Efektywność rozmnażania in vitro zwartnicy chmiela (Hippeastrum x chmielii CHM.) z eksplantatów pędowych i łuskowych

• Autorzy: Witomska M. , Latkowska M.
• Języki publikacji: PL

Abstrakty

PL

Material inicjalny umieszczono na pożywce MS bez regulatorów wzrostu; z dodatkiem 2,0 mg BA·dm⁻³ + 0,2 mg NAA·dm⁻³ lub 2,0 mg 2iP·dm⁻³ + 0,2 mg NAA·dm⁻³. Tylko 12-24% eksplantatów pędowych formowało cebulki bez egzogennych regulatorów wzrostu, a w ich obecności cebulki różnicowały się na prawie wszystkich eksplantatach (92-100%). Na eksplantatach łuskowych cebulki formowały się w 100%, niezależnie od obecności regulatorów wzrostu w pożywce. Średnio uzyskano 0,6-0,9 małych cebulek (o średnicy poniżej 2 mm) z eksplantatu pędowego na pożywce bez regulatorów wzrostu i aż 14-16 cebulek średniej wielkości (o średnicy 2,1-4 mm) w obecności obydwu kombinacji regulatorów wzrostu. Z eksplantatów dwułuskowych uzyskiwano około 2 dużych cebulek (o średnicy 4,1-6,0 mm), niezależnie od obecności regulatorów wzrostu.

EN

Initial plant material was cultured on MS medium without growth regulators, supplemented with 2.0 mg BA·dm⁻³ + 0.2 mg NAA·dm⁻³ or 2.0 mg 2iP·dm⁻³ + 0.2 mg NAA·dm⁻³. Only 12-24% of shoot explants formed bulblets in the absence of exogenous growth regulators, whereas in their presence almost all explants produced bulblets (92-100%). Scale explants regenerated bulblets in 100%, regardless of the presence of growth regulators in the medium. On the average, 0.6-0.9 small bulblets (diameter: less than 2 mm) were obtained from a shoot explant in the medium without growth regulators and 14-16 bulblets medium sized (diameter: 2.1-4 mm) in the presence of both growth regulator combinations. Approximately 2 big bulblets (diameter: 4.1-6.0 mm) were obtained from twin scale explants in all medium types.

• Wydawca: -
• Czasopismo: Zeszyty Problemowe Postępów Nauk Rolniczych
• Rocznik: 2005
• Tom: 504
• Numer: 1
• Opis fizyczny: s.335-341,tab.,bibliogr.

Twórcy

autor

Witomska M.

• Katedra Roślin Ozdobnych, Szkoła Główna Gospodarstwa Wiejskiego, Warszawa

autor

Latkowska M.

• Katedra Roślin Ozdobnych, Szkoła Główna Gospodarstwa Wiejskiego, Warszawa

Bibliografia

• Arteaga-Amador M., Pena-Garcia E., Perez-Montesino D., Torriente-Campos Z., Kang-Cholgyu, Kang C.G. 1998. Disinfection of Hippeastrum vittatum explants as determining factor for large scale propagation with commercial aims in Cuba. Revista del Jardin Botanico Nacional 19: 103-111.
• Bach A., Ptak A. 1997. Wpływ jakości światła na regenerację hipeastrum (Hippeastrum hybridum) w warunkach in vitro. Zesz. Nauk. AR w Krakowie 318: 191-194.
• De Bruyn M.H., Ferreira D.I., Slabbert M.M., Pretorius J. 1992. In vitro propagation of Amaryllis belladonna. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 31: 179-184.
• Girmen M., Zimmer K. 1988. In vitro - Kultur von Galanthus elwesii. I. Sterilisation, Regeneration, Phytohormone. Gartenbauwissenschaft 53: 26-29.
• Ilczuk A., Witomska M. 2003. Wpływ chłodzenia cebul matecznych i regulatorów wzrostu na regenerację in vitro zwartnicy Chmiela (Hippeastrum X chmielii CHM.) z eksplantatów pędowych. Zesz. Probl. Post. Nauk Rol. 491: 103-110.
• Ilczuk A., Witomska M. 2004. Wpływ chłodzenia cebul matecznych i regulatorów wzrostu na formowanie cebul przybyszowych zwartnicy Chmiela (Hippeastrum x chmielii Chm.) in vitro. Biotechnologia 2: 185-190.
• Kukułczanka K., Kromer K., Cząstka B. 1989. Propagation of Fritillaria meleagris L. through tissue culture. Acta Hort. 251: 147-153.
• Kutyła M., Chmiel H. 2000. Wpływ rodzaju pożywki oraz wielkości eksplantatu na rozmnażanie Hippeastrum x hybridum w kulturach in vitro. Zesz. Nauk. Inst. Ssadown. i Kwiaciar. 7: 249-254.
• Murasihge T., Skoog F. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiol. Plant. 15: 473-497.
• Novak F.J., Petru E. 1981. Tissue culture propagation of Lilium hybrids. Sci. Hort. 14: 191-199.
• Pierik R.L.M., Blokker J.S., Dekker M.W.C., De Does H., Kuip A.C., Van Der Made T.A., Menten Y.M.J., De Vetten N.C.M.H. 1990. Micropropagation of Hippeastrum hybridum. Integration of in vitro techniques in ornamental plant breeding. Proceedings of Symposium 10-14 November. Eucarpia, Section ornamentals. Centre for Plant Breeding Research, The Nederlands: 21-26.
• Podwyszyńska M. 1999. Regeneracja i rozmnażanie tulipana in vitro. Mat. Konf. „Rozmnażanie roślin in vitro” Inst. Sadown. i Kwiaciar. Skierniewice, 14.04.1999: 14-20.
• Saker M., Rady M., El-Bahr M. 1998. Towards commercial production of ornamental bulbs in vitro. Egyptian J. of Hort. 25(1): 113-128.
• Seabrook J.E.A., Cumming B.G. 1977. The in vitro propagation of amaryllis (Hippeastrum sp. hybrids.). In Vitro 13: 831-836.
• Slabbert M.M., Bruyn de M.H., Ferreira D.J., Pretorius J. 1995. Adventitious in vitro plantlet formation from immature floral stems of Crinum macowanii. Plant Cell, Tissue and Organ Culture 43(1): 51-57.
• Sochacki D., Orlikowska T. 1997. Inicjacja kultur narcyza z różnych eksplantatów. Zesz. Nauk. AR w Krakowie 318: 199-202.
• Taeb A.G., Alderson P.G. 1987. Micropropagation of tulip: optimising shoot production from floral stem explants. Acta Hort. 212, vol. II: 677-681.
• Witomska M. 2001. Wpływ regulatorów wzrostu na rozmnażanie Fritillaria imperialis L. 'Rubra Maxima’ in vitro. Zesz. Nauk. Inst. Sadown. i Kwiaciar. 9: 355-362.
• Witomska M., Łukaszewska A. 1997. Bulblets regeneration in vitro from different explants of Fritillaria imperialis. Acta Hort. 430: 331-338.
• Witomska M., Wilk T., Łukaszewska A. 1998. Wpływ sposobu odkażania cebul Fritillaria imperialis L. na poziom zakażeń eksplantatów i regenerację in vitro. Zesz. Nauk. Inst. Sadown. i Kwiaciar. 5: 121-130.
• Zrv M., Lilien-Kipnis H., Altman A. 1997. The inflorescence stalk: a source of highly regenerative explants for micropropagation geophytes. Acta Hort. 447: 107-111.
• Ziv M., Lilien-Kipnis H. 2000. Bud regeneration from inflorescence explants for rapid propagation of geophytes in vitro. Plant Cell Reports 19(9): 845-850.