The effect of soil type and soil additives on the selected growth parameters and yield of flowerheads of Calendula officinalis L.

• Autorzy: Ratajczak K. , Sulewska H. , Szymanska G. , Wolna-Maruwka A. , Faligowska A.

Warianty tytułu

PL

Wpływ rodzaju podłoża i dodatków glebowych na wybrane parametry wzrostu i plon koszyczków Calendula officinalis L.

• Języki publikacji: EN

Abstrakty

EN

Introduction: Soil additives, which usually contain nutrients and microorganism, can improve soil conditions for plants. There are still few papers dedicated to the application of soil additives in herb plants, especially in calendula. Objective: The aim of the study was to determine the effect of selected soil additives on growth and yield of calendula. Methods: In a pot experiment first order factor was a type of soil: mineral soil with straw, mineral soil and organic soil. The second order factor was soil additive: control, UG Max, EM1 and PRP SOL. Results: The application of UG Max and PRP SOL increased the yield of dry matter of flowerheads by respectively 48.1% and 46.3% in comparison with the control group. Conclusions: UG Max and PRP SOL proved to be the most useful soil additive for calendula growing. The effect of UG Max and PRP SOL was particularly good on organic soil.

PL

Wstęp: Dodatki glebowe, zwykle zawierające składniki mineralne i mikroorganizmy, mogą polepszać warunki glebowe dla roślin. Nadal jednak mało jest prac poświęconych zastosowaniu tego typu dodatków w roślinach zielarskich, szczególnie nagietku lekarskim. Cel: Celem badań była ocena wpływu wybranych dodatków glebowych na wzrost i plon nagietka lekarskiego. Metoda: W doświadczeniu wazonowym czynnikiem I rzędu był rodzaj podłoża: gleba mineralna z dodatkiem słomy, gleba mineralna i gleba organiczna. Czynnikiem II rzędu było stosowanie dodatków glebowych: kontrola, UG Max, EM1 i PRP SOL. Wyniki: Zastosowanie UG Max i PRP SOL pozwoliło na uzyskanie przyrostu plonu suchej masy koszyczków odpowiednio o 48,1% i 46,3% w porównaniu z obiektem kontrolnym. Wnioski: Spośród badanych dodatków glebowych, UG Max i PRP SOL okazały się najbardziej przydatne w uprawie nagietka. Szczególnie dobre działanie UG Max i PRP SOL uzyskano na podłożu organicznym.

Słowa kluczowe

EN

pot marigold; Calendula officinalis; flower head; growth parameter; yield parameter; soil type; soil additive; mineral soil; organic soil

• Wydawca: -
• Czasopismo: Herba Polonica
• Rocznik: 2016
• Tom: 62
• Numer: 2
• Opis fizyczny: p.17-30,fig.,ref.

Twórcy

autor

Ratajczak K.

• Department of Agronomy, Poznan University of Life Sciences, Dojazd 11, 60-632 Poznan, Poland

autor

Sulewska H.

• Department of Agronomy, Poznan University of Life Sciences, Dojazd 11, 60-632 Poznan, Poland

autor

Szymanska G.

• Department of Agronomy, Poznan University of Life Sciences, Dojazd 11, 60-632 Poznan, Poland

autor

Wolna-Maruwka A.

• Department of General and Environmental Microbiology, Poznan University of Life Sciences, Dojazd 11, 60-632 Poznan, Poland

autor

Faligowska A.

• Department of Agronomy, Poznan University of Life Sciences, Dojazd 11, 60-632 Poznan, Poland

Bibliografia

• 1. Macht DI. Calendula or marigold in medical history and in Shakespeare. Bulletin of the history of medicine 1955; 29(6):491-502.
• 2. Mohammad SM, Kashani HH. Pot marigold (Calendula officinalis) medicinal usage and cultivation. Sci Res Essays 2012; 7(14):1468-1472.
• 3. Kalvatchev Z, Walder R, Garzaro D. Anti-HIV activity of extracts from Calendula officinalis flowers. Biomed Pharmacother 1997; 51(4):176-180.
• 4. Matić IZ, Juranić Z, Šavikin K, Zdunić G, Nadvinski N, Godevac D. Chamomile and marigold tea: chemical characterization and evaluation of anticancer activity. Phytother Res 2013; 27(6):852-858. doi: http://dx.doi.org/10.1002/ptr.4807
• 5. Preethi KC, Kuttan G, Kuttan R. Anti-inflammatory activity of flower extract of Calendula officinalis Linn. and its possible mechanism of action. Indian J Exp Biol 2009; 47(2):113-120.
• 6. Rahmani N, Daneshian J, Farahani HA, Taherkhani T. Evaluation of nitrogenous fertilizer influence on oil variations of Calendula (Calendula officinalis L.) under drought stress conditions. J Med Plants Res 2011;
• 5(5):696-701. http://www.academicjournals.org/JMPR
• 7. Król B. Yield and the chemical composition of flower heads of pot marigold (Calendula officinalis L. cv. Orange King) depending on nitrogen fertilization. Acta Sci Pol Hortorum Cultus 2011; 10(2): 235-243.
• 8. Khalid KA, Teixeira da Silva JA. Yield, essential oil and pigment content of Calendula officinalis L. flower heads cultivated under salt stress conditions. Sci Hortic-Amsterdam 2010; 126(2):297-305. doi: http://dx.doi.org/10.1016/j.scienta.2010.07.023
• 9. Bielski S, Szwejkowska B. Effect of fertilization on the development and yields of pot marigold (Calendula officinalis L.) Herba Pol 2013; 59(2):6-12. doi: http://dx.doi.org/10.2478/hepo-2013-0007
• 10. Crnobarac J, Jaćimović G, Marinković B, Latković D. The effect of cultivar and row distance on yield and quality of pot marigold. Acta Hort 2011; 925:141-149.
• 11. Sulewska H, Śmiatacz K, Sitek A, Szymańska G, Panasiewicz K. Evaluation of yielding of winter oilseed rape using PRP SOL technology. J Res Appl Agric Eng 2013; 58(4):167-173.
• 12. Krzywy-Gawrońska E, Wołoszyk Cz. Effect of compost produced by GWDA method and PRP-SOL on the yield of winter wheat and soils properties. Fertilizer and Fertilization 2011; 43:29-38.
• 13. Javaid A, Bajwa R. Field evaluation of effective microorganisms (EM) application for growth, nodulation, and nutrition of mung bean. Turk J Agric For 2011; 35: 443-452. doi: http://dx.doi.org/10.3906/tar-1001-599
• 14. Hussain T, Anjum AD, Tahir J. Technology of beneficial microorganisms. Nature Farming Environ 2002; 3:1-14.
• 15. Dąbrowski TZ, Hurej M, Nowacki J, Łykowski W, Borkowska M. Enhancing biodiversity of agrocenosis by planting selected flowering plant species. Prog Plant Prot 2013; 53(4):844-849.
• 16. FAO. Guidelines for soil description. Fourth edition. Food and Agriculture Organization of the Unites Nations 2006; 1-97.
• 17. Müller J, Heindl A. Drying of medicinal plants. In Bogers, RJ Craker, LE Lange, eds. Medicinal and Aromatic Plants – agricultural, commercial, ecological, legal, pharmacological and social aspects. Springer 2006: 237-252.
• 18. Truba M, Jankowski K, Sosnowski J. The plants reaction on biological preparations treatment. Ochr Śr Zas Nat 2012; 53:41-52.
• 19. Sulewska H, Koziara W, Szymańska G, Niewiadomska A, Majchrzak L, Panasiewicz K. Patatoes reaction on PRP SOL fertilization. J Res Appl Agric Eng 2012; 57(4):116-121.
• 20. Kozłowski J. Jak tłumaczyć zmiany zawartości substancji czynnych w roślinach i surowcach zielarskich. Cz. VI, Wiad Zielar 1986; 10.
• 21. Moreira PA, Marquechi ME, Vieira MC, Novelino JO, Gonçalves MC, Robaina AD. Desenvolvimento vegetativo eteor foliar de macronutrientes da calêndula (Calendula officinalis L.) adubada com nitrogênio e fósforo. RevBras Pl Med 2005; 8:18-23.
• 22. Paim LF, Fontana M, Winckler M, Grando AA, Muneron TL, Roman WA. Assessment of plant development, morphology and flavonoid content in different cultivation treatments of Calendula officinalis L., Asteraceae. Brazilian J Pharmac 2010; 20(6):974-980. doi: http://dx.doi.org/10.1590/S0102-695X2010005000050
• 23. Taiz L, Zeiger E. Plant Physiology. Benjamin/Cummings 1991.
• 24. Fernandes EFA, Melonib F, Borellac JC, Lopesa NP. Effect of fertilization and harvest period on polar metabolites of Calendula officinalis. Rev Bras Farmacogn 2013; 23:731-735. doi: http://dx.doi.org/10.1590/S0102-695X2013000500003
• 25. Hussein MM, Sakr RA, Badr LA, Mashat KMAL. Effect of some fertilizers on botanical and chemical characteristics of pot marigold plant (Calendula officinalis L.). J Hortic Sci Ornament Plants 2011; 3: 220-231.
• 26. Kumar A, Singh AK. Effect of spacing and nitrogen levels on vegetative growth, flowering behaviour and yield of calendula (Calendula officinalis L.). Plant Arch 2011; 11:941-944.
• 27. Sulewska H, Szymańska G, Pecio A. Ocena efektów stosowania użyźniacza glebowego UG Max w uprawie kukurydzy na ziarno i kiszonkę. J Res Appl Agric Eng 2009; 55(4):120-125.
• 28. Acosta da Luz L, Ferrada CR, Govin ES. Instrutivo técnico de Calendula officinalis. Rev Cubana Plant Med 2001; 23:23-27.
• 29. Sedrez dos Reis M, Marriot A. Diversidade natural easpectos agronômicos de plantas medicinais. In: Simões CMO, Schenkel EP, Gosmann G, Mello JCP, Mentz LA, Petrovick PR, eds. Farmacognosia: da planta ao medicamento. Porto Alegre/Florianópolis: UFRGS/UFSV, 2000.
• 30. Papadopoulos AP. Growing greenhouse seedless cucumbers in soil and soilless media. Ottawa. Agriculture and Agri-Food Canada, 1994.
• 31. Egle K, Manske G, Römer W, Vlek PLG. Improved phosphorus efficiency of three new wheat genotypes from CIMMYT in comparison with an older Mexican variety. J Plant Nutr Soil Sc 1999; 162: 353-358.
• 32. Besmer, YL and Koide, RT. Effect of mycorrhizal colonization and phosphorus on ethylene production by snapdragon (Antirrhinum majus L.) flowers. Mycorrhiza 1999; 9:161-166.
• 33. Feller IC. Effects of nutrient enrichment on growth and herbivory of Dwarf Red Mangrove (Rhizophora Mangle) Ecol Monogr 1995; 65:477-505.
• 34. Ma Q, Longnecker N, Atkins C. Varying phosphorus supply and development, growth and seed yield in narrowleafed lupin. Plant Soil. 2001; 239:79-85.
• 35. Hüttl RF, Fischer TH. Ekspertyza dotycząca działania produktu „PRP Boden” pode PRP na uprawy polowe. Politechnika Brandenburska 2004., Cottbus: 1-7.
• 36. Gaskell M, R Smith. Nitrogen sources for organic vegetable crops. Hort Technol 2007; 17:431-441.
• 37. Siebielec E, Stuczyński J. Ocena nawozu Euragri Sol firmy PRP pod kątem jego wpływu na kształtowanie żyzności i produktywności gleb. Instytut Uprawy i Gleboznawstwa, Zakład Gleboznawstwa i Ochrony Gruntów 2004; 16.
• 38. Stewart CL, Lovett Doust L. Effect of phosphorus treatment on growth and yield in the medicinal herb Calendula officinalis L. Standard Pacific under hydroponic cultivation. Can J Plant Sci 2003; 83(3):1-17.
• 39. Henriksen TM, Breland TA. Evaluation of criteria for describing crop residue degradability in a model of carbon and nitrogen turnover in soil. Soil Biol Biochem 1999; 31:1135-1149.
• 40. Anderson, Victoria M. Calendula officinalis growth and production of secondary compounds in greenhouse and soil-based herbal organic production systems. Theses and Dissertations – Plant and Soil Sciences 2013; 26. http://uknowledge.uky.edu/pss_etds/26
• 41. Chauhan A, Kumar V. Effect of graded levels of nitrogen and vam on growth and flowering in Calendula (Calendula officinalis Linn.). J Ornament Horticult 2007; 10(1):61-63.
• 42. Sulewska H, Ptaszyńska G. Reakcja kukurydzy uprawianej na ziarno na stosowanie preparatów mikrobiologicznych. Pam Puł 2005; 40:271-285.
• 43. Tyburski J, Łachacz A. Efektywność środków ulepszających gleby ciężkie w gospodarstwach ekologicznych. Sprawozdanie z badań podstawowych na rzecz rolnictwa ekologicznego w zakresie upraw polowych metodami ekologicznymi, 2009. http//www.uwm.edu.pl/wksir/systemy/raporty
• 44. Kucharski J, Jastrzębska E. Rola efektywnych mikroorganizmów w kształtowaniu właściwości mikrobiologicznych gleby. Inż Ekol 2005; 12:295-296.
• 45. Kołodziejczyk M. Effectiveness of nitrogen fertilization and application of microbial preparations in patato cultivation. Turk J Agric For 2014; 38:299-310. doi: http://dx.doi.org/10.3906/tar-1305-105
• 46. Sulewska H, Koziara W, Panasiewicz K, Niewiadomska A. Reaction of winter wheat and spring barley on PRP SOL fertilization. J Res Appl Agric Eng 2011; 56(4):129-133.
• 47. Martyniuk S, J Księżak. Ocena pseudomikrobiologicznych biopreparatów stosowanych w uprawie roślin. Polish J Agron 2011; 6:27-33.
• 48. Treadwell DD, Hochmuth GJ, Hochmuth RC, Simonne EH, Davis LL, Laughlin WL et al. Nutrient management in organic greenhouse herb production: Where are we now? HortTechnol 2007; 17:461-466.
• 49. Bi G, Evans W B. Effects of organic and inorganic fertilizers on marigold growth and flowering. Hort Scie 2010; 45(9):1373-1377.

Identyfikatory

DOI

10.1515/hepo-2016-0008