Dynamika tworzenia biofilmu Listeria monocytogenes na powierzchni polipropylenu w obecności drobnoustojów natywnych środowiska produkcji żywności

• Autorzy: Krolasik J. , Szosland-Faltyn A.

Warianty tytułu

EN

Dynamics of Listeria monocytogenes biofilm formation on polypropylene surface in the presence of native microorganisms isolated food industry environment

• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Listeria monocytogenes to jeden z najczęściej izolowanych drobnoustrojów chorobotwórczych, zarówno z produktów spożywczych, jak i ze środowiska produkcyjnego. Liczne szczepy należące do tego gatunku są stale obecne w środowisku zakładów przetwórstwa żywności, co może wynikać z ich zdolności do tworzenia biofilmów. Celem badań była ocena dynamiki formowania biofilmu na powierzchni polipropylenu przez dwa patogenne szczepy Listeria monocytogenes w obecności drobnoustrojów Micrococcus luteus i Pseudomonas putida. Adhezja komórek Listeria monocytogenes do powierzchni polipropylenu zachodziła szybciej i efektywniej w obecności drobnoustrojów natywnych środowiska produkcji żywności niż w czystej hodowli. Liczebność poszczególnych drobnoustrojów w biofilmach mieszanych była zmienna w czasie. Przeprowadzone badania dowodzą złożoności mechanizmów oddziaływań międzygatunkowych zachodzących w czasie tworzenia i funkcjonowania biofilmów, a ich dokładne poznanie jest konieczne do opracowania strategii skutecznego zwalczania tych struktur.

EN

Listeria monocytogenes is one of the most frequently isolated pathogens from the food products and the production environment. Many strains belonging to this species are always present in the environment of food processing plants, which may result from their ability to form biofilms. The aim of this study was to assess the dynamics of the biofilm formation on the polypropylene surface by two pathogenic Listeria monocytogenes strains in the presence of microorganisms isolated from the food contact surfaces: Micrococcus luteus and Pseudomonas putida. Listeria monocytogenes cells adhesion to the polypropylene surface occurred faster and more efficiently in the presence of native microorganisms from food processing environment, than in pure culture. The number of individual microorganisms in mixed biofilms was variable in time. The study showed that mechanisms of interspecies interactions occurring during the biofilms formation and functioning are very complex and their detailed knowledge is necessary to develop a strategy to effective destroing these structures.

Słowa kluczowe

PL

Listeria monocytogenes; biofilmy bakteryjne; polipropylen; mikroorganizmy; produkcja zywnosci; liczebnosc mikroorganizmow

• Wydawca: -
• Czasopismo: Postępy Nauki i Technologii Przemysłu Rolno-Spożywczego
• Rocznik: 2015
• Tom: 70
• Numer: 2
• Opis fizyczny: s.53-65,rys.,bibliogr.

Twórcy

autor

Krolasik J.

• Zakład Jakości Żywności, Instytut Biotechnologii Przemysłu Rolno-Spożywczego im.Wacława Dąbrowskiego, Al.J.Piłsudskiego 84, 92-202 Łódź

autor

Szosland-Faltyn A.

• Zakład Jakości Żywności, Instytut Biotechnologii Przemysłu Rolno-Spożywczego im.Wacława Dąbrowskiego, Al.J.Piłsudskiego 84, 92-202 Łódź

Bibliografia

• 1. Amalaradjou M. A. R., Norris C. E., Venkitanarayanan K. (2009). Effect of octenidine hydrochloride on planctonic cells and biofilms of Listeria monocytogenes. Appl. Environ. Microbiol., 75 (12), 4089-4092.
• 2. Ayebah B., Hung Y., Frank J. F. (2005). Enhancing the bactericidal effect of electrolyzed water on Listeria monocytogenes biofilms formed on stainless steel. J. Food Prot., 68 (7), 1375-1380.
• 3. Baker M. G., Lalonde S. V., Konhauser K. O., Foght J. M. (2010). Role of extracellular polymeric substances in the surface chemical reactivity of Hymenobacter aerophilus, a psychrotolerant bacterium. Appl. Environ. Microbiol., 76 (1), 102-109.
• 4. Berthold A. (2007). Biofilm w przemyśle spożywczych. Post. Techn. Przetw. Spoż., 1, 60-66.
• 5. Bremer P. J., Monk J., Osborne C. M. (2001). Survival of Listeria monocytogenes attached to stainless steel surfaces in the presence or absence of Flavobacterium spp. J. Food Prot., 64, 1369-1376.
• 6. Buchanan R. L., Bagi L. K. (1999). Microbial competition: Effect of Pseudomonas fluorescens on the growth of Listeria monocytogenes. Food Microbiol., 16, 523-529.
• 7. Carpentier B., Chassaing D. (2004). Interactions in biofilms between Listeria monocytogenes and resident microorganisms from food industry premises. Int. J. Food. Microbiol., 97 (2), 111-122.
• 8. Chmielewski R. A. N., Frank J. F. (2003). Biofilm formation and control in food processing facilities. Com. Rev. F. Sc. F. Saf., 2, 22-32.
• 9. Costerton J. W. (1999). The role of bacterial exopolysaccharides in nature and disease. J. Int. Microbiol. Biotechnol., 22, 551-563.
• 10. Costerton J. W., Lewandowski Z., Caldwell D. E., Korber D. R., Lappin-Scott H. M. (1995). Microbial biofilms. Ann. Rev. Microbiol., 41, 711-745.
• 11. Czaczyk K. (2004). Czynniki warunkujące adhezję drobnoustrojów do powierzchni abiotycznych. Post. Mikrobiol., 43, 267-283.
• 12. Czaczyk K., Wojciechowska K. (2003). Tworzenie biofilmów bakteryjnych – istota zjawiska i mechanizmy oddziaływań. Biotechnologia, 3 (62), 180-192.
• 13. Del Campo J., Carlin F., Nguyen-The C. (2001). Effects of epiphytic Enterobacteriaceae and Pseudomonas on the growth of Listeria monocytogenes in model media. J. Food Prot., 64 (5), 721-724.
• 14. Dwardzińska W., Dworecka-Kaszak B. (2014). Biofilm bakteryjny płytki nazębnej i jego znaczenie wchorobach jamy ustnej psów i kotów. Życie Wet. 89 (3), 216-221.
• 15. Karunakaran E., Mukherjee J., Ramalingam B., Biggs C. A. (2011). ”Biofilmology”: a multidisciplinary review of the study of microbial biofilms. Appl. Microbiol. Biotechnol., 90, 1869-1881.
• 16. Kołwzan B. (2011). Analiza zjawiska biofilmu – warunki jego powstawania i funkcjonowania. Ochr. Środ., 33 (4), 1-14.
• 17. Koo O-K., Eggleton M., O`Brian C. A., Crandall P. G., Ricke S. C. (2012). Antimicrobial activity of lacid acid bacteria against Listeria monocytogenes on frankfurters formulated with and without lactate/diacetate. Meat Sci., 92, 533-537.
• 18. Myszka K., Czaczyk K. (2007). Metody usuwania biofilmów bakteryjnych z powierzchni stałych. Przem. Spoż., 2, 18-21.
• 19. Nikolaev Y. A., Plakunov V. K. (2007). Biofilm – “city of microbes” or an analogue of multicellular organisms? Microbiology, 76 (2), 125-138.
• 20. Olszewska M., Łaniewska-Trokenheim Ł. (2011). Badanie stanu „niehodowalności” komórek bakterii fermentacji mlekowej w niesprzyjających warunkach rozwoju. Med. Wet., 67 (2), 105-109.
• 21. Pasich E., Walczewska M., Pasich A., Marcinkiewicz J. (2013) Mechanizm i czynniki ryzyka powstawania BIOFILMU BAKTERYJNEGO JAMY USTNEJ. Pst. Hig. Med. Dośw. 67 736-741.
• 22. Ploux L., Beckendorff S., Nardin M., Neunlist S. (2007). Quantitative and morphological analysis of biofilm formation on self-assembled monolayers. Colloids and Surfaces B., 57, 174-181.
• 23. Todhanakasem T. (2013). Microbial biofilm in the industry. Afr. J. Microbiol. Res., 7 (17), 1625-1634.
• 24. Trafny E. A. (2012a). Jak zdobyć i wykorzystać wiedzę o wielogatunkowych biofilmach. Post. Mikrobiol., 51 (3), 205-211.
• 25. Trafny E. A. (2012b). Wzajemne oddziaływania drobnoustrojów w biofilmach wielogatunkowych. Forum Zakażeń, 3 (1), 13-16.
• 26. Van der Veen S., Abee T. (2011). Mixed species biofilms of Listeria monocytogenes and Lactobacillus plantarum show enhanced resistance to benzalkonium chloride and paracetic acid. Int. J. Food Microbiol., 144, 421-431.
• 27. Zottola E. A., Sasahara K. C. (1994). Microbial biofilms in the food processing industry – should they be a koncern? Int. J. Food Microbiol., 23, 125-148.