PL EN


Preferencje help
Widoczny [Schowaj] Abstrakt
Liczba wyników

Czasopismo

2011 | 46 | 1 |

Tytuł artykułu

Geophilic dermatophytes and other keratinophilic fungi in the nests of wetland birds

Treść / Zawartość

Warianty tytułu

PL
Dermatofity geofilne oraz inne grzyby keratynofilne w gniazdach ptaków wodno‑błotnych

Języki publikacji

EN

Abstrakty

EN
The frequency and species diversity of keratinophilic fungi in 38 nests of nine species of wetland birds were examined. Nine species of geophilic dermatophytes and 13 Chrysosporium species were recorded. Ch. keratinophilum, which together with its teleomorph (Aphanoascus fulvescens) represented 53% of the keratinolytic mycobiota of the nests, was the most frequently observed species. Chrysosporium tropicum, Trichophyton terrestre and Microsporum gypseum populations were less widespread. The distribution of individual populations was not uniform and depended on physical and chemical properties of the nests (humidity, pH).
PL
W prezentowanej pracy zbadano częstość występowania oraz skład gatunkowy grzybów keratynofilnych w 38 gniazdach 9 gatunków ptaków wodno-błotnych. Gniazda zbierano w latach 2006-2009 na terenie Lubelszczyzny (płd.-wsch. Polska), po opuszczeniu przez ptaki. Posługując się metodą przynęty keratynowej przebadano 390 próbek materiału gniazdowego, uzyskując 348 szczepy keratinomycetes. Obecność grzybów keratynofilnych stwierdzono w 86,8% badanych gniazd. Były one reprezentowane przez 9 gatunków dermatofitów geofilnych oraz 13 gatunków Chrysosporium. 78% wyosobnionych szczepów stanowiły grzyby z grupy Chrysosporium, 22% należało do dermatofitów geofilnych. Gatunkiem dominującym był Ch. keratinophilum, który wraz z teleomorfą (Aphanoascus fulvescens) reprezentował 53% keratynolitycznej mykobioty badanych gniazd. Do mniej licznych ale częstych należały populacje: Ch. tropicum (11,5%), Trichophyton terrestre wraz z teleomorfą (12,5%) oraz Microsporum gypseum włącznie z teleomorfą (7,1%). Wyselekcjonowane populacje reprezentowały głównie grzyby termotolerancyjne, preferujące środowiska o odczynie obojętnym i alkalicznym (Ch. keratinophilum, A. fulvescens, T. terrestre, M. gypseum) oraz o dużej wilgotności (Ch. keratinophilum). Przeprowadzone badania wykazały, że gniazda ptaków wodno-błotnych cechują się wysoką frekwencją takich gatunków grzybów potencjalnie chorobotwórczych dla ptaków, ssaków oraz człowieka jak M. gypseum, Ch. keratinophilum i Aspergillus fumigatus.

Słowa kluczowe

Wydawca

-

Czasopismo

Rocznik

Tom

46

Numer

1

Opis fizyczny

p.83-107,fig.,ref.

Twórcy

  • Mycological Laboratory, Department of Environmental Microbiology, University of Life Sciences in Lublin, Leszczynskiego 7, 20-069 Lublin, Poland
autor
  • Department of Zoology, University of Life Sciences in Lublin, Akademicka 13, 20-950 Lublin, Poland
autor
  • Mycological Laboratory, Department of Environmental Microbiology, University of Life Sciences in Lublin, Leszczynskiego 7, 20-069 Lublin, Poland

Bibliografia

  • Ali-Stayech, Jamous R.M.F. 2000. Keratinophilic fungi and related dermatophytes in polluted soil and water habitats. (In:) R.K.S., Kushwaha, J. Guarro (eds). Biology of dermatophytes and other keratinophilic fungi. Rev. Iber. Micol. 17: 51–59.
  • Böhme H., Ziegler H. 1969. The distribution of geophilic dermatophytes and other keratinophilic fungi in relation to the pH of the soil. Mycophatol. Mycol. Appl. 38: 247–255.
  • Chmel L., Vláčiliková A. 1975. The ecology of keratinophilic fungi at different depths of soil. Sabouraudia 13: 185–191.
  • Chmel L., Hasilíková A., Hrašco J., Vláčiliková A. 1972. The influence of some ecological factors on keratinophilic fungi in the soil. Sabouraudia 10: 26–34.
  • Currah R.S. 1985. Taxonomy of the Onygales: Arthrodermataceae, Gymnoascaceae, Myxotrichaceae and Onygenaceae. Mycotaxon 24: 1–216.
  • Dominik T., Majchrowicz I. 1970. Further contribution to the knowledge of keratinolytic and keratinophilic fungi of the region of Szczecin – keratinolytic and keratinophilic fungi in the excrements of farm animals. Ekol. Pol. S.A. 18: 571–611.
  • Domsch K.H., Gams W., Anderson T.H. 1980. Compendium of Soil Fungi. I. Acad. Press. London.
  • Dvořak J., Otčenašek M. 1969. Mycological Diagnosis of Animal Dermatophytoses, Academia. Praque.
  • Ellis H.B. 1971. Dematiaceous Hyphomycetes. Commonwelth. Mycological Institute Kew Surrey, England.
  • English M.P. 1963. The saprophytic growth of keratinophilic fungi on keratin. Sabouraudia 2: 115–130.
  • English M.P. 1965. The saprophytic growth of non-keratinophilic fungi on keratinized substrate and a comparison with keratinophilic fungi. Trans. Br. Mycol. Soc. 48: 219–235.
  • English M.P. 1969. Destruction of hair by Chrysosporium keratinophilum. Trans. Br. Mycol. Soc. 52: 247– 255.
  • Filipello-Marchisio V. 2000. Keratinophilic fungi: their role in nature and degradation of keratinic substrates. (In:) R. K. S. Kushwaha, J. Guarro (eds). Biology of dermatophytes and other keratinophilic fungi. Rev. Iber. Micol. 17: 86–92.
  • Filipello-Marchisio V., Fusconi A., Querio F.L. 2000. Scopulariopsis brevicaulis: a keratinophilic or a keratinolytic fungus. Mycoses 43: 281–282.
  • Garetta G., Piontelli E. 1975. Isolation of keratinophilic fungi from soil of Pavia Italy. Sabouraudia 13: 33–37.
  • Garetta G., Mongiarotti A.M., Piontelli E. 1992. Keratinophilic fungi isolated from soil of Italian parks in the province of Pavia. Eur. J. Epidemiol. 8: 330–339.
  • Garg A.P., Gandotra S., Mukerji K.G., Pugh G.J.F. 1985. Ecology of keratinophilic fungi. Proc. Indian Acad. Sci. (Plant Sci.) 94: 149–163.
  • Gueho E., Villard J., Guinet R. 1985. A new human case of Anixiopsis stercoraria mycosis: discussion of its taxonomy and pathogenicity. Mycoses 28: 430–436.
  • Hayashi N., Toshitani S. 1983. Human infections with Microsporum gypseum in Japan. Mycoses 26: 337– 345.
  • Hubalek Z. 1974. Fungi associated with free–living birds in Czechoslovakia and Yugoslavia. Acta Sc. Nat. Brno 8 (3): 1–62.
  • Hubalek Z. 1976. Occurrence of keratinolytic fungi in nests of tree sparrow (Passer montanus L.) in relation to the substrate moisture (in Czech). Ces. Mykol. 30: 106–109.
  • Hubalek Z. 2000. Keratinophilic fungi associated with free living mammals and birds (In:) R. K. S. Kushwaha, J. Guarro (eds). Biology of dermatophytes and other keratinophilic fungi. Rev. Iber. Micol. 17: 104–108.
  • Hubalek Z. 2004. An annotated checklist of pathogenic microorganisms associated with migratory birds. J. Wild. Diseas. 40: 639–659.
  • Hubalek Z., Balat F. 1974. The survival of microfungi in the nests of tree sparrow (Passer montagus L.) in the nest-boxes over the winter season. Mycopathologia 54: 517–530.
  • Hubalek Z., Balat F., Touškova I., Vlk T. 1973. Mycoflora of birds’ nests in nest-boxes. Mycopath. Mycol. Appl. 49: 1–12.
  • Korniłłowicz T. 1992. Badania nad mikoflorą zasiedlającą surowe odpady keratynowe w glebie. Acta Mycol. 27: 231–245.
  • Korniłłowicz T. 1993. Występowanie geofilnych grzybów keratynofilnych w osadach dennych jezior o różnej trofii. Acta Mycol. 28: 171–184.
  • Korniłłowicz T. 1994. Methods for determining keratinolytic activity of saprophytic fungi. Acta Mycol. 29: 169–178.
  • Korniłłowicz-Kowalska T. 1997. Studies on the decomposition of keratin wastes by saprotrophic microfungi. I. Criteria for evaluating keratinolytic activity. Acta Mycol. 32: 51–79.
  • Korniłłowicz-Kowalska T. 1999. Studies on decomposition of keratin wastes by saprotrophic microfungi. III. Activity and properties of keratinolytic enzymes. Acta Mycol. 34: 65–78.
  • Korniłłowicz-Kowalska T., Bohacz J. 2002. Some correlations between of occurrence frequency of keratinophilic fungi and selected soil properties. Acta Mycol. 37 (1/2): 101–116.
  • Korniłłowicz-Kowalska T., Wojdyło-Kotwica B. 2008. Onygenales (p.p.); Hyphomycetes: Chrysosporium (p.p.), Microsporum (p.p.), Trichophyton (p.p.) (In:) W. Mułenko, T. Majewski, M. Ruszkiewicz- Michalska (eds). A preliminary checklist of micromycetes in Poland. Biodiversity of Poland.9. W. Szafer Institute of Botany, Polish Academy of Sciences, Kraków.
  • Korniłłowicz-Kowalska T., Kitowski I. 2009. Diversity of fungi in nests and pellets of Montagu’s Harrier (Circus pygargus) from east Poland – importance of chemical and ecological factors. Ecol. Chem. Enngineer. S. 16 (4): 453–471.
  • Kozakiewicz Z., Smith D. 1994. Physiology of Aspergillus (In:) R. F. Atkins, R. F. Sherwood (eds). Biotechnology Handbooks 7. Aspergillus. Plenum Press, New York.
  • Krebs C.J. 1994. Ecology. The Experimental Analysis of Distribution and Abundance, Fourth Edition. Harper Collins, New York, USA
  • Kruszewicz A.G., Pinowski J., Kruszewicz A.H., Mazurkiewicz M., Pawiak R., Małyszko E. 1995. Occurrence of fungi in House Sparrow (Passer domesticus) and Tree Sparrow (Passer montanus) nestlings. (In:) J. Pinowski, B.P. Kavanagh, B. Pinowska (eds). Nestling mortality due to microorganism and toxic substances: synthesis. PWN Polish Scientific Publishers, Warszawa, pp. 283–290.
  • Kunert J. 1973. Keratin decomposition by dermatophytes. I. Sulfite production as possible way of substrate denaturation. Zeitschrift für Allg. Mikrobiol. 13: 489–498.
  • Kunert J. 1976. Keratin decomposition by dermatophytes. II. Presence of S-sulfocysteine and cysteic acid in soluble decomposition products. Zeitschrift für Allg. Mikrobiol. 16: 97–105.
  • Kunert J. 1989. Biochemical mechanism of keratin degradation by the actinomycetes Streptomyces fradiae and the fungus Microsporum gypseum: A comparison. J. Basic. Microbiol. 29: 597–604.
  • Kunert J. 2000. Physiology of keratinophilic fungi. (In:) R. K. S. Kushwaha, J. Guarro (eds). Biology of dermatophytes and other keratinophilic fungi. Rev. Iber. Micol. 17: 77–85.
  • Kushwaha R. K .S. 2000. The genus Chrysosporium, its physiology and biotechnological potential (In:) R. K. S. Kushwaha, J. Guarro (eds). Biology of dermatophytes and other keratinophilic fungiRev. Iber. Micol. 17: 66–76.
  • Mercer E. H. 1958. The fine structure keratin. Textile Research J. 28: 860–866.
  • Mikaelian J., Gauthier F., Fitzgerald G., Higgins R., Clavean R., Martinean D. 1997. Primary causes of death in wild birds of Quebec. Med. Vet. Quebec. 27: 94–102.
  • Montovani A., Morganti D., Battelli G., Montovani A.P., Poglayeni G., Tampieri M.P., Vecchi G. 1982. The role of wild animals in the ecology of dermatophytes and related fungi. Folia Parasitol. 29: 79–84.
  • Nooruddin N., Singh B. 1987. Prevalance of dermatophytes and keratinophilic fungi in soil and dried dung of the premises of buffalo sheds. Mycoses 30: 589–593.
  • Offidani A., Simoncini C., Arzeni D., Cellini A., Amerio P., Scalise G. 1998. Tinea capitis due to Microsporum gypseum in an adult. Mycoses 41: 239–241.
  • Oorschot van C.A.N. 1980. A revision of Chrysosporium and allied genera. Studies Mycol. 20. 89 pp.
  • Otčenašek M., Hudec K., Hubalek Z., Dvořak J. 1967. Keratinophilic fungi from the nests of birds in Czechoslovakia. Sabouraudia 5: 350–354.
  • Peberdy J.F. 1987. Penicillium and Acremonium. Biotechnology Handbooks. v.1 Plenum Press. New York.
  • Pinowski J., Pinowska B., Haman A. 1999. Fungi in birds’ plumage and nests. Intern. Stud. Sparrows 26: 3–28.
  • Pugh G.J.E. 1965. Cellulolytic and keratinophilic fungi recorded on birds. Sabouraudia 4: 85–91.
  • Pugh G.J.E. 1966. Associations between birds, nests, their pH and keratinophilic fungi. Sabouraudia 5: 43–53.
  • Pugh G.J.E., Evans M.D. 1970. Keratinophilic fungi associated with birds. I. Fungi isolated from feathers nests and soil. Trans. Br. Mycol. Soc. 54: 233–240.
  • Rees R.G. 1967. Keratinophilic fungi from Queensland I. Isolation from animal hair and scales. Sabouraudia 5: 165–172.
  • Rippon J.W. 1982. Medical Mycology. The pathogenic fungi and the pathogenic Actinomycetes. Saunders W.B. Company Philadelphia.
  • Santos R.M.D.B., Firmino A.P., de Sa C.M., Felix C.R. 1996. Keratinolytic activity of Aspergillus fumigatus Fresenius. Curr. Microbiol. 33: 364–370.
  • Shin T.K., Lee H.J., Lee D.S., Kwon O.D., Yang K.C., Kim O.N., Kim W.T. 1996. Aspergillus fumigatus infection in wild goose. Korean J. Vet. Clin. Med. 13: 195–197.
  • Sur B., Ghosh G.R. 1980. Keratinophilic fungi from Orissa, India. II. Isolation from feathers of wild birds and domestic fowls. Sabouraudia 18: 275–280.
  • Takatori K., Hasegawa A. 1981. Isolation of keratinophilic and non-keratinophilic fungi from birds’ nests. Trans. Mycol. Soc. (Japan) 22: 347–352.
  • Trojan P. 1975. Ekologia ogólna. Wyd. PWN, Warszawa.
  • Ulfig K. 1986. Dermatofity w osadach dennych i osadach ściekowych. Post. Dermatol. 3: 385–389.
  • Ulfig K. 1987/1990. Grzyby keratynofilne w osadach dennych wód powierzchniowych. Acta Mycol. 23: 3–11.
  • Ulfig K. 2000. The occurrence of keratinolytic fungi in waste and waste-contaminated habitats. (In:) R.K.S., Kushwaha, J. Guarro (eds). Biology of dermatophytes and other keratinophilic fungi. Rev. Iber. Micol. 17: 44–50.
  • Ulfig K., Lukasik W., Plaza G. 1996. Further statistical evaluation of the occurrence of keratinolytic fungi in dam sediments. Intern. J. Environ. Health Res. 6: 39–47.
  • Ulfig K., Ulfig A. 1990. Keratinophilic fungi in bottom sediments of surface waters. J. Med. Vet. Mycol. 28: 419–422.

Uwagi

PL
Rekord w opracowaniu

Typ dokumentu

Bibliografia

Identyfikatory

Identyfikator YADDA

bwmeta1.element.agro-321bbcb0-88cc-4df8-a536-287a3ccc4474
JavaScript jest wyłączony w Twojej przeglądarce internetowej. Włącz go, a następnie odśwież stronę, aby móc w pełni z niej korzystać.