Zastosowanie nowych antybiotyków w konserwacji nasienia knura w stanie płynnym

• Autorzy: Bryla M. , Trzcinska M.

Warianty tytułu

EN

The use of new antibiotics for preservation of boar semen in liquid form

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Celem pracy było przygotowanie modyfikacji rozcieńczalnika, stosowanego do przechowywania nasienia knura, zawierającego antybiotyki: polimyksynę B, florfenikol i daptomycynę. Badania prowadzono w celu uzyskania rozcieńczalnika umożliwiającego utrzymanie wysokiej wartości biologicznej nasienia konserwowanego w stanie płynnym przez okres sześciu dni. Nasienie pochodzące od 5 knurów (30 ejakulatów) rozcieńczano w rozcieńczalniku kontrolnym (Biosolwens Plus) oraz w rozcieńczalnikach R1, R2 i R3, zawierających odpowiednio: polimyksynę B, florfenikol i daptomycynę. Ocenę jakości przechowywanego nasienia przeprowadzono za pomocą systemu CASA, oceniając całkowity i postępowy ruch plemników. Na podstawie zmian apoptotycznych określono odsetek plemników żywych (YO-PRO-1-/PI-), wykazujących zmiany apoptotyczne (YO-PRO-1+/PI-), z wysokim potencjałem mitochondrialnym (JC-1+) i wykazujących fragmentację DNA (TUNEL+). Wykazano, że rozcieńczalnik uzupełniony 200 μg florfenikolu zapewnia najwyższą jakość nasienia knura podczas 6-dniowego przechowywania.

EN

The aim of this study was to prepare a modification of the diluent used for liquid storage of boar semen, containing the antibiotics polymyxin B, florfenicol or daptomycin. The study was conducted in order to obtain a diluent enabling semen preserved in liquid form for six days to retain its high biological value. Semen from six boars (30 ejaculates) was diluted in a control extender (Biosolwens Plus) and extenders R1, R2 and R3 containing polymyxin B, florfenicol and daptomycin, respectively. The quality of the stored semen was evaluated on the basis of sperm motility, using a CASA system (TM: total motility; PM: progressive motility) and on the percentage of viable sperm (YO-PRO-1-/PI-), sperm with apoptotic-like changes (YO-PRO-1+/PI-), sperm with mitochondrial activity (JC-1+) and sperm with DNA fragmentation (TUNEL+). Our research showed that supplementation with 200 μg florfenicol ensures the highest quality of boar semen during 6-day storage

Słowa kluczowe

PL

rozrod zwierzat; trzoda chlewna; knury; nasienie; konserwowanie nasienia; rozcienczalniki; antybiotyki; polimyksyna B; florfenikol; daptomycyna

• Wydawca: -
• Czasopismo: Roczniki Naukowe Polskiego Towarzystwa Zootechnicznego
• Rocznik: 2015
• Tom: 11
• Numer: 3
• Opis fizyczny: s.47-53,tab.,bibliogr.

Twórcy

autor

Bryla M.

• Dział Biotechnologii Rozrodu Zwierząt, Instytut Zootechniki - Państwowy Instytut Badawczy, ul.Krakowska 1, 32-083 Balice k.Krakowa

autor

Trzcinska M.

• Dział Biotechnologii Rozrodu Zwierząt, Instytut Zootechniki - Państwowy Instytut Badawczy, ul.Krakowska 1, 32-083 Balice k.Krakowa

Bibliografia

• 1. ALAVI-SHOUSHTARI S.,M., AHMADI M., SHAHVARPOUR S., KOLAHIAN S., 2007 – Effects of tiamulin, neomycin, tetracycline, fluorophenicol, penicillin G, Linco-Spectin, erythromycin and oxytetracycline on controlling bacterial contaminations of the river buffalo (Buballus bubalis) semen. Pakistan Journal of Biological Science 10, 3200-3204.
• 2. ALTHOUSE G.C., LU K.G., 2005 – Bacteriospermia in extended porcine semen. Theriogenology 63, 573-584.
• 3. BOE-HANSEN G.B., ERSBØLL A.K., GREVE T., CHRISTENSEN P., 2005 – Increasing storage time of extended boar semen reduces sperm DNA integrity. Theriogenology 63, 2006-2019.
• 4. DE AMBROGI M., BALLESTER J., SARAVIA F., CABALLERO I., JOHANNISSON A., WALLGREN M., ANDERSSON M., RODRIGUEZ-MARTINEZ H., 2006 – Effect of storage in short-and long-term commercial semen extenders on the motility, plasma membrane and chromatin integrity of boar spermatozoa. International Journal of Andrology 29, 543-552
• 5. DZIEKOŃSKA A., FRASER L., MAJEWSKA A., LECEWICZ M., ZASIADCZYK Ł., KORDAN W., 2013 – Effect of commercial long-term extenders on metabolic activity and membrane integrity of boar spermatozoa stored at 17°C. Polish Journal of Veterinary Science 16, 517-525.
• 6. FRASER L., STRZEŻEK I., 2004 – The use of comet assay to assess DNA integrity of boar spermatozoa following liquid preservation at 5 degrees C and 16 degrees C. Folia Histochemica et Cytobiologica 42, 49-55.
• 7. KOMMISRUD E., PAULENZ H., SEHESTED E., GREVLE I.S., 2002 – Influence of boar and semen parameters on motility and acrosome integrity in liquid boar semen stored for five days. Acta Veterinaria Scandinavica 43, 49-55.
• 8. MAROTO MARTÍN L.O., CRUZ MUÑOZ E., DE CUPERE F., VAN DRIESSCHE E., ECHEMENDIA-BLANCO D., MACHADO RODRÍGUEZ J.M., BEECKMANS S., 2010 – Bacterial contamination of boar semen affects the litter size. Animal Reproduction Science 120, 95-104.
• 9. OKAZAKI T., MIHARA T., FUJITA Y., YOSHIDA S., TESHIMA H., SHIMADA M., 2010 – Polymyxin B neutralizes bacteria-released endotoxin and improves the quality of boar sperm during liquid storage and cryopreservation. Theriogenology 74, 1691-1700.
• 10. TRZCIŃSKA M., BRYŁA M., SMORĄG Z., 2008 – Effect of liquid storage on membrane integrity and mitochondrial activity: a new diagnostic method of evaluating boar sperm quality. Journal of Animal and Feed Sciences 17, 372-380.
• 11. TRZCIŃSKA M., BRYŁA M., SMORĄG Z., 2011 – Apoptotic-like changes in the spermatozoa of fresh and stored boar semen and the quality of embryos produced in vivo. Animal Reproduction Science 124, 90-97.
• 12. WYSOCKI P., ŁYJAK A., KORDAN W., 2013 – Analysis of proapoptotic changes in boar spermatozoa stored at 16°C in different short-term semen extenders. Bulletin of Veterinary Institute in Pulawy 57, 425-428.