of photosynthesis and transpiration in pea (Pisum sativum L.) leaves. Polish J. of Natural Sciences 23: 35-47.
• Swędrzyński A. 2002. Specyfika pastwiska życicowego. Poradnik Gospodarski 4: 21-23.
• Szember A. 200J. Zarys mikrobiologii rolniczej. Wydawn. AR w Lublinie: 215 ss.
• Thalmann A. 1968. Zur Methodik der Bestimmung der Dehydrogenase Aktivität in Botlen Mittels Triphenyltetrazoliumchlorid (TTC). Landwirtsch. Forsch. 21: 249-258.
• Xu H. 2000. Effects of a microbial inoculant and organic fertilizers on the growth, photosynthesis and yield of sweet corn. J. of Crop Production 3: 183-214.