PL EN


Preferencje help
Widoczny [Schowaj] Abstrakt
Liczba wyników
Czasopismo
2011 | 57 | 3 |
Tytuł artykułu

Comparative toxicological effects of orally and intraperitoneally administered aqueous extracts of Abrus precatorius leaf in Mus musculus

Treść / Zawartość
Warianty tytułu
PL
Porównanie toksyczności dożołądkowego oraz dootrzewnowego podawania wodnych ekstraktów z liści modligroszka pospolitego (Abrus precatorious) w badaniach na myszach
Języki publikacji
EN
Abstrakty
EN
Phytochemical analysis revealed the presence of alkaloids, flavonoids, saponins, tannins, reducing sugar, total glycoside and saponin glycosides in high concentration. Proximate analysis revealed the presence of moisture (6.18%), dry matter (93.90%), crude protein (12.06%), crude fibre (15.33%), nitrogen free extract (34.12%), ash (12.28%) and oil (19.21%). Comparative toxicological assessment of orally and intraperitoneally administered aqueous extracts of Abrus precatorius leaf was carried out in Swiss albino mice. Median lethal doses (LD50) of orally and intraperitoneally administered aqueous extracts of Abrus precatorius leaf were estimated at dose levels of 2558.9 mg/kg and 638 mg/kg body weight, respectively. Intraperitoneal 10 mg/kg body weight of the extract caused increased packed cell volume, neutropenia and decreased aspartate aminotransferase. However, 50 mg/kg oral dose caused increased packed cell volume, neutropenia, decreased alkaline phosphatase and hypochloraemia, whereas oral aqueous dose of 250 mg/kg of body weight caused body weight gain, neutropenia, decreased asparatate aminotransferase and alanineaminotransferase. All the test doses caused lymphocytosis and hypercreatinaemia, hence aqueous extract of Abrus precatorius leaf is toxic at dose levels of 10, 50 and 250 mg/kg body weight.
PL
Analiza fitochemiczna wodnego wyciągu z liści Abrus precatorious wykazała obecność dużych ilości alkaloidów, saponin, tanin, cukrów redukujących, sumy glikozydów oraz glikozydów saponinowych. W dalszych analizach oznaczono: wilgotność (6,18%), suchą masę (93,90%) oraz zawartość białka (12,06%), włókna (15,33%), ekstraktu wolnego od azotu (34,12%), popiołu (12.28%), oleju (19,21%). Badanie toksyczności ekstraktu wodnego z liści Abrus precatorious podawanego dożołądkowo oraz dootrzewnowo przeprowadzono na myszach szczepu Swiss. LD50 dla dożołądkowego oraz dootrzewnowego podawania wodnego wyciągu z liści modligroszku pospolitego wynosiła odpowiednio 2558,9 mg/kg oraz 638 mg/kg masy ciała myszy. Dootrzewnowe podanie ekstraktu w ilości 10 mg/kg masy ciała myszy powodowało wzrost łącznej objętości elementów morfotycznych krwi (PCV), neutropenię oraz spadek poziomu aminotransferazy asparaginianowej. W przypadku dożołądkowego podania wyciągu w ilości 50 mg/kg m.c. myszy odnotowano spadek łącznej objętości elementów morfotycznych krwi (PCV), neutropenię, wzrost poziomu fosfatazy alkalicznej oraz hipochloremię. Natomiast dożołądkowa dawka wodnego wyciągu w ilości 250 mg/kg m.c. myszy spowodowała wzrost masy ciała, neutropenię, spadek poziomu aminotrasferazy asparaginianowej oraz alaninoaminotransferazy. Wszystkie badane dawki powodowały limfocytozę oraz hiperkreatynemię i z tego powodu należy uznać, że wodny wyciąg z liści Abrus precatorious jest toksyczny w dawkach 10, 50 oraz 250 mg/kg masy ciała myszy.
Wydawca
-
Czasopismo
Rocznik
Tom
57
Numer
3
Opis fizyczny
p.32-44,ref.
Twórcy
autor
  • Department of Veterinary Physiology, Pharmacology and Biochemistry, College of veterinary Medicine, University of Agriculture, P.M.B.2373 Makurdi, Benue State, Nigeria
Bibliografia
  • 1. Mann A, Gbate M, Nda Umar A. Abrusprecatorius: Papilionaceae. Medicinal and Economic Plants of Nupeland.Jube-Evans Books and Publications, Bida, Nigeria 2003:191.
  • 2. Budavari S. The Merck Index: An Encyclopaedia of Chemicals, Drugs and Biologicals, 10th ed. Rahway New Jersey Merck and Co. Inc. USA 1989.
  • 3. Davis JH . Abrus precatorius (Rosary pea).The most common lethal plant poison. Florida Med Assoc 1978; 65:189-91.
  • 4. Hart M. Jequirity bean poisoning. N Eng J Med 1963; 208:885-6.
  • 5. Saganuwan SA, Onyeyili PA,EtukUE . Acute toxicity and haematological studies of aqueous extract of Abrusprecatorius leaf in Musmusculus. Abstract of African Education Initiative Conference 2009:65.
  • 6. Rajaram N, Janardhana K. The chemical composition and nutritional potential of the tribal pulse, Abrus precatorius L. Plant Food Human Nutr 1992; 42(4):285-290
  • 7. Iwu MM . Malaria. Handbook of African Medicinal Plants. CRC Press Boca Raton Ann Arbour London Turkey 1993; 53:347.
  • 8. Saganuwan SA, Gulumbe ML . In vitro antimicrobial activities testing of Abrus precatorius cold water leaf extract on Salmonella typhimurium, Escherichia coli and Klebsiella pneumoniae. J Technol Res 2005; 4(3):70-3.
  • 9. Saganuwan SA, Gulumbe ML . In vitro antimicrobial activities testing of Abrus precatorius cold-water leaf extract on Streptococcus pyogenes and Streptococcus pneumoniae. Proceedings of the 2nd Annual Conference of the Nigeria Soc. Indigenous Knowledge Dev, Cross River State Univ. Technol. Obubra, 9th – 12th Nov. 2005:93-97.
  • 10. Duke JA , Bogenschutz-Godwin MJ , duCellier J, Duke PAK . Handbook of Medicinal Herbs, 2nd ed. CRC Press, Boca Raton London New York Washington DC 2002.
  • 11. Saganuwan SA. Toxicological and antimalarial effects of aqueous stem bark extract of Abrus precatorius (Jequirity bean) leaf in Swiss albino mice. PhD Thesis Usmanu Danfodiyo University, Sokoto, Nigeria 2011:250.
  • 12. Windholz M. The Merck Index: An Encyclopaedia of Chemicals, Drugs and Biologicals, 10th ed. Rahway New Jersey, Merck and Co. Inc 1983
  • 13. Gosselin RE , Smith RP, Hodge HC. Clinical Toxicity of Commercial Products, Williams and Wilkins, Baltimore London 1984.
  • 14. Saganuwan SA, Onyeyili PA. Biochemical effect of aqueous leaf extract of Abrus precatorius leaf in Swiss lbino mice. Herba Polonica 2010; 56(3):63-80.
  • 15. Trease GE , Evans W. C. Pharmacognosy. 12th ed. Belliere Tindal London 1997:21-22.
  • 16. Oyeleke OA. Outline of Food Analysis. Department of Biochemistry, A.B.U., Zaria, Nigeria 1984:20-26.
  • 17. AOAC. Official Methods of Analysis. 12th ed. Washington DC 1984:129-33.
  • 18. McDonald P, Edwards RA , Greenhalgh JFD, Morgan CA. Animal Nutrition. 5th ed. Pearson Education ltd. Edinburgh 199:607. 19. Choi SC. Interval estimation of the LD50 based on an up-and-down experiment. Biometrics 1990; 46:485-92.
  • 20. Reed LJ , Muench H. A simple method of estimating fifty percent endpoints. Am J Hyg 1938; 27:493.
  • 21. Yamba O, Innocent PG, Odile GN . Biological and toxicological study of aqueous root-extract from Mitragynainermis (Wild Oktze) Rubiaceae. Int J Pharmacol 2007; 3(1):80-85.
  • 22. CIOMS. International Guiding Principles for Biomedical Research Involving Animals c/o WH O 121, Comparative toxicological effects of orally and intraperitoneally administered aqueous extracts of Abrus precatorius leaf ...
  • 23. Baker FJ. The full blood count In: Baker FJ, Silverton RE , Kilshaw D, Shannon R, Egglestone S, Guttine DL, Mackenzie JC (eds.). Introduction to Medical Laboratory Technology. 6th ed. Batterworth and Company, London 1985:320-30.
  • 24. Tietz NW . Total protein determination. Clinical Guide to Laboratory Tests. 3rd ed. WB Saunders, Philadelphia 1995:518-19.
  • 25. Doumas BT , Watson WA , Biggs HB . Albumin-Bromocresol green method. ClinChem 1971; 56:31-87.
  • 26. Jendrassik-Groff FS. In vitro determination of total and direct bilirubin in serum. J Biochem 1938; 299:81-8.
  • 27. Reitman S, Frankel S. Quantitative in vitro determination of glutamecpyrunic transaminase in serum. Am J Clin Pathol 1957; 28:56-66.
  • 28. Fawcett JK , Scott JE . Na-K: The flame photometric method. J Clin Pathol 1960; 13:156-159.
  • 29. Chaney AL , Marbarch AL . HCO3 – Cl titration method. Clin Chem 1962; 8:130.
  • 30. Zar JH . Two sample hypothesis. Biostatistical Analysis. Pearson Education, New Delhi, India 2008; 122-
  • 31. Abdulrahman F, OgaruwaVE, Akinniyi JA . Phytochemistry of some psychotropic plants in Borno State – a review. Annals of Borno 1998–1999; 15/16:165-75.
  • 32. Duke JA , Bogenschutz-Godwin MJ , duCellier J, Duke PAK . Handbook of Medicinal Herbs. 2nd ed. CRC Press Boca Raton London New York Washington DC 2002:840.
  • 33. Finar IL . Organic Chemistry: Stereochemistry and Chemistry of Natural Products. 5th ed. Vol. 2. Longman Group 1989:517-605.
  • 34. WH O. Quality Control Method for Medicinal Plants Materials, Geneva, Switzerland 1998:115.
  • 35. Frantisek SS. The natural guide to medicinal herbs and plants. Tiger Barks Institute, Twickenham 1991:1-8.
  • 36. Garg SK. Veterinary Toxicology, CBS Publishers and Distributors, Darya Ganj, New Delhi, India 2004:321.
  • 37. Latimer KS, Tvedten H. Leukocyte disorders. In: Willard MD, Tvedten H, Turnwald GH (eds.). Small Animal Clinical Diagnosis By Laboratory Methods. 3rd ed. W.B. Saunders Company, A Division of Harcort Brace and Company, Philadelphia, London Toronto 1998:395.
  • 38. Centre SA, Randolph JF, ErbHN . Eosinophilia in the cat: A retrospective study of 312 cases (1975-1986). JAAHA 1990; 26:349-358.
  • 39. McEwen BJ . Eosinophils: A review. Vet Res Communic 1992; 16:11-44.
  • 40. Willard MD, Tvedt DC. Gastrointestinal and hepatic disorders. In: Willard MD, Tvedten H, Turnwald GH . (eds.) Small Animal Clinical Diagnosis by Laboratory Methods. WB Saunders, London 1998; 395.
  • 41. Saganuwan SA, Adelaiye PO. The epidemiology of malaria in university of Agriculture Makurdi Health Centre. Afr J. Clinical Exper Microbiol 2007; 8(3):122-8.
  • 42. Willard MD, Tvedten H, Turnwald GH . Electrolyte and acid-base abnormalities. Small Animal Clinical Diagnosis by Laboratory Methods, with Sanders, London 1989:103-20.
Typ dokumentu
Bibliografia
Identyfikatory
Identyfikator YADDA
bwmeta1.element.agro-384f0853-b4c3-4b26-91fb-9dba1b01c0da
JavaScript jest wyłączony w Twojej przeglądarce internetowej. Włącz go, a następnie odśwież stronę, aby móc w pełni z niej korzystać.